患者样本蛋白质组学和代谢组学分析
鉴定IPA与NIPA之间的差异蛋白和差异代谢物。
收集5例IPA和5例NIPA患者的组织进行TMT标记定量蛋白质组学,收集静脉血进行非靶向代谢组学。
Phosphatidylinositol promoted the proliferation and invasion of pituitary adenoma cells by regulating POU1F1 expression.
包含患者样本蛋白质组学和代谢组学、细胞实验(CCK8、Transwell、划痕)以及体内动物模型和分子机制验证,多个证据层级。
GH3大鼠垂体腺瘤细胞系 原代垂体腺瘤细胞(PPAC) BALB/c裸鼠尾静脉移植瘤模型 IPA和NIPA患者组织及血清样本
PI处理浓度(100 μg/ml)和作用时间(72 h或指定时间) PITPNM1敲低/过表达对PI诱导的POU1F1、C2orf15、LDHA表达及AKT/ERK磷酸化的影响 AKT和ERK抑制剂(MK2206、U0126)和激活剂(SC79、TBHQ)的使用 体内模型中PI口服剂量(120 mg/kg)和给药持续时间(九周) 统计方法(t检验、双因素方差分析)和显著性阈值(P<0.05)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定IPA与NIPA之间的差异蛋白和差异代谢物。
收集5例IPA和5例NIPA患者的组织进行TMT标记定量蛋白质组学,收集静脉血进行非靶向代谢组学。
验证PI是否影响垂体腺瘤细胞的体外功能。
用不同浓度PI处理GH3和原代垂体腺瘤细胞,检测细胞活力、迁移、侵袭和相关蛋白表达。
验证PITPNM1是否为PI诱导POU1F1表达和细胞功能所必需。
敲低或过表达PITPNM1,检测对PI诱导的蛋白表达、AKT/ERK磷酸化和细胞迁移侵袭的影响。
验证AKT和ERK磷酸化是否介导PI诱导的POU1F1表达。
使用AKT抑制剂(MK2206)和激活剂(SC79),以及ERK抑制剂(U0126)和激活剂(TBHQ)处理细胞,检测POU1F1、C2orf15和LDHA的表达。
验证POU1F1是否直接调控C2orf15和LDHA的转录。
敲低POU1F1、C2orf15或LDHA,检测相互表达影响和细胞侵袭能力;通过ChIP和荧光素酶报告实验验证POU1F1与靶基因启动子的结合和转录激活。
验证PI在体内是否促进垂体腺瘤细胞的转移。
通过尾静脉注射GH3细胞构建裸鼠转移模型,口服给予PI,检测肺转移和相关蛋白表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 蛋白质组学分析 | TMT标记试剂盒 | Thermo Fisher | -- |
| 质谱分析 | Q-Exactive HF-X质谱仪 | Thermo Scientific | -- |
| 蛋白质组学分析 | Easy-nLC 1200色谱系统 | Thermo Scientific | -- |
| 代谢组学分析 | Agilent 1290 Infinity LC ULTRA超高效液相色谱 | Agilent | -- |
| Triple TOF 5600质谱仪 | AB SCIEX | -- | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 马血清 | -- | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Solarbio | -- |
| 抗PITPNM1抗体 | Bioss | -- | |
| 抗POU1F1抗体 | Bioss | -- | |
| 抗C2orf15抗体 | Bioss | -- | |
| 抗GAPDH抗体 | Proteintech | -- | |
| 侵袭实验 | 基质胶涂层 | BD Biosciences | -- |
| 细胞培养 | 青霉素 | -- | -- |
| 链霉素 | -- | -- | |
| Western blot | PVDF膜 | -- | -- |
| 免疫组织化学 | DAB显色液 | -- | -- |
| ChIP实验 | ChIP试剂盒 | Abcam | AB500 |
| 荧光素酶报告实验 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Roche | -- |
| 双荧光素酶检测系统 | Promega | -- | |
| 药物处理 | MK2206 | -- | -- |
| SC79 | -- | -- | |
| U0126 | -- | -- | |
| TBHQ | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 蛋白质组学分析 | 样本量(5例IPA和5例NIPA)、差异筛选阈值(1.2倍,p<0.05)、TMT标记和质谱条件 阅读提示:Materials and methods: Proteomic analysis; Results: Proteomic analysis of NIPA and IPA tissues |
| 代谢组学分析 | 血清样本量、色谱柱(HILIC)、流动相、梯度洗脱程序、质谱条件(Triple TOF 5600) 阅读提示:Materials and methods: Metabolite extraction, LC-MS analysis; Results: Metabonomic analysis of venous blood |
| 细胞培养和处理 | GH3细胞和原代细胞培养条件(培养基、血清浓度、抗生素)、PI处理浓度(100 μg/ml)和时间 阅读提示:Materials and methods: CCK8 assay |
| 细胞功能实验 | 划痕实验和Transwell实验的具体条件(细胞密度、血清浓度、培养时间) 阅读提示:Materials and methods: Scratch assay, Invasion assay |
| Western blot | 抗体稀释比例(PITPNM1 1:2000, POU1F1 1:2000, C2orf15 1:1000, pAKT 1:1000, pERK 1:1000, Actin 1:2000) 阅读提示:Materials and methods: Western blot analysis |
| ChIP实验 | ChIP试剂盒(Abcam AB500)、甲醛交联时间、超声条件、引物序列 阅读提示:Materials and methods: Chromatin Immunoprecipitation; Figure 8 legends |
| 荧光素酶报告实验 | 质粒构建、细胞系(293T)、转染量(250 ng)、转染试剂(Lipofectamine 3000)、检测时间(24 h) 阅读提示:Materials and methods: Luciferase reporter assay; Figure 8 legends |
| 体内实验 | 裸鼠品系(BALB/c)、周龄(6周)、性别(雄性)、细胞注射量(1×10^7)、PI给药剂量(120 mg/kg)和持续时间(9周) 阅读提示:Materials and methods: In vivo PA model; Figure 9 legends |