骨骼祖细胞LRP1缺乏导致严重的持续性骨骼缺陷并伴随Wnt通路失调

Skeletal progenitor LRP1 deficiency causes severe and persistent skeletal defects with Wnt pathway dysregulation.

作者信息Mohammad Alhashmi, Abdulrahman M E Gremida, Santosh K Maharana, Marco Antonaci, Amy Kerr, Shijian Fu, Sharna Lunn, David A Turner, Noor A Al-Maslamani, Ke Liu, Maria M Meschis, Hazel Sutherland, Peter Wilson, Peter Clegg, Grant N Wheeler, Robert J van 't Hof, George Bou-Gharios, Kazuhiro Yamamoto
PMID39865089
期刊Bone Res
发布时间2025-01-26
DOI10.1038/s41413-024-00393-x

实验完整度

包含条件性敲除小鼠模型、细胞实验(MEF和软骨细胞)、Xenopus胚胎模型,并进行了功能验证(内吞、信号通路)和机制验证。

主要模型

Lrp1flox/flox/Prrx1Cre条件性敲除小鼠 小鼠胚胎骨骼组织 小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs) 人类原代软骨细胞 非洲爪蟾胚胎

重点核对

Lrp1flox/flox/Prrx1Cre小鼠中Lrp1的敲除效率及对肢体发育的影响(E10.5-E16.5) Wnt5a与LRP1的结合亲和力(KD,app)及细胞摄取实验(0-60分钟) Wnt5a在WT和LRP1 KO MEFs中的降解和回收(3-24小时) LRP1缺陷对E13.5和E16.5肢体中Wnt5a和Vangl2丰度及分布的影响 Xenopus胚胎中lrp1敲减或mini-LRP1过表达引起的表型变化(频率统计)

摘要

低密度脂蛋白受体相关蛋白1(LRP1)是一种多功能的内吞受体,其功能障碍与发育性髋关节发育不良、骨质疏松症和骨关节炎有关。我们的工作解决了这些骨骼病理如何出现的关键问题。在此,我们展示了LRP1在小鼠胚胎期E10.5及以后的骨骼祖细胞中丰富表达,尤其是在软骨膜中,这是围绕发育中肢体的干细胞层,对骨形成至关重要。这些干细胞中Lrp1缺陷导致关节融合、软骨/骨模板畸形以及初级骨化明显延迟或缺失。这些异常类似于与Wnt信号通路相关的表型,导致严重和持续的骨骼缺陷,包括髋关节和髌骨的严重缺陷,以及明显变形和低密度的长骨,导致侏儒症和活动能力受损。在机制上,我们展示了LRP1调控核心的非经典Wnt/平面细胞极性(PCP)成分,这可能解释长骨的畸形。LRP1直接结合Wnt5a,促进其细胞结合和内吞降解及再循环。在发育中的肢体中,LRP1与Wnt5a部分共定位,其缺陷改变了Wnt5a和Vangl2的丰度和分布。最后,使用非洲爪蟾作为模型系统,我们展示了LRP1在Wnt/PCP信号传导中的调控作用。我们提出,在骨骼祖细胞中,LRP1通过调控Wnt信号传导在多个骨骼和关节的形成和成熟中发挥关键作用,为形态发生的基本过程和骨骼病理的出现提供了新的见解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
LRP1在骨骼发育过程中何时何地表达,其缺乏如何导致骨骼病理,并持续多久,以及哪些分子机制导致这些缺陷。
核心机制
LRP1通过直接结合并介导Wnt5a的细胞结合、内吞降解和再循环,调控非经典Wnt/PCP信号通路成分(如Wnt5a和Vangl2)的丰度和分布,从而影响骨骼和关节的正确形成。
主要证据
Lrp1flox/flox/Prrx1Cre小鼠表现出严重的骨骼和关节缺陷,如关节融合、骨化延迟、长骨变形;细胞实验显示LRP1与Wnt5a直接结合并介导其内吞;E13.5和E16.5肢体中Wnt5a和Vangl2水平变化;Xenopus中lrp1敲减和mini-LRP1过表达影响汇聚延伸。
研究意义
作者提出LRP1在骨骼祖细胞中通过调控Wnt信号通路在骨骼和关节的形成和成熟中起关键作用,为形态发生的基本过程和骨骼病理(如DDH、骨质疏松症和OA)的出现提供新见解。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

分析LRP1在骨骼发育中的表达

确定LRP1在骨骼祖细胞中的表达模式和定位。

通过免疫组化检测E13.5至P0肘关节中LRP1的表达,以及HCR检测E10.5胚胎中Lrp1 mRNA的表达。

2

条件性敲除Lrp1并评估早期骨骼表型

研究骨骼祖细胞中LRP1缺失对早期骨骼和关节形成的影响。

生成Lrp1flox/flox/Prrx1Cre小鼠,通过H&E染色评估E16.5、E18.5、P0的肩、肘、膝和髋关节的形态,并用μCT测量骨长度。

3

评估出生后骨骼缺陷的持续性和严重性

确定LRP1缺失导致的骨骼缺陷是否持续至成年期。

监测小鼠体重、活动能力(DVC®系统),进行全骨架染色(Alcian blue/Alizarin red),μCT扫描和骨组织形态学分析。

4

研究LRP1与Wnt配体的相互作用

确定LRP1是否直接结合Wnt5a和Wnt11,并影响其细胞摄取和降解。

固体结合实验测定LRP1与Wnt5a、Wnt11、Wnt3a的结合亲和力;在WT和LRP1 KO MEFs中检测Wnt5a的细胞结合和内吞;共聚焦显微镜观察LRP1和Wnt5a的共定位。

5

评估LRP1缺乏对肢体中Wnt5a和Vangl2的影响

研究LRP1缺失如何改变发育中肢体的Wnt/PCP信号成分。

用免疫荧光染色检测E13.5和E16.5肢体中Wnt5a、LRP1、Vangl2和磷酸化Vangl2的表达和定位。

6

在Xenopus胚胎中验证LRP1在Wnt/PCP信号中的作用

评估LRP1在非经典Wnt信号传导中的功能。

注射lrp1 morpholino或mini-LRP1 mRNA到Xenopus胚胎,观察汇聚延伸表型。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RED ExtractN-Amp 组织PCR试剂盒SIGMA--
Impress HRP 山羊抗兔 IgG 聚合物检测试剂盒Vector Lab--
VECTASTAIN ABC-HRP 试剂盒Vector Lab--
DAB底物试剂盒Vector Lab--
抗LRP1抗体Abcamab92544
抗Sox9抗体SIGMAAB5535
抗Wnt5a抗体Biossbs1948R
兔IgG对照抗体Vector LabI1000
徕卡 ASP300 组织脱水机Leica Microsystems--
徕卡 EG1150 H 包埋机Leica--
徕卡 RM2245 切片机Leica--
蛋白酶KThermoFisher--
Andor Dragonfly 转盘共聚焦显微镜Andor--
Skyscan 1272 显微CTSKYSCAN--
Quantum GX-2 系统PerkinElmer--
抗Wnt5a抗体R&D systemsMAB6452
抗Wnt3a抗体Abcamab219412
抗Wnt11抗体Abcamab31962
FLUOstar Omega 酶标仪BMG Labtech--
蛋白酶抑制剂混合物SIGMAP1860
抗Wnt5a抗体R&D systemsAF645
肌动蛋白染色670 鬼笔环肽Cell Signalling--
含DAPI的VECTASHEILD抗淬灭封片剂2BScientific--
抗Wnt5a抗体Santa CruzSc-365370
抗Vangl2抗体Proteintech21492-1-AP
抗磷酸化Vangl2-S79/S82/S84抗体MerckSAB5701946
mMessage mMachine 试剂盒ThermoFisherAM1344
lrp1 吗啉基寡核苷酸Gene Tools--
对照吗啉基寡核苷酸Gene Tools--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
小鼠模型生成
Lrp1flox/flox (Strain 012604)和Prrx1Cre (Strain 005584)品系来源,以及交配策略和基因分型条件(引物序列、PCR程序)。
阅读提示:Materials and Methods: Mice, Mouse genotyping
免疫组织化学
抗体克隆号和稀释比例(抗LRP1 1:200;抗Sox9 1:500;抗Wnt5a 1:200);抗原修复条件(碱性试剂,95℃ 10分钟);封闭条件(10%山羊血清,3小时)。
阅读提示:Materials and Methods: Immunohistochemistry
细胞结合和内化实验
MEFs和软骨细胞的培养条件;Wnt5a浓度(20 nmol/L或40 nmol/L);孵育时间(0-60分钟或3-24小时);RAP浓度(500 nmol/L);检测方法(Western blot或共聚焦)。
阅读提示:Materials and Methods: Monitoring exogenously added Wnt5a and Wnt11 levels, Immunocytochemical localisation
肢体免疫荧光
胚胎阶段(E13.5和E16.5);抗体(抗Wnt5a、抗LRP1、抗Vangl2、抗磷酸化Vangl2)来源和稀释;切片处理(抗原修复、透化、封闭)。
阅读提示:Materials and Methods: Immunofluorescence tissue staining
Xenopus胚胎实验
胚胎注射剂量(lrp1 morpholino 20 ng;mini-Lrp1 mRNA 5 pg);注射位置(4-cell stage dorsal marginal zone);表型统计(convergent extension phenotype频率)。
阅读提示:Materials and Methods: Xenopus laevis embryonic development model