临床样本和炎症模型中TRPML1表达分析
探究TRPML1在IBD患者和结肠炎小鼠中的表达变化及其与疾病严重程度的相关性。
通过qPCR、RNA-seq(GSE53306)分析IBD患者(UC、CD)外周血白细胞和结肠组织中MCOLN1表达;通过qPCR和Western blot检测DSS诱导结肠炎小鼠结肠TRPML1表达。
Lysosomes finely control macrophage inflammatory function via regulating the release of lysosomal Fe2+ through TRPML1 channel.
包含体外细胞实验(BMDMs、RAW264.7)、基因敲除/敲低、体内DSS结肠炎小鼠模型、患者样本分析,并进行功能及机制验证(PHDs、NF-κB通路)。
骨髓来源巨噬细胞(BMDMs) RAW264.7巨噬细胞系 DSS诱导的结肠炎小鼠模型 溃疡性结肠炎和克罗恩病患者外周血白细胞及结肠组织
ML-SA5(TRPML1激动剂)浓度0.1 μM,处理时间4-24小时 MCOLN1敲除(KO)小鼠来源的BMDMs DSS诱导结肠炎模型:3% DSS(分子量36,000-50,000)饮水6天 ML-SA5体内给药0.1 mg/kg腹腔注射,每日一次,并在DSS前预先给药三次 铁螯合剂DXZ(200 μM)、2,2'-联吡啶(150 μM)等处理
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
探究TRPML1在IBD患者和结肠炎小鼠中的表达变化及其与疾病严重程度的相关性。
通过qPCR、RNA-seq(GSE53306)分析IBD患者(UC、CD)外周血白细胞和结肠组织中MCOLN1表达;通过qPCR和Western blot检测DSS诱导结肠炎小鼠结肠TRPML1表达。
确定TRPML1通道活性是否调控巨噬细胞IL1B转录及IL-1β产生。
使用TRPML1激动剂(ML-SA5、MK6-83、ML-SA1)、拮抗剂(ML-SI3)、过表达(Tet-on)和敲除/敲低(MCOLN1 KO或shRNA)处理BMDMs和RAW264.7细胞,检测IL1B mRNA、pro-IL-1β蛋白和分泌IL-1β水平(ELISA)。
验证TRPML1下游效应离子是Fe2+而非Ca2+或Zn2+,并排除自噬和TFEB的参与。
使用铁螯合剂(DXZ、2,2'-联吡啶、DFX)、Ca2+螯合剂(BAPTA-AM)、Zn2+螯合剂(TPEN)、自噬抑制剂(Wortmannin、ATG5 shRNA、ATG12 KO)等处理BMDMs,检测IL1B表达;利用Fe2+探针和ACO1/IREB2 RNA结合实验检测溶酶体Fe2+释放;排除TFEB/TFE3的作用。
确定PHDs是介导Fe2+抑制IL1B转录的下游效应分子。
通过ODD-luc报告基因检测PHD活性;使用PHD抑制剂(Roxadustat、Vadadustat、GSK1278863)和PHD1/2/3 shRNA处理BMDMs,检测IL1B表达。
确认NF-κB是受PHDs调控并直接抑制IL1B转录的末端转录因子。
使用NF-κB荧光素酶报告基因检测活性;通过Western blot检测p65、IKKα/β、IKBα磷酸化;使用IL1B-luc报告基因和ChIP-qPCR检测p65在IL1B启动子区域的结合。
确认ROS是激活TRPML1并触发抗炎反应的上游信号。
检测LPS刺激后ROS水平变化(H2DCFDA探针);使用抗氧化剂NAC处理,检测IL1B表达、M1/M2标志物、溶酶体Fe2+释放(HMRhoNox-M探针)及铁沉积(Perls'染色)。
评估体内刺激TRPML1是否改善DSS诱导的结肠炎症状并抑制IL-1β产生。
给予小鼠ML-SA5(0.1 mg/kg,腹腔注射)和/或ML-SI3(0.5 mg/kg),或补充IL-1β,观察生存率、体重变化、疾病活动指数(DAI)、结肠长度、组织病理和血清IL-1β水平;并比较MCOLN1 KO小鼠与WT小鼠对DSS的敏感性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Sigma-Aldrich | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 巨噬细胞集落刺激因子 | PEROTECH | -- | |
| 葡聚糖硫酸钠 | MP Biomedicals | -- | |
| 药物处理 | ML-SA5 | -- | -- |
| ML-SI3 | -- | -- | |
| 脂多糖 | Sigma | -- | |
| 右雷佐生 | Sigma | -- | |
| 2,2'-联吡啶 | Sigma | -- | |
| 去铁胺 | Sigma | -- | |
| BAPTA-AM | Sigma | -- | |
| TPEN | Sigma | -- | |
| 渥曼青霉素 | Sigma | -- | |
| 罗沙司他 | MedChemExpress | -- | |
| 伐达司他 | MedChemExpress | -- | |
| GSK1278863 | MedChemExpress | -- | |
| N-乙酰半胱氨酸 | -- | -- | |
| 柠檬酸铁铵 | -- | -- | |
| 酵母聚糖A | -- | -- | |
| 雷西莫特 | -- | -- | |
| 蛋白检测 | 抗小鼠IL-1β抗体 | BD Biosciences | -- |
| 抗GAPDH抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 抗β肌动蛋白抗体 | Abbkine Scientific | -- | |
| 抗β微管蛋白抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 抗NLRP3抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 抗Caspase-1抗体 | AdipoGen | -- | |
| 抗HIF-1α抗体 | Novus | -- | |
| 抗PHD1抗体 | Novus | -- | |
| 抗PHD2抗体 | Novus | -- | |
| 抗PHD3抗体 | Novus | -- | |
| 抗LC3抗体 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 抗p62抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 抗磷酸化p65抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 抗p65抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 抗磷酸化IKBα抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 抗磷酸化IKKα/β抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 抗TFEB抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 抗TFE3抗体 | ABclonal | -- | |
| 抗TRPML1抗体 | Alomone labs | -- | |
| 抗TRPML2抗体 | Alomone labs | -- | |
| 抗TRPML3抗体 | Alomone labs | -- | |
| 抗TFR1抗体 | Bioss | -- | |
| 抗ACO1抗体 | Proteintech | -- | |
| ELISA | IL-1β ELISA试剂盒 | R&D Systems | -- |
| qPCR | RNAiso Trizol试剂 | Sangon Biotech | -- |
| PrimeScript RT预混液 | Takara | -- | |
| TB Green Premix Ex Taq II | Takara | -- | |
| LightCycler 480 qPCR仪 | Roche | -- | |
| ChIP | ChIP试剂盒 | Beyotime | P2078 |
| 流式细胞术 | H2DCFDA探针 | ThermoFisher Scientific | D399 |
| Fe2+染色 | BioTracker远红不稳定Fe2+活细胞染料 | Life Technologies | -- |
| LysoTracker Red DND-99 | Life Technologies | -- | |
| HMRhoNox-M探针 | -- | -- | |
| Perls'染色 | Perls'普鲁士蓝染色试剂盒 | Solarbio | G1426 |
| 免疫荧光 | DAPI | Invitrogen | -- |
| 抗小鼠CD68抗体 | Bio-Rad | -- | |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂盒 | Dojindo | CK04 |
| 细胞转染 | Lipomaster 3000转染试剂 | Vazyme | -- |
| 质粒构建 | pX458质粒 | -- | Addgene #48138 |
| pGL3-basic慢病毒载体 | -- | -- | |
| 报告基因检测 | ONE-Glo荧光素酶报告基因检测试剂盒 | Promega | E6120 |
| RNA-seq | Illumina HiSeq 2500测序系统 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与处理 | BMDMs分离培养条件(DMEM+10% FBS+20 ng/mL M-CSF);细胞处理浓度(LPS 100 ng/mL,ML-SA5 0.1 μM,ML-SI3 10 μM等)及时间 阅读提示:Methods: Isolation, culture, and treatment of BMDMs; Reagents and chemicals |
| DSS诱导结肠炎模型 | DSS浓度(3% w/v,分子量36,000-50,000)饮水6天;ML-SA5剂量(0.1 mg/kg,腹腔注射,每日,预给药三次)和ML-SI3剂量(0.5 mg/kg) 阅读提示:Methods: Mice; Assessment of colitis severity |
| 分子检测 | qPCR引物序列;Western blot抗体及稀释比例;ChIP-qPCR引物及p65抗体;Fe2+探针使用条件 阅读提示:Methods: qPCR analysis; Western blotting; Chromatin immunoprecipitation (ChIP) assay; Fe2+ staining |
| 统计设计 | 样本量(n值)、重复次数(至少3次)、统计方法(one-way ANOVA followed by Tukey's test等) 阅读提示:Methods: Statistical analysis |