骨骼肌去负荷中的纤维-脂肪生成祖细胞:代谢与功能损伤

Fibro-adipogenic progenitor cells in skeletal muscle unloading: metabolic and functional impairments.

作者信息Margarita Sorokina, Danila Bobkov, Natalia Khromova, Natalia Vilchinskaya, Boris Shenkman, Anna Kostareva, Renata Dmitrieva
PMID39639402
发布时间2024-12-06
DOI10.1186/s13395-024-00362-2

实验完整度

研究包含体外细胞实验(FAPs分离培养、功能检测、代谢分析)和转录组测序分析,并通过功能实验验证了去负荷时间依赖性效应。

主要模型

大鼠后肢悬吊模型 原代纤维-脂肪生成祖细胞(FAPs) C2C12成肌细胞

重点核对

后肢悬吊时间点:7天和14天(HS7和HS14) FAPs纯化方法:酶消化和粘附选择 细胞培养条件:含10% FBS、1%青霉素-链霉素、1% L-谷氨酰胺的DMEM培养基 Seahorse实验:25×10³细胞/孔,使用Mito Stress Test试剂盒 成脂分化诱导:1 μM胰岛素、1 μM地塞米松、0.5 μM IBMX

摘要

背景:骨骼肌驻留的纤维-脂肪生成祖细胞(FAPs)通过为肌肉干细胞提供支持作用来控制骨骼肌再生。已有研究表明多种病理条件下FAPs特性发生改变,但健康骨骼肌暂时性功能去负荷对FAPs的影响研究较少。本研究旨在探讨骨骼肌废用如何影响FAPs的功能和代谢。方法:采用后肢悬吊(HS)大鼠模型研究肌肉对使用减少的反应。从功能正常的比目鱼肌(Contr)以及功能去负荷7天和14天(HS7和HS14)后纯化FAPs。FAPs在体外扩增,并检测:免疫表型;体外扩增速率和迁移活性;体外成脂分化能力;代谢变化。通过FAPs条件培养基对C2C12成肌细胞迁移和肌生成的影响来评估FAPs与肌肉干细胞之间的串话。为揭示去负荷诱导的FAPs功能改变的分子机制,进行了转录组分析。结果:从Contr和HS肌肉中分离的FAPs表现出MSC细胞表型。功能去负荷改变了FAPs的体外扩增速率和迁移能力。所有FAPs样本均表现出体外成脂分化能力,但HS FAPs形成的脂滴体积更小,转录组分析显示脂肪酸代谢和PPAR信号通路受到抑制。骨骼肌去负荷导致FAPs代谢重编程:在HS7和HS14样本中均检测到备用呼吸能力降低、OCR/ECAR比值降低,表明耗氧量减少、底物氧化潜力降低以及向糖酵解代谢转变。此外,用FAPs条件培养基处理的C2C12培养物显示出不同的变化:HS7 FAPs来源的旁分泌因子支持成肌细胞融合,而HS14来源的培养基刺激C2C12成肌细胞增殖;转录组分析检测到细胞因子表达增加支持了这些观察结果。结论:本研究结果表明,骨骼肌功能去负荷以时间依赖方式影响FAPs的特性:在萎缩的骨骼肌中,FAPs充当调节信号的传感器,可能刺激代谢和转录重编程,以在去负荷期间和康复过程中维持骨骼肌稳态相关的FAPs特性。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
骨骼肌功能去负荷如何影响FAPs的功能和代谢?
核心机制
骨骼肌去负荷以时间依赖方式诱导FAPs代谢重编程,包括备用呼吸能力降低和向糖酵解代谢转变,并通过下调PPAR信号通路相关基因表达来抑制脂质积累和成脂分化。
主要证据
功能实验显示HS7 FAPs扩增速率最高,HS14 FAPs迁移率最高;HS FAPs成脂分化能力下降且脂滴体积减小;Seahorse分析显示备用呼吸能力和OCR/ECAR比值降低;C2C12实验显示HS7条件培养基促进融合,HS14条件培养基促进增殖;RNA-seq显示细胞周期、糖酵解、细胞因子活性和PPAR信号通路相关基因表达改变。
研究意义
作者提出FAPs在萎缩肌肉中充当调节信号的传感器,可能通过代谢和转录重编程来维持骨骼肌稳态,为理解去负荷后肌肉康复过程提供新的见解。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

动物模型建立与FAPs分离

建立后肢悬吊模型,获得不同去负荷时间点的FAPs样本。

使用雄性Wistar大鼠随机分为对照组、HS7和HS14组,每组8只。后肢悬吊7或14天后,从比目鱼肌中酶消化分离FAPs,并通过粘附选择纯化。

2

FAPs免疫表型鉴定

确认分离的FAPs具有间充质干细胞表型,并比较各组差异。

通过流式细胞术检测新鲜分离的FAPs表面标志物PDGFRα、CD73、CD90、Vimentin和CD45的表达。

3

FAPs增殖和迁移功能检测

评估去负荷对FAPs体外扩增和迁移能力的影响。

通过划痕实验、直接迁移追踪、细胞计数和群体倍增时间测定来检测FAPs的增殖和迁移。

4

FAPs成脂分化能力检测

评估去负荷对FAPs成脂分化能力的影响。

用成脂诱导培养基处理FAPs,在第11天进行油红O染色,并通过图像分析量化脂滴面积;同时检测成脂相关基因表达。

5

FAPs代谢分析(Seahorse)

评估去负荷对FAPs线粒体呼吸和糖酵解的影响。

使用Seahorse XFe24分析仪检测FAPs的OCR和ECAR,计算基础呼吸、备用呼吸能力、OCR/ECAR比值等参数。

6

FAPs旁分泌效应检测(C2C12共培养)

评估去负荷FAPs的旁分泌因子对C2C12成肌细胞迁移和肌生成的影响。

用FAPs条件培养基处理C2C12细胞,检测划痕愈合、融合指数和肌管宽度,并通过免疫细胞化学染色检测肌球蛋白重链。

7

转录组分析(RNA-seq)

揭示去负荷诱导的FAPs功能改变的分子机制。

对Contr、HS7和HS14 FAPs进行RNA-seq,鉴定差异表达基因,进行GO和KEGG通路富集分析。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
胶原酶ISigma-Aldrich--
DMEM培养基Gibco--
马血清Gibco--
胎牛血清HyClone--
青霉素-链霉素----
L-谷氨酰胺----
鸡胎血清USBiological--
胰蛋白酶溶液----
胰岛素----
地塞米松----
3-异丁基-1-甲基黄嘌呤----
油红OSigma--
RNA提取试剂盒Evrogen--
MMLV逆转录试剂盒Evrogen--
qPCR预混液Evrogen--
Seahorse XFe24分析仪Agilent Technologies--
寡霉素----
BAM15----
鱼藤酮----
TruSeq链特异性mRNA文库制备试剂盒Illumina Inc.--
Illumina NextSeq 2000测序仪Illumina--
4150 TapeStation系统Agilent--
CytoFLEX流式细胞仪Beckman Coulter--
抗PDGFRα-A488抗体BIOSSAI08115858
抗CD45-PE抗体BD Pharmingen24264
抗波形蛋白-FITC抗体BIOSSAH032859
抗CD73-PE抗体BIOSSAH072347
抗CD90-PE抗体BD Pharmingen22659
抗肌球蛋白重链抗体R&D SystemsMAB4470
Alexa Fluor 488二抗Molecular Probes--
DAPIMolecular Probes--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型
大鼠品系、体重、年龄、分组、每组样本量(n=8)、悬吊角度约30°、环境条件(12:12小时光暗循环)
阅读提示:Methods: Hindlimb suspension rat model
FAPs分离与培养
酶消化时间、胶原酶浓度、离心速度和时间、培养基成分、粘附选择时间、合并样本策略(8只动物合并)
阅读提示:Methods: Skeletal muscle stem cells isolation
成脂分化
诱导培养基成分(胰岛素、地塞米松、IBMX浓度)、诱导时间、油红O染色时间、图像分析方法
阅读提示:Methods: Adipogenic differentiation of FAPs
代谢分析
细胞接种密度、Seahorse试剂浓度(寡霉素、BAM15、鱼藤酮/抗霉素A)、归一化方式(蛋白含量)
阅读提示:Methods: Bioenergetic analysis using seahorse technology
旁分泌实验
条件培养基制备时间(24小时)、C2C12处理时间、划痕实验时间点、融合指数和肌管宽度测量标准
阅读提示:Methods: C2C12 myogenic differentiation induced by FAPs-conditioned medium, Measurement of fusion index and myotubes width
转录组分析
样本代数(第二代数)
阅读提示:Methods: RNA sequencing analysis