建立小鼠ALI模型并评估肺损伤
验证LPS诱导急性肺损伤模型的建立,并检测肺损伤程度和PD-L1表达。
通过气管内滴注LPS(5 mg/kg)诱导ALI,48小时后评估肺湿干比、BALF蛋白浓度、HE染色和肺损伤评分,并通过免疫组化和免疫荧光检测肺组织及AMs中PD-L1表达。
Repression of JAK2-STAT1 and PD-L1 by CEP-33779 ameliorates the LPS-induced decline in phagocytic activity of alveolar macrophages and mitigates lung injury in mice.
包含小鼠体内模型(LPS诱导ALI)和细胞模型(MH-S),并有功能验证(吞噬实验)和机制验证(JAK2/STAT1抑制剂)等多层级证据。
小鼠ALI模型(LPS气管内滴注) MH-S小鼠肺泡巨噬细胞系 BALF中分离的肺泡巨噬细胞 小鼠肺组织
LPS剂量(5 mg/kg)和给药途径(气管内滴注) CEP-33779剂量(25 mg/kg和50 mg/kg)和给药方案(腹腔注射?实为口服) MH-S细胞LPS刺激浓度(1 μg/ml)和刺激时间(0-120分钟,24小时等) CEP-33779处理浓度(10-3000 nM)和预处理时间(1或2小时) 吞噬实验:乳胶珠-兔IgG-FITC复合物孵育2小时,计算吞噬指数
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证LPS诱导急性肺损伤模型的建立,并检测肺损伤程度和PD-L1表达。
通过气管内滴注LPS(5 mg/kg)诱导ALI,48小时后评估肺湿干比、BALF蛋白浓度、HE染色和肺损伤评分,并通过免疫组化和免疫荧光检测肺组织及AMs中PD-L1表达。
确定LPS诱导的ALI小鼠中AMs上JAK2-STAT1通路激活和PD-L1表达是否上调。
分离BALF细胞,通过免疫荧光染色和激光共聚焦显微镜检测AMs上p-JAK2、p-STAT1和PD-L1的表达。
验证JAK2抑制剂CEP-33779和STAT1抑制剂对LPS诱导的MH-S细胞中JAK2-STAT1激活和PD-L1表达的影响。
用LPS(1 μg/ml)刺激MH-S细胞,不同时间点检测JAK2和STAT1磷酸化及PD-L1表达;用CEP-33779预处理后检测信号通路变化;也用STAT1抑制剂氟达拉滨预处理。
验证CEP-33779是否恢复LPS诱导的MH-S细胞吞噬活性下降。
MH-S细胞分为对照组、LPS组、LPS+溶剂组、LPS+CEP-33779组,用乳胶珠-兔IgG-FITC复合物孵育,通过共聚焦显微镜计算吞噬指数。
验证CEP-33779给药是否能减轻LPS诱导的小鼠肺损伤和炎症。
小鼠气管内滴注LPS(5 mg/kg)前2小时和随后48小时内口服CEP-33779(25和50 mg/kg),检测肺损伤评分、HE染色、BALF总细胞数、TNF-α和IL-6水平和蛋白浓度。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型 | 脂多糖 | -- | -- |
| CEP-33779 | -- | -- | |
| 免疫组化 | 抗PD-L1抗体 | Proteintech | 66248-1-Ig |
| HRP偶联的山羊抗小鼠二抗 | Bioworld | BS20242-Y | |
| Western blot | RIPA裂解液 | -- | -- |
| 蛋白酶/磷酸酶抑制剂混合物 | Solarbio | P6730, | |
| 抗STAT1抗体 | Abcam | ab281999 | |
| 抗JAK2抗体 | Abcam | ab108596 | |
| 抗p-JAK2抗体 | Abcam | ab32101 | |
| 抗p-STAT1抗体 | Abcam | ab109461 | |
| 抗PD-L1/CD274抗体 | Proteintech | 66248-1-Ig | |
| 抗GAPDH抗体 | Goodhere biotech. | AB-M-M001 | |
| 山羊抗兔IgG (H+L) HRP | Bioss | bs-0295G-HRP | |
| 山羊抗小鼠IgG (H+L) HRP | Bioworld | BS20242-Y | |
| Immobilon Western HRP底物 | Merck | WBKLS01001 | |
| Amersham Imager 680成像系统 | Gene Ray Electric company USA | -- | |
| 免疫荧光 | Triton X-100 | Beyotime | P0096 |
| QuickBlock封闭液 | Beyotime | P0260 | |
| 免疫染色一抗稀释液 | Beyotime | P0103 | |
| 抗p-STAT1抗体 | Cell Signaling Technology | 9177 | |
| 抗PD-L1/CD274抗体 | Proteintech | 66248-11-Ig | |
| 抗CD11c抗体 | Signalway Antibody | C91504FITC | |
| SignalUp二抗稀释液 | Beyotime | P0278 | |
| 山羊抗兔IgG FITC | Servicebio | GB22303 | |
| 山羊抗小鼠IgG Cy3 | Servicebio | GB21301 | |
| DAPI | Servicebio | G1012 | |
| 抗荧光淬灭封片剂 | Solarbio | S2100 | |
| 蔡司激光共聚焦显微镜LSM980 | Zeiss | -- | |
| ELISA | 小鼠TNF-α ELISA试剂盒 | Bioss | bsk12002 |
| 小鼠IL-6 ELISA试剂盒 | Bioss | bsk12004 | |
| 酶标仪 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 吞噬实验 | 乳胶珠-兔IgG-FITC复合物 | -- | -- |
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素和链霉素 | -- | -- | |
| β-巯基乙醇 | -- | -- | |
| MH-S细胞系 | ATCC | -- | |
| 细胞分离 | 红细胞裂解液 | -- | -- |
| 统计 | GraphPad Prism | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 小鼠ALI模型建立 | 小鼠品系(BALB/c)、性别(雄性)、年龄(6-8周龄)、LPS给药剂量(5 mg/kg)和途径(气管内滴注)、麻醉方式(戊巴比妥钠50 mg/kg腹腔注射)、模型建立后48小时评估。 阅读提示:Methods 2.1 小鼠急性肺损伤模型和CEP-33779治疗 |
| CEP-33779体内给药方案 | 给药剂量(25 mg/kg和50 mg/kg)、给药途径(口服)、给药时间(LPS前2小时和LPS后48小时内每日两次)、溶剂(PEG300)。 阅读提示:Methods 2.1 小鼠急性肺损伤模型和CEP-33779治疗 |
| BALF细胞分离和免疫荧光检测 | 灌洗液体积(0.8 ml PBS/EDTA 5 mM,10次)、细胞计数(血球计数板)、抗体浓度(如p-JAK2 1:1000等)。 阅读提示:Methods 2.3 细胞分离和2.9 免疫荧光 |
| MH-S细胞LPS刺激和抑制剂处理 | LPS浓度(1 μg/ml)、刺激时间(p-JAK2和p-STAT1检测:2小时;PD-L1检测:24小时)、CEP-33779浓度(3000 nM)和预处理时间(1或2小时)、STAT1抑制剂氟达拉滨浓度(50 μM)。 阅读提示:Methods 2.4 细胞培养和处理、2.9 免疫荧光、Figure 4图注 |
| 吞噬实验 | 乳胶珠-兔IgG-FITC复合物稀释比例(1:400)、孵育时间(2小时)、吞噬指数计算方法(荧光微珠数/巨噬细胞总数)、统计(每组200个细胞,重复3次)。 阅读提示:Methods 2.11 吞噬作用 |