细胞培养与分组干预
建立PDGF-BB诱导的VSMCs增殖和表型转换模型,并观察鸢尾素及其抑制剂的作用。
A7R5细胞常规培养后,分组:对照组、PDGF-BB组、鸢尾素+PDGF-BB组、Compound C+鸢尾素+PDGF-BB组、雷帕霉素+鸢尾素+PDGF-BB组。鸢尾素(1 mg/L)、Compound C(10 μmol/L)或雷帕霉素(2 mg/L)预处理30分钟,再加入PDGF-BB(50 ng/mL)处理24小时。
Irisin suppresses PDGF-BB-induced proliferation of vascular smooth muscle cells in vitro by activating AMPK/mTOR-mediated autophagy.
本研究主要基于体外细胞实验,包括MTT、EdU、流式细胞术、RT-qPCR、Western blot、GFP-LC3腺病毒感染及透射电镜,并采用抑制剂干预验证AMPK/mTOR通路,但缺乏体内动物模型或临床样本验证,实验完整度中等。
大鼠胸主动脉血管平滑肌细胞系A7R5
鸢尾素浓度1 mg/L处理VSMCs 30分钟 PDGF-BB浓度50 ng/mL诱导VSMCs 24小时 AMPK抑制剂Compound C浓度10 μmol/L mTOR抑制剂雷帕霉素浓度2 mg/L
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立PDGF-BB诱导的VSMCs增殖和表型转换模型,并观察鸢尾素及其抑制剂的作用。
A7R5细胞常规培养后,分组:对照组、PDGF-BB组、鸢尾素+PDGF-BB组、Compound C+鸢尾素+PDGF-BB组、雷帕霉素+鸢尾素+PDGF-BB组。鸢尾素(1 mg/L)、Compound C(10 μmol/L)或雷帕霉素(2 mg/L)预处理30分钟,再加入PDGF-BB(50 ng/mL)处理24小时。
评估鸢尾素对PDGF-BB诱导的VSMCs增殖的影响。
采用MTT法和EdU掺入实验检测细胞增殖活性。
检测鸢尾素对PDGF-BB诱导的VSMCs细胞周期分布的影响。
采用流式细胞术检测细胞周期,分析G0/G1期细胞比例。
检测鸢尾素对PDGF-BB诱导的VSMCs表型转换(收缩型向合成型转换)的影响。
通过RT-qPCR和Western blot检测收缩型蛋白(α-SMA、SM22-α、h1-calponin、CRBP-1)和合成型蛋白(MMP-2、MMP-9、Collagen I、Collagen III)的表达。
检测鸢尾素对PDGF-BB诱导的VSMCs自噬水平的影响。
通过Western blot检测LC3B-II/LC3B-I比值和p62蛋白表达;使用GFP-LC3腺病毒感染细胞,观察荧光斑点;通过透射电子显微镜观察自噬溶酶体的形成。
验证鸢尾素是否通过AMPK/mTOR通路介导自噬并抑制增殖。
使用AMPK抑制剂Compound C和mTOR抑制剂雷帕霉素,观察对鸢尾素作用的影响,并检测AMPK、mTOR磷酸化水平及自噬相关蛋白表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Procell | -- |
| 胎牛血清 | ExcellBio | -- | |
| A7R5细胞系 | -- | -- | |
| 药物处理 | 鸢尾素 | Sigma-Aldrich | -- |
| 血小板衍生生长因子-BB | Pepro Tech | -- | |
| Compound C | MedChem Express | -- | |
| 雷帕霉素 | MedChem Express | -- | |
| MTT实验 | MTT细胞增殖与细胞毒性检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| EdU实验 | 含Alexa Fluor 594的EdU细胞增殖检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| Hoechst 33342溶液 | Beyotime | -- | |
| 透化处理 | 0.3% TritonX-100 | Beyotime | -- |
| 流式细胞术 | 碘化丙啶 | Sigma-Aldrich | -- |
| GFP-LC3腺病毒感染 | GFP-LC3腺病毒 | Genechem | -- |
| 透射电子显微镜 | 1%锇酸 | -- | -- |
| Epon 812包埋剂 | -- | -- | |
| 醋酸铀 | -- | -- | |
| 柠檬酸铅 | -- | -- | |
| RT-qPCR | Trizol试剂 | -- | -- |
| HiScript II Q Select RT SuperMix(qPCR反转录预混液) | -- | -- | |
| qPCR SYBR Green 预混液 | -- | -- | |
| 引物 | Beijing Tsingke Biotech Co., Ltd. | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| PVDF膜 | Millipore | -- | |
| 抗α-SMA抗体 | Affinity | -- | |
| 抗SM22-α抗体 | Proteintech | -- | |
| 抗h1-calponin抗体 | Proteintech | -- | |
| 抗CRBP-1抗体 | Proteintech | -- | |
| 抗MMP-2抗体 | Proteintech | -- | |
| 抗MMP-9抗体 | Bioss | -- | |
| 抗Collagen III抗体 | Proteintech | -- | |
| 抗Collagen I抗体 | NOVUS | -- | |
| 抗磷酸化AMPK(Thr172)抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 抗mTOR抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 抗磷酸化mTOR(Ser2448)抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 抗LC3B抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 抗P62抗体 | ABclonal | -- | |
| 抗GAPDH抗体 | Goodhere | -- | |
| HRP标记的山羊抗兔二抗 | Boster | -- | |
| HRP标记的山羊抗小鼠二抗 | Boster | -- | |
| MTT实验 | 二甲基亚砜 | -- | -- |
| 微板读取 | 酶标仪 | Bio-Rad Laboratories | -- |
| 荧光显微镜 | 荧光显微镜 | Olympus | -- |
| 流式细胞术 | 流式细胞仪 | Beckman Coulter | -- |
| 透射电子显微镜 | 透射电子显微镜 | Hitachi | -- |
| Western blot | 化学发光试剂 | -- | -- |
| Image J软件 | -- | -- | |
| 统计分析 | SPSS 23.0软件 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与分组 | 细胞系A7R5来源、培养条件(DMEM+10%FBS,37℃,5%CO2)、分组及浓度(鸢尾素1 mg/L,Compound C 10 μmol/L,雷帕霉素2 mg/L,PDGF-BB 50 ng/mL) 阅读提示:Materials and Methods - Cell culture and treatment |
| 细胞增殖检测 | 细胞接种密度(MTT:3×10^3 cells/well;EdU:5×10^5 cells/well)、血清饥饿时间、处理时间(24小时) 阅读提示:Materials and Methods - MTT assay, EdU incorporation assay |
| 细胞周期分析 | 细胞接种密度(5×10^5 cells/well)、PI染色步骤 阅读提示:Materials and Methods - Flow cytometric assay |
| 自噬检测 | GFP-LC3腺病毒MOI(40)、感染时间(12小时);TEM样品制备条件(戊二醛、锇酸固定、梯度酒精脱水、Epon 812包埋、60nm切片) 阅读提示:Materials and Methods - GFP-LC3 adenovirus infection, Transmission electron microscopy analysis |
| Western blot | 蛋白提取方法、上样量、抗体稀释比例(1:1000)、二抗稀释比例(1:10000) 阅读提示:Materials and Methods - Western blot |