构建基因敲除小鼠模型
研究TP信号在APAP诱导肝损伤中的作用
使用TP−/−小鼠和巨噬细胞特异性TP敲除(TP△mac)小鼠,并给予APAP处理。
Deletion of TP signaling in macrophages delays liver repair following APAP-induced liver injury by reducing accumulation of reparative macrophage and production of HGF.
使用全身性TP敲除、巨噬细胞特异性敲除、骨髓移植、氯膦酸盐清除、巨噬细胞过继转移及体外极化实验等多个独立证据层级,并进行功能验证。
C57BL/6野生型小鼠 TP−/−小鼠 巨噬细胞特异性TP敲除(TP△mac)小鼠 骨髓嵌合小鼠
APAP剂量为300 mg/kg,腹腔注射,禁食过夜后处理 巨噬细胞特异性TP敲除小鼠(TP△mac)通过TP-floxed与LysM-Cre杂交获得 骨髓移植后8周给予APAP,辐照剂量9.0 Gy HGF治疗剂量50 mg/kg,腹腔注射,APAP后2和24小时 巨噬细胞过继转移在APAP后4小时经静脉注射1×10^6个细胞
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
研究TP信号在APAP诱导肝损伤中的作用
使用TP−/−小鼠和巨噬细胞特异性TP敲除(TP△mac)小鼠,并给予APAP处理。
比较不同基因型小鼠APAP处理后的损伤程度和修复能力
检测血清ALT水平、肝坏死面积和PCNA表达。
验证巨噬细胞在肝脏修复中的作用及TP信号在其中的功能
使用氯膦酸盐脂质体清除巨噬细胞,或过继转移体外培养的BM来源巨噬细胞。
探究TP信号对巨噬细胞极化的影响
用LPS/IFN-γ或IL-4刺激BM来源巨噬细胞,并用U46619和SQ22536处理。
确定TP信号在骨髓来源细胞中的作用
构建BM嵌合小鼠,移植WT或TP−/−骨髓细胞后给予APAP。
验证HGF能否减轻APAP肝损伤并促进修复
给TP△mac小鼠腹腔注射HGF,评估肝损伤和修复指标。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物处理 | 对乙酰氨基酚 | Sigma-Aldrich | -- |
| 药物处理 | 奥扎格雷钠 | Takata Pharmaceutical Co. | -- |
| 肝细胞生长因子 | Selleck | -- | |
| RNA提取 | RNAiso Plus试剂 | Takara Bio | -- |
| 逆转录PCR | ReverTra Ace qPCR RT试剂盒 | TOYOBO | -- |
| 实时荧光定量PCR | TB Green Premix Ex Taq II | Takara Bio | -- |
| 血栓素B2测量 | 血栓素B2 ELISA试剂盒 | Cayman Chemical | -- |
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Gibco | -- |
| 细胞因子处理 | 巨噬细胞集落刺激因子 | BioLegend | -- |
| 脂多糖 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 重组小鼠干扰素-γ | BioLegend | -- | |
| 重组小鼠白介素-4 | BioLegend | -- | |
| TP激动剂处理 | U46619 | Cayman Chemical | -- |
| 腺苷酸环化酶抑制 | SQ22536 | Selleck | -- |
| 免疫染色 | 抗PCNA抗体 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| Histofine Simple Stain MAX PO (MULTI) | Nichirei | -- | |
| 免疫荧光 | 抗TP抗体 | Cayman Chemical | -- |
| 抗TXS抗体 | Bioss | -- | |
| 抗CD68抗体 | Bio-Rad Laboratories | -- | |
| 抗CD41抗体 | Bio-Rad Laboratories | -- | |
| 抗HGF抗体 | Proteintech Group | -- | |
| Alexa Fluor 488偶联驴抗兔IgG | Molecular Probes | -- | |
| Alexa Fluor 594偶联驴抗兔IgG | Molecular Probes | -- | |
| Alexa Fluor 647偶联驴抗兔IgG | Molecular Probes | -- | |
| DAPI | -- | -- | |
| 流式细胞术 | 抗小鼠CD16/32抗体 | BioLegend | -- |
| PE偶联抗CD45 | BioLegend | -- | |
| APC/CY7偶联抗Ly6G | BioLegend | -- | |
| PE/Cy7偶联抗CD11b | BioLegend | -- | |
| Brilliant Violet 510偶联抗Ly6C | BioLegend | -- | |
| 抗F4/80 | BioLegend | -- | |
| FACSVerse流式细胞仪 | BD Biosciences | -- | |
| 显微镜 | Biozero BZ-700系列显微镜 | Keyence | -- |
| 共聚焦显微镜 | LSM710共聚焦显微镜 | Carl Zeiss | -- |
| 辐照 | MBR-1505R X射线辐照仪 | Hitachi Medico | -- |
| ALT测量 | Dri-Chem 7000生化分析仪 | Fujifilm | -- |
| 图像分析 | ImageJ软件1.50i版 | National Institutes of Health | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 小鼠品系:C57BL/6 WT、TP−/−、TP△mac及对照;年龄8周;性别雄性;饲养条件 阅读提示:Methods: Animals |
| APAP处理 | APAP剂量300 mg/kg;给药方式腹腔注射;溶剂为无菌无热原生理盐水;禁食过夜;检测时间点 阅读提示:Methods: Animal procedures |
| 骨髓移植 | 供体和受体年龄;辐照剂量9.0 Gy;移植细胞数1×10^6;移植后恢复时间8周 阅读提示:Methods: Bone marrow transplantation |
| 巨噬细胞清除 | 氯膦酸盐脂质体剂量100 μL/鼠;给药时间APAP前48小时;给药途径腹腔注射 阅读提示:Methods: Clodronate |
| 体外巨噬细胞极化 | BM来源巨噬细胞培养天数7天;LPS 10 ng/mL;IFN-γ 20 ng/mL;IL-4 20 ng/mL;刺激时间18小时;U46619浓度1 μM;SQ22536浓度100 μM 阅读提示:Methods: Cell preparation and culture |
| HGF治疗 | HGF剂量50 mg/kg;给药时间APAP后2和24小时;给药途径腹腔注射;溶剂含4% DMSO 阅读提示:Methods: Treatments |