BM-MSCs的分离、培养与鉴定
获取并验证BM-MSCs的干细胞特性,并评估其ncRNA表达。
从大鼠股骨和胫骨分离骨髓细胞,培养至第3代,通过流式细胞术鉴定表面标志物(CD105、CD90、CD73阳性;CD45、CD34、HLA-DR阴性);检测BM-MSCs及其条件培养基中Neat-1、Hotair-1、miR-21-5p、miR-144-5p、miR-664-5p的表达。
Bone marrow mesenchymal stem cells expressing Neat-1, Hotair-1, miR-21, miR-644, and miR-144 subsided cyclophosphamide-induced ovarian insufficiency by remodeling the IGF-1-kisspeptin system, ovarian apoptosis, and angiogenesis.
包括体外BM-MSCs培养与鉴定(流式细胞术)、体内动物模型(环磷酰胺诱导POI大鼠)及移植实验,并检测基因表达(RT-qPCR)、蛋白表达(免疫组化)、组织学及激素水平,涵盖多个验证层次。
Sprague Dawley大鼠环磷酰胺诱导POI模型 BM-MSCs(体外培养) 大鼠成纤维细胞系(对照)
POI建模:环磷酰胺IP 50 mg/kg单次,随后8 mg/kg/天连续14天 BM-MSCs移植剂量:2×10^7细胞/大鼠,IP单次 分组:对照组(PBS)、POI组、POI+BM-MSCs组,每组20只 检测时间:初始环磷酰胺给药后12周收集样本 主要检测:血清激素(FSH、LH、E2、PRL、AMH)、氧化应激标志物、mRNA表达(RT-qPCR)、免疫组化(VEGF、Kiss-1)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取并验证BM-MSCs的干细胞特性,并评估其ncRNA表达。
从大鼠股骨和胫骨分离骨髓细胞,培养至第3代,通过流式细胞术鉴定表面标志物(CD105、CD90、CD73阳性;CD45、CD34、HLA-DR阴性);检测BM-MSCs及其条件培养基中Neat-1、Hotair-1、miR-21-5p、miR-144-5p、miR-664-5p的表达。
建立环磷酰胺诱导的卵巢功能不全模型,并评估BM-MSCs移植的治疗效果。
大鼠随机分为3组(对照组、POI组、POI+BM-MSCs组),POI组腹腔注射环磷酰胺(50 mg/kg单次,随后8 mg/kg/天连续14天);POI+BM-MSCs组在POI诱导成功后腹腔注射2×10^7个BM-MSCs。
评估血清激素水平、卵巢组织氧化应激、基因表达及组织学变化。
在初始环磷酰胺给药后12周,采集血液和卵巢组织。通过ELISA检测血清FSH、LH、E2、PRL、AMH水平;用试剂盒测定卵巢组织MDA、SOD、CAT、GSH、TAC;通过RT-qPCR检测卵巢、下丘脑、垂体中相关基因表达;进行H&E染色和免疫组化检测VEGF-A和Kiss-1。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Lonza Bioscience | -- |
| 胎牛血清 | Lonza Bioscience | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Lonza Bioscience | -- | |
| 胰蛋白酶-EDTA | Lonza Bioscience | -- | |
| 磷酸盐缓冲液 | Lonza Bioscience | -- | |
| 细胞标记 | PKH26红色荧光染料 | Sigma Aldrich | PKH26GL |
| 药物处理 | 环磷酰胺 | Baxter | -- |
| RNA提取 | Qiazol试剂 | Qiagen | -- |
| RT-qPCR | 高性能逆转录cDNA试剂盒 | Applied Biosystem | -- |
| TopReal SYBR Green预混液 | Enzynomics | -- | |
| miRNA RT-qPCR | miScript II逆转录试剂盒 | Qiagen | -- |
| ELISA | FSH、LH、PRL、E2 ELISA试剂盒 | Cusabio | -- |
| AMH ELISA试剂盒 | MyBioSource | MBS453381 | |
| 氧化应激检测 | MDA、SOD、GSH、CAT、TAC检测试剂盒 | Diagnostic and Research Reagents | -- |
| RT-qPCR | NanoDrop ND-1000分光光度计 | NanoDrop Technologies | ND-1000 |
| RotorGene Q 2 plex实时荧光定量PCR仪 | Qiagen | -- | |
| 免疫组化 | 抗VEGF-A抗体(兔多克隆) | ABclonal | A0280 |
| 抗kisspeptin抗体(兔多克隆) | Bioss | bs-0749R |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 大鼠品系(Sprague Dawley)、性别(雌性)、年龄(6-8周)、体重(150-200g)、环磷酰胺剂量方案(50 mg/kg单次+8 mg/kg/天连续14天,IP)、对照组处理(0.25 mL PBS每日IP连续14天) 阅读提示:Materials and methods: Animals, Experimental design |
| BM-MSCs制备与移植 | BM-MSCs来源(大鼠股骨和胫骨)、培养条件(DMEM+10%FBS、37°C、5%CO2)、传代数(第3代)、移植剂量(2×10^7细胞/大鼠)、给药途径(IP)、移植时间(POI诱导成功后) 阅读提示:Materials and methods: Isolation and culturing of BM-MSCs, Experimental design |
| 样本采集与检测 | 时间点(初始环磷酰胺后12周)、血清获取方法(眶后静脉丛)、卵巢组织处理(RNA提取、组织匀浆、组织学固定)、检测指标(激素、氧化应激标志物、基因表达、形态学) 阅读提示:Materials and methods: Blood and tissue sample collection, Assay of serum hormonal level and ovarian oxidative stress markers, Real-time PCR analysis, Histological and immunohistochemical analysis |
| 基因表达分析 | 内参(Gapdh用于mRNA和lncRNA,U6用于miRNA)、RT-qPCR方法(2-ΔΔCT)、引物序列(见表1) 阅读提示:Materials and methods: Real-time PCR analysis, Table 1 |
| 统计分析 | 统计方法(单因素方差分析+ Tukey事后检验)、显著性水平(p<0.05)、数据表示(均值±SEM) 阅读提示:Materials and methods: Statistical analysis |