化疗诱导的NAT10对ACLY的乙酰化促进其核积累和乙酰辅酶A的产生,从而驱动肝细胞癌的化疗耐药性

Chemotherapy-induced acetylation of ACLY by NAT10 promotes its nuclear accumulation and acetyl-CoA production to drive chemoresistance in hepatocellular carcinoma.

作者信息Yuying Wang, Kunqi Su, Chang Wang, Tao Deng, Xiaofeng Liu, Shiqi Sun, Yang Jiang, Chunfeng Zhang, Baocai Xing, Xiaojuan Du
PMID39085201
发布时间2024-07-31
DOI10.1038/s41419-024-06951-9

实验完整度

包括体外细胞实验、体内小鼠异种移植模型、患者样本分析,以及深入的机制验证(免疫共沉淀、GST pull-down、质谱、ChIP、乙酰化位点突变等)。

主要模型

Huh7细胞及NAT10敲低/过表达细胞系 Huh7 oxaliplatin耐药细胞 BALB/c裸鼠异种移植瘤模型 HCC患者组织样本

重点核对

NAT10表达上调及预后相关性 NAT10敲低或过表达对化疗药物IC50的影响 ACLY K468乙酰化水平及核定位 核乙酰辅酶A水平及H3K27ac变化 体内异种移植瘤对奥沙利铂的反应

摘要

化疗耐药严重阻碍了超过一半的肝细胞癌(HCC)患者的化疗疗效。然而,化疗诱导的化疗耐药基因上调的机制尚未完全阐明。本研究揭示了一种控制核乙酰辅酶A产生以激活HCC中化疗耐药基因转录的新机制。NAT10在HCC组织中上调,其上调与HCC患者的预后不良相关。NAT10在化疗耐药的HCC细胞中也上调。靶向NAT10可增加化疗在HCC细胞和小鼠异种移植瘤中的细胞毒性。化疗后,NAT10从核仁转位至细胞核,以激活CYP2C9和PIK3R1的转录。此外,核乙酰辅酶A被NAT10特异性上调。机制上,NAT10在细胞核中与ACLY结合,并在化疗时乙酰化ACLY的K468位点,以抵消SQSTM1介导的降解。ACLY K468-Ac特异性在细胞核中积累,并通过增强H3K27ac增加核乙酰辅酶A的产生,以激活CYP2C9和PIK3R1的转录。重要的是,K468是ACLY核定位所必需的。显著地,ACLY K468-Ac在HCC组织中上调,而消除ACLY K468-Ac使HCC细胞和小鼠异种移植瘤对化疗敏感。总之,这些发现将NAT10确定为一种新的化疗耐药驱动因子,阻断NAT10介导的ACLY K468-Ac具有减轻HCC化疗耐药的潜力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
化疗诱导的NAT10如何通过调控核乙酰辅酶A产生来驱动HCC化疗耐药?
核心机制
化疗后NAT10从核仁转位至细胞核,与ACLY结合并乙酰化其K468位点,阻止SQSTM1介导的降解,促进ACLY核积累,增加核乙酰辅酶A产生,增强CYP2C9和PIK3R1启动子上的H3K27ac,从而激活其转录,驱动化疗耐药。
主要证据
在HCC细胞和小鼠异种移植瘤中,NAT10敲低或ACLY K468R突变体增强化疗敏感性;质谱鉴定K468为NAT10乙酰化位点;ChIP显示H3K27ac及转录激活依赖于ACLY K468乙酰化。
研究意义
该研究揭示NAT10-ACLY K468-Ac轴是化疗耐药的新驱动因素,阻断该轴可能为增强HCC化疗疗效提供治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证NAT10表达与预后相关性

评估NAT10在HCC组织和化疗耐药细胞中的表达及其与患者预后的关系。

分析HPA数据库中HCC组织NAT10的IHC数据,并在奥沙利铂耐药的Huh7细胞中检测NAT10蛋白水平。

2

评估NAT10对化疗敏感性的影响

检测NAT10敲低或过表达是否改变HCC细胞对化疗药物的敏感性。

在NAT10敲低或过表达的Huh7细胞中测定阿霉素和奥沙利铂的IC50,并在体内异种移植瘤模型中验证。

3

转录组和通路分析

鉴定NAT10调控的下游基因和相关信号通路。

对NAT10敲低和对照细胞进行RNA-seq,并进行KEGG富集分析。

4

验证下游基因转录和蛋白表达

确认NAT10调控CYP2C9和PIK3R1的表达。

通过RT-qPCR和Western blot检测NAT10敲低或过表达细胞中CYP2C9、PIK3R1的mRNA和蛋白水平,并检测AKT磷酸化。

5

检测染色质修饰和乙酰辅酶A水平

评估NAT10对H3K27ac和核乙酰辅酶A水平的影响。

通过ChIP检测PIK3R1和CYP2C9启动子上的H3K27ac水平;通过细胞分级和乙酰辅酶A检测试剂盒测量核和细胞质乙酰辅酶A水平。

6

分析NAT10与ACLY的相互作用

确定NAT10是否与ACLY直接结合及其结合区域。

通过免疫共沉淀、GST pull-down实验检测NAT10与ACLY的结合,并绘制结合域。

7

验证ACLY的乙酰化位点

确认NAT10乙酰化ACLY的具体赖氨酸残基。

通过体外乙酰化实验和质谱分析鉴定ACLY的乙酰化位点,并构建K468R突变体验证。

8

研究ACLY K468乙酰化的功能

探索ACLY K468乙酰化对核定位、乙酰辅酶A产生及下游基因转录的作用。

通过免疫荧光观察ACLY K468R和K468Q的定位,检测核乙酰辅酶A水平和H3K27ac水平。

9

评估体内化疗耐药性

验证ACLY K468乙酰化是否在体内赋予化疗耐药性。

将稳定表达GFP、GFP-ACLY或GFP-ACLY K468R的Huh7细胞皮下植入裸鼠,给予奥沙利铂治疗,测量肿瘤体积和重量。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基----
胎牛血清----
Lipofectamine 2000转染试剂Invitrogen--
奥沙利铂Aladdin61825-94-3
阿霉素MedChemExpressHY-15142A
MG132MedChemExpressHY-13259
抗ACLY抗体ABclonalA3719
抗PIK3R1抗体ABclonalA4992
抗AKT抗体ABclonalA22412
抗H3K27ac抗体ABclonalA7253
抗β-肌动蛋白抗体ABclonalAC004
抗α-微管蛋白抗体ABclonalAC012
抗拓扑异构酶I抗体ABclonalA12409
抗CYP2C9抗体Biossbs-2887R
抗Flag抗体TransgenHT201
抗GFP抗体TransgenHT801
抗磷酸化AKT抗体Abcamab81213
抗乙酰化赖氨酸抗体Cell Signaling Technology9441
抗NAT10抗体----
蛋白A琼脂糖珠GE Healthcare--
TRIzol试剂Invitrogen--
乙酰辅酶A检测试剂盒BiossAK341
CCK8试剂Yeasen--
Ni-NTA琼脂糖Qiagen--
谷胱甘肽琼脂糖4BGE Healthcare--
TCS SP8 DIVE MP FLIM共聚焦显微镜Leica--
Orbitrap Velos Pro质谱仪Thermo--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
NAT10表达与预后分析
HPA数据库样本量及分组(NAT10高表达n=79,低表达n=286),IHC评分标准。
阅读提示:参见Fig. 1A-B及Results部分
细胞培养与药物处理
Huh7细胞培养条件(DMEM+10% FBS),奥沙利铂耐药细胞建立方法(50μM处理8小时),药物处理浓度和时间(阿霉素、奥沙利铂、CHX、MG132的具体浓度)。
阅读提示:参见Material and methods中的Cell culture及药物处理相关描述
IC50测定
细胞接种密度,药物浓度梯度,处理时间(48h或72h),CCK8检测波长(450nm)。
阅读提示:参见Material and methods中的IC50 determination
异种移植瘤模型
小鼠品系(BALB/c裸鼠),周龄(4周),性别(雌性),细胞接种数量(5×10^6),处理方案(奥沙利铂5mg/kg腹腔注射每周两次),肿瘤测量频率(每三天)。
阅读提示:参见Material and methods中的Nude mice xenograft models及Fig. 1H, 8C
核乙酰辅酶A检测
细胞分级方法(Buffer A和Buffer T),乙酰辅酶A检测试剂盒(Bioss,AK341),测量波长(340nm)。
阅读提示:参见Material and methods中的Cell fractionation experiment和Acetyl-CoA concentration measurement
质谱鉴定乙酰化位点
体外乙酰化反应条件(乙酰-CoA浓度、温度、时间),LC-MS/MS参数,数据处理软件(Proteome Discoverer 1.4)。
阅读提示:参见Material and methods中的In vitro acetylation experiment和Identification of acetylation site in ACLY by LC-MS/MS analysis