CCR7和CD48作为小儿肾移植后与M1巨噬细胞相关的急性排斥反应的预测靶点

CCR7 and CD48 as Predicted Targets in Acute Rejection Related to M1 Macrophage after Pediatric Kidney Transplantation.

作者信息Jie Zhang, Jun Pei, Chengjun Yu, Jin Luo, Yifan Hong, Yi Hua, Guanghui Wei
PMID38957433
发布时间2024-06
DOI10.1155/2024/6908968

实验完整度

中

研究包含生物信息学分析(DEGs、PPI、免疫浸润)和大鼠肾移植模型验证(HE、IHC、Western blot),但缺乏功能验证和机制验证,未进行临床样本验证。

主要模型

GSE174020数据集(儿科肾移植活检样本) 大鼠肾移植模型(SD和Wistar大鼠)

重点核对

Hub基因CCR7和CD48在AR组中的表达上调(基于GSE174020) 外部验证集GSE14328(儿科)、GSE138043和GSE9493(成人)中的表达趋势一致 大鼠同种异体肾移植模型(捐赠者Wistar,受体SD) HE染色、免疫组化和Western blot验证AR模型和Hub基因表达

摘要

背景:肾移植(KT)是终末期肾病的最佳治疗方法。尽管随着免疫抑制剂的发展,移植物的长期和短期存活率显著提高,但急性排斥反应(AR)仍然是攻击移植物和患者的主要风险因素。先天免疫应答在排斥反应中发挥重要作用。因此,我们的目标是确定与KT后AR相关的先天性免疫生物标志物,并为未来的研究提供支持。材料与方法:基于NCBI基因表达综合数据库(GEO)中的数据集GSE174020进行差异表达基因(DEGs)分析,然后与分子特征数据库中的GSE5099 M1巨噬细胞相关基因结合。我们随后鉴定了与M1巨噬细胞相关的DEGs,定义为DEM1Gs,并进行了基因本体论(GO)和京都基因与基因组百科全书(KEGG)富集分析。使用Cibersort分析AR期间的免疫细胞浸润。同时,我们使用蛋白质-蛋白质相互作用(PPI)网络和Cytoscape软件来确定关键基因。使用来自儿科患者的数据集GSE14328以及来自成人患者的数据集GSE138043和GSE9493验证Hub基因。另外的验证采用大鼠肾移植模型,进行HE染色、免疫组织化学染色和Western Blot。在HPA数据库中检索Hub基因以确认其表达。最后,我们构建了转录因子(TF)-Hub基因和miRNA-Hub基因的相互作用网络。结果:与正常组相比,AR组中有366个基因上调,423个基因下调。随后在这些基因中发现了106个与M1巨噬细胞相关的基因。GO和KEGG富集分析显示,这些基因主要涉及细胞因子结合、抗原结合、NK细胞介导的细胞毒性、免疫受体的激活和免疫应答,以及炎症性NF-κB信号通路的激活。通过PPI和Cytoscape分析,确定了两个Hub基因,即CCR7和CD48。它们已在来自儿科患者和成人患者的外部验证集以及动物实验中得到验证。在HPA数据库中,CCR7和CD48主要在T细胞、B细胞、巨噬细胞以及这些免疫细胞分布的组织中表达。除了免疫浸润外,AR组中CD4+T、CD8+T、NK细胞、NKT细胞和单核细胞显著增加,这与Hub基因筛选的结果高度一致。最后,我们预测了19个转录因子和32个miRNA可能与Hub基因相互作用。结论:通过全面的生物信息学分析,我们的发现可能为肾移植后的急性排斥反应提供预测和治疗靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
肾移植后急性排斥反应中与M1巨噬细胞相关的分子标志物是什么?
核心机制
CCR7和CD48作为Hub基因,与M1巨噬细胞相关,参与免疫细胞浸润和炎症反应,可能通过NF-κB信号通路等机制介导排斥反应。
主要证据
通过GEO数据集GSE174020进行DEGs分析,与M1巨噬细胞基因集取交集得到DEM1Gs,经PPI和Cytoscape筛选出CCR7和CD48,并在外部数据集和大鼠肾移植模型中验证表达上调。
研究意义
CCR7和CD48可能作为肾移植后急性排斥反应的预测和治疗靶点,为未来研究提供基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

数据获取与差异表达基因分析

识别AR和正常组之间的差异表达基因

从GEO数据库获取GSE174020数据集(含AR和正常组),使用log2fold > 1.0和adj. P < 0.05标准筛选DEGs。

2

M1巨噬细胞相关基因的鉴定

确定与M1巨噬细胞相关的DEGs

将DEGs与M1巨噬细胞相关基因集GSE5099取交集,得到DEM1Gs。

3

Hub基因的鉴定

通过网络分析筛选关键基因

使用STRING和Cytoscape构建PPI网络,通过cytohubba的Degree、MNC、MCC、Radiality和Closeness算法取交集确定Hub基因(CCR7和CD48)。

4

外部数据集验证

验证Hub基因在不同人群中的表达一致性

在儿科数据集GSE14328和成人数据集GSE138043、GSE9493中分析CCR7和CD48的表达。

5

动物模型验证

在体内模型中验证Hub基因的表达

建立大鼠肾移植模型(同种异体移植和同系移植),通过HE染色、免疫组化(CD3, CD4, CD8, F4/80)和Western blot(TNF-α, Bax, NGAL, CCR7, CD48)检测病理变化和蛋白表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
肝素化林格氏液----
RIPA裂解液----
蛋白酶抑制剂混合物MCEHY-K000
5x上样缓冲液MCEWB2100
CD3抗体proteintech176171-AP
CD4抗体biossbs-0766R
CD8抗体NOVUSNBP-49045SS
F4/80抗体abclonalA23788
TNF-α抗体huabioER65189
Bax抗体huabioET1603-34
NGAL抗体abclonalA3176
β-肌动蛋白抗体abwaysab0039
GAPDH抗体abwaysab0037

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
数据库分析
数据集GSE174020的样本来源、分组(AR vs 正常)
阅读提示:Methods 2.1
Hub基因筛选
PPI网络置信度阈值(0.4)和算法(Degree, MNC, MCC, Radiality, Closeness)
阅读提示:Methods 2.2
动物模型
大鼠品系(SD和Wistar)、年龄(8-10周)、性别(未明确)、样本量(每组n=4)、移植方式(同种异体/同系)、麻醉剂量(2%戊巴比妥钠40mg/kg)、肝素用量(5ml 25u/ml)、移植后时间(7天)
阅读提示:Methods 2.3
病理和蛋白检测
HE、免疫组化(CD3, CD4, CD8, F4/80)的抗体稀释度(1:200)、Western blot的抗体浓度(未明确)
阅读提示:Methods 2.6和2.7