建立大鼠脊髓损伤模型及IRFV处理
评估IRFV对SCI大鼠运动功能和组织病理损伤的影响。
对SD大鼠进行T10椎板切除并用动脉瘤夹夹闭脊髓10 s建立SCI模型,术后以10 mg/(kg·d)的IRFV灌胃28天,通过BBB评分、Nissl染色和LFB染色评估运动功能、神经元存活和髓鞘完整性。
Iridoids rich fraction from Valeriana jatamansi Jones promotes axonal regeneration and motor functional recovery after spinal cord injury through activation of the PI3K/Akt signaling pathway.
包含体内大鼠SCI模型和体外PC12细胞氧化损伤模型,并通过通路抑制剂LY294002进行功能验证和机制验证,证据层级完整。
大鼠脊髓损伤(SCI)模型 PC12细胞氧化损伤模型
IRFV给药剂量10 mg/(kg·d)口服,持续28天 手术方式:T10椎板切除后,70 g动脉瘤夹夹闭脊髓10 s PC12细胞H2O2处理浓度400 μmol/L,处理2 h IRFV细胞处理浓度10 μg/mL,处理24 h LY294002浓度:体内1 mg/(kg·d)腹腔注射,体外10 μmol/L
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估IRFV对SCI大鼠运动功能和组织病理损伤的影响。
对SD大鼠进行T10椎板切除并用动脉瘤夹夹闭脊髓10 s建立SCI模型,术后以10 mg/(kg·d)的IRFV灌胃28天,通过BBB评分、Nissl染色和LFB染色评估运动功能、神经元存活和髓鞘完整性。
探究IRFV对SCI大鼠轴突再生和PI3K/Akt信号通路的影响。
术后28天,通过免疫荧光和Western blot检测脊髓组织中NF200、GAP43、p-Akt和Akt的表达。
确定H2O2和IRFV的最佳干预浓度,并建立细胞模型。
PC12细胞用不同浓度H2O2处理2 h,确定400 μmol/L为损伤浓度;之后用不同浓度IRFV处理24 h,确定10 μg/mL为药物浓度。观察细胞形态和活力。
验证IRFV是否通过激活PI3K/Akt信号通路促进PC12细胞轴突再生。
PC12细胞分为Control、H2O2、H2O2+IRFV、H2O2+IRFV+LY294002四组,通过CCK-8检测细胞活力,免疫荧光和Western blot检测NF200、GAP43、p-PI3K、PI3K、p-Akt、Akt的表达。
进一步确证IRFV通过激活PI3K/Akt信号通路在体内发挥治疗作用。
对SCI大鼠在IRFV治疗基础上腹腔注射LY294002(1 mg/(kg·d)),通过Western blot检测通路蛋白,免疫荧光和Western blot检测NF200、GAP43,Nissl和LFB染色评估病理,BBB评分评估运动功能。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | 青霉素 | -- | -- |
| 羧甲基纤维素钠 | -- | -- | |
| 组织染色 | 固蓝染色液 | Solarbio | 北京 |
| 甲苯胺蓝染色液 | Solarbio | 北京 | |
| 免疫荧光 | EDTA溶液 | Solarbio | 北京 |
| Triton X-100 | Solarbio | 北京 | |
| 牛血清白蛋白 | -- | -- | |
| 抗神经丝蛋白200(NF200)一抗 | Cell Signalling Technology | 2836 | |
| 抗生长相关蛋白43(GAP43)一抗 | Cell Signalling Technology | 8945 | |
| 兔二抗 | Proteintech | SA00013-1 | |
| 小鼠二抗 | Proteintech | SA00013-1 | |
| DAPI | -- | -- | |
| 尼康ECLIPSE CI-L显微镜 | Nikon | -- | |
| Western blotting | 蛋白质提取试剂盒 | Solarbio | 北京 |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| 抗NF200一抗 | Cell Signalling Technology | 2836 | |
| 抗GAP43一抗 | Cell Signalling Technology | 8945 | |
| 抗PI3K一抗 | Cell Signalling Technology | 4292 | |
| 抗p-PI3K一抗 | Affinity | AF3242 | |
| 抗Akt一抗 | Bioss | bs-6951R | |
| 抗p-Akt一抗 | Bioss | bsm-60645R | |
| 抗GAPDH一抗 | Cell Signalling Technology | 2118 | |
| HRP标记二抗 | Cell Signalling Technology | 7074,7076 | |
| ECL化学发光试剂 | -- | -- | |
| Azure Biosystems近红外荧光成像系统 | Azure Biosystems | -- | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | 美国 |
| PC12细胞 | Wuhan Pricella Life Science and Technology Co. | -- | |
| 细胞处理 | 过氧化氢 | -- | -- |
| LY294002 | -- | -- | |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂 | MedChemExpress | 美国 |
| 分光光度计 | ThermoFisher Scientific | 美国 | |
| 统计分析 | SPSS 25.0统计软件 | SPSS | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 大鼠品系、性别、体重、手术方式(T10椎板切除、夹闭力度和时间)、麻醉方式、术后护理。 阅读提示:见Methods 2.2 Animals and SCI model |
| IRFV提取 | 提取溶剂、料液比、提取时间、柱层析条件(树脂类型、吸附量、流速)、洗脱条件、总环烯醚萜含量。 阅读提示:见Methods 2.1 Extraction and preparation of IRFV |
| 动物给药 | IRFV给药剂量、给药途径、溶媒、给药周期;LY294002给药剂量、途径、周期。 阅读提示:见Methods 2.2 Animals and SCI model |
| 细胞模型建立 | PC12细胞来源、培养条件、H2O2损伤浓度和处理时间、IRFV处理浓度和时间。 阅读提示:见Methods 2.5 Cell culture and drug treatment |
| 行为学评估 | BBB评分时间点(0,7,14,21,28天)、评分人员独立性、双盲设置。 阅读提示:见Methods 2.3 Behavioral testing |
| 蛋白表达检测 | 抗体信息(NF200、GAP43、PI3K、p-PI3K、Akt、p-Akt、GAPDH)、稀释比例、二抗信息、成像系统。 阅读提示:见Methods 2.8 Western blotting |
| 通路抑制验证 | LY294002浓度(体外10 μmol/L,体内1 mg/kg)、给药时间、给药途径。 阅读提示:见Methods 2.5 Cell culture and drug treatment 和 2.2 Animals and SCI model |