Prrx1与miR-140-3p之间的相互负反馈调控再生鹿茸中的快速软骨形成

Reciprocal negative feedback between Prrx1 and miR-140-3p regulates rapid chondrogenesis in the regenerating antler.

作者信息Pengfei Hu, Guokun Zhang, Hengxing Ba, Jing Ren, Jiping Li, Zhen Wang, Chunyi Li
PMID38643083
发布时间2024-04
DOI10.1186/s11658-024-00573-x

实验完整度

combined

主要模型

鹿茸生长中心RM细胞 C3H/10T1/2细胞系 293T细胞 裸鼠异种鹿茸模型

重点核对

RM细胞分离培养条件:胶原酶消化(200 U/ml 胶原酶I和150 U/ml 胶原酶II,37°C,20 min) 3D软骨形成培养:2×10^4细胞/孔,无TGFβ1,诱导14-21天 miR-140-3p agomir/antagomir注射剂量:0.15 mg/管,60 µl生理盐水稀释,每只小鼠20 µl,每周2-3次,持续3周 Prrx1和miR-140-3p表达调控:慢病毒感染和嘌呤霉素筛选(72小时)

摘要

在生长阶段,鹿茸表现出非常快速的软骨形成速率。鹿茸由其生长中心储备间充质(RM)细胞形成,这些细胞已被发现是配对相关同源盒1(Prrx1)阳性骨膜细胞的衍生物。然而,驱动快速软骨形成的潜在机制尚不清楚。在此,通过RNA测序和ATAC测序分析了鹿茸生长中心内不同分化阶段三个组织层(RM、前软骨和软骨)的miRNA表达谱和染色质状态。我们发现miR-140-3p是在快速生长的鹿茸中上调程度最大的miRNA,从RM层到软骨层逐渐增加。我们还表明Prrx1是miR-140-3p的关键上游调节因子,这通过RM细胞的Prrx1 CUT&Tag测序得到进一步证实。通过多种方法(三维软骨形成培养和异种鹿茸模型),我们证明Prrx1和miR-140-3p在鹿茸生长中心起相互负反馈作用,下调PRRX1/上调miR-140-3p促进了RM细胞和异种鹿茸的快速软骨形成。因此,我们得出结论,Prrx1和miR-140-3p之间的相互负反馈对于平衡再生鹿茸中的间充质增殖和软骨分化至关重要。我们进一步提出,再生鹿茸中软骨形成的机制将为帮助理解人类软骨再生和修复的调节提供参考。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
驱动再生鹿茸快速软骨形成的潜在机制是什么?特别关注miRNA和转录因子Prrx1的调控作用。
核心机制
Prrx1和miR-140-3p在鹿茸生长中心形成相互负反馈:Prrx1通过结合miR-140-3p上游开放染色质区域抑制其表达,而miR-140-3p通过靶向Prrx1 3'UTR下调其表达,从而平衡间充质增殖和软骨分化,促进快速软骨形成。
主要证据
通过miRNA-seq、ATAC-seq、CUT&Tag-seq和双荧光素酶实验证实Prrx1抑制miR-140-3p,miR-140-3p靶向Prrx1;3D软骨形成培养显示miR-140-3p上调或Prrx1下调增强软骨形成;异种鹿茸模型证实miR-140-3p过表达促进软骨形成。
研究意义
揭示了鹿茸快速软骨形成的调控机制,为理解人类软骨再生和修复的调节提供参考。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

miRNA表达谱分析

鉴定快速软骨形成中关键的miRNA。

对鹿茸生长中心RM、PC、CA三个组织层进行miRNA测序,比较差异表达miRNA,筛选与软骨形成相关的关键调控因子。

2

染色质可及性分析(ATAC-seq)

识别miR-140-3p上游调控区域和潜在转录因子。

对RM、PC、CA组织层进行ATAC测序,分析miR-140-3p启动子区域的开放染色质,并通过motif分析预测上游转录因子。

3

Prrx1 CUT&Tag测序

验证Prrx1在miR-140-3p调控区域的直接结合。

对RM细胞进行Prrx1 CUT&Tag测序,分析Prrx1在全基因组的结合位点,特别是miR-140-3p启动子区域的结合。

4

双荧光素酶报告基因实验

验证Prrx1与miR-140-3p的相互抑制关系。

构建包含ATAC/CUT&Tag峰区域的pGL3载体,与Prrx1表达载体共转染293T细胞,检测荧光素酶活性;构建包含miR-140-3p结合位点的pmirGLO载体,与miR-140-3p mimic共转染,检测荧光素酶活性。

5

RM细胞分离与体外培养

建立RM细胞体外模型以研究Prrx1和miR-140-3p的功能。

从鹿茸生长中心分离RM细胞,进行体外培养和鉴定(免疫荧光检测MSC标记),并建立慢病毒介导的Prrx1/miR-140-3p过表达和敲低细胞系。

6

3D软骨形成分化

评估Prrx1和miR-140-3p对RM细胞软骨形成能力的影响。

使用Nunclon Sphera 3D培养系统诱导RM细胞软骨形成,无TGFβ1,观察软骨球形成并通过阿尔辛蓝染色和软骨标志物(Sox9, Col II, Acan)表达评估分化。

7

异种鹿茸模型

在体内验证miR-140-3p/Prrx1对鹿茸软骨形成的影响。

将RM组织移植到裸鼠额头皮下,形成异种鹿茸,并注射miR-140-3p agomir或antagomir,观察生长和软骨形成情况。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基----
胎牛血清----
胶原酶I----
胶原酶II----
嘌呤霉素Solarbio--
Nunclon Sphera 3D培养系统----
软骨形成分化培养基OriCell--
成骨分化培养基OriCell--
成脂分化培养基OriCell--
茜素红----
油红O----
DAPI----
抗Prrx1抗体Absinabs134576
抗CD90抗体Proteintech66766-1-lg
抗CD73抗体Proteintech12231-1-AP
抗Nestin抗体BIOSSbs-0008R
抗CD34抗体Proteintech14486-1-AP
二抗ProteintechSA00009-1,
抗Prrx1抗体Absinabs134576
二抗antibodies-onlineABIN101961
Lipofectamine 3000转染试剂Invitrogen--
EVOS M5000显微镜Thermo Fisher--
Invitrogen EVOS显微镜Invitrogen--
Spark多功能酶标仪TECAN--
qTOWER3G荧光定量PCR仪Analytik Jena--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
RM细胞分离和培养
胶原酶浓度和消化时间、培养条件(CO2、温度)、培养基基础成分
阅读提示:Materials and methods: RM cell isolation and in vitro culture
3D软骨形成分化
细胞密度、诱导试剂(OriCell HUXMX-90041)、培养时间(7,14,21天)、染色方法
阅读提示:Materials and methods: Chondrogenic, osteogenic, and adipogenic differentiation; Results: 3D culture system
慢病毒转染和筛选
慢病毒载体构建(pCDH-CMV-miR-140-3p-sponge等)、感染后筛选时间(72小时)和嘌呤霉素浓度
阅读提示:Materials and methods: Generation of miRNA sponge, overexpression, and RNAi RM cells using Lentivirus
异种鹿茸模型
裸鼠品系、移植部位(额头皮下)、miR-140-3p agomir/antagomir剂量和给药方案(0.15 mg/管,20 µl/鼠,每周2-3次,3周)、取样时间(21天)
阅读提示:Materials and methods: Xenogeneic antler mouse model treated with miRNA agomir and antigomir; Results: Effects of reciprocal negative feedback...
测序分析
参考基因组版本(mCerEla1.1)、peak calling软件版本(MACS2)、差异表达阈值(p<0.05, |log2FC|>1)、motif分析数据库(JASPAR)
阅读提示:Materials and methods: miRNA sequencing, ATAC sequencing, Prrx1 CUT&Tag-seq