迷走神经刺激通过α7nAChR依赖性抑制小胶质细胞NLRP3炎性小体作为缺血性卒中有前景的神经保护策略

Vagus nerve stimulation as a promising neuroprotection for ischemic stroke via α7nAchR-dependent inactivation of microglial NLRP3 inflammasome.

作者信息Xiao-Mei Xia, Yu Duan, Yue-Ping Wang, Rui-Xue Han, Yin-Feng Dong, Si-Yuan Jiang, Yu Zheng, Chen Qiao, Lei Cao, Xiao Lu, Ming Lu
PMID38504011
发布时间2024-07
DOI10.1038/s41401-024-01245-4

实验完整度

包含体内tMCAO模型、体外OGD/R和LPS+ATP模型,以及基因敲除和过表达小鼠,结合药理学干预,多个独立证据层级验证了机制。

主要模型

tMCAO小鼠模型 BV2小胶质细胞系 PC12细胞系 原代神经元和小胶质细胞

重点核对

VNS干预时机(Pre-VNS、Dur-VNS、Post-VNS) tMCAO模型建立(60分钟闭塞,神经功能评分和梗死体积) α7nAChR抑制剂MLA(2.5 mg/kg,腹腔注射,tMCAO前1小时) Chrna7基因敲除小鼠和微胶质细胞Chrna7过表达小鼠验证 α7nAChR激动剂PNU-282987(0.1 μM,体外预处理1小时)

摘要

缺血性卒中是全球范围内导致残疾和死亡的主要原因,其管理需要紧急关注。既往研究表明,迷走神经刺激(VNS)通过抑制神经炎症和凋亡在缺血性卒中中发挥神经保护作用。在本研究中,我们评估了VNS干预缺血性卒中的时机,以及VNS诱导的神经保护的潜在机制。小鼠接受60分钟短暂大脑中动脉闭塞(tMCAO)。暴露颈段左侧迷走神经,并连接至低频电刺激器的电极。在tMCAO前、中和后分别给予迷走神经刺激(VNS)(Pre-VNS、Dur-VNS、Post-VNS)。再灌注24小时后评估神经功能。我们发现,三种VNS均显著保护tMCAO诱导的损伤,表现为神经功能改善和梗死体积减少。此外,Pre-VNS对缺血性损伤最为有效。我们发现tMCAO激活了脑缺血核心和半暗带区域的小胶质细胞,随后NLRP3炎性小体激活诱导神经炎症,最终触发神经元死亡。VNS处理保留了半暗带区域α7nAChR表达,抑制NLRP3炎性小体激活及随之而来的神经炎症,挽救脑神经元。使用遗传操作,包括Chrna7敲除小鼠和小胶质细胞Chrna7过表达小鼠,以及使用α7nAChR抑制剂甲基牛扁亭碱和激动剂PNU-282987的药理学干预,进一步验证了α7nAChR在缺血性卒中中小胶质细胞NLRP3炎性小体激活中的作用。总之,本研究证明了VNS作为治疗缺血性卒中的安全有效策略的潜力,并提出了一种靶向小胶质细胞NLRP3炎性小体的新方法,可能对其他炎症相关疾病具有治疗价值。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
迷走神经刺激(VNS)是否以及如何通过α7nAChR依赖性机制抑制小胶质细胞NLRP3炎性小体激活,从而在缺血性卒中中发挥神经保护作用?
核心机制
VNS通过激活微胶质细胞α7nAChR,抑制NF-κB信号通路,从而抑制NLRP3炎性小体的激活和随后释放的促炎细胞因子(如IL-1β),减轻神经炎症和神经元死亡。
主要证据
在tMCAO小鼠模型中,VNS改善了神经功能并减少了梗死体积;通过药理学抑制(MLA)和基因敲除(Chrna7 KO)阻断了VNS的保护作用,而小胶质细胞特异性过表达Chrna7恢复了保护作用;体外实验显示PNU抑制NLRP3表达和caspase-1/IL-1β成熟,并减少神经元损伤。
研究意义
本研究为VNS作为缺血性卒中的预防和治疗策略提供了机制依据,并提出了靶向小胶质细胞NLRP3炎性小体的新方法,可能对其他炎症相关疾病具有治疗价值。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立tMCAO模型并评估VNS干预时机

验证VNS在不同时间点(缺血前、中、后)对缺血性卒中损伤的保护作用。

小鼠接受tMCAO手术,VNS在缺血前、中或后给予60分钟,24小时后评估神经功能和梗死体积。

2

检测小胶质细胞和星形胶质细胞激活及神经元损伤

观察VNS对缺血诱导的神经元死亡和胶质细胞激活的影响。

通过免疫组化和免疫荧光染色检测NeuN、Iba1和GFAP阳性细胞,并评估神经元和胶质细胞变化。

3

评估NLRP3炎性小体激活

确定VNS对缺血诱导的NLRP3炎性小体激活的影响。

通过RT-qPCR检测Nlrp1, Aim2, Nlrp3, Nlrc4 mRNA水平,通过Western blotting检测NLRP3, ASC, caspase-1, IL-1β蛋白水平。

4

验证α7nAChR在VNS中的作用

验证α7nAChR是否为VNS神经保护作用的必要分子。

使用α7nAChR抑制剂MLA和Chrna7敲除小鼠,评估VNS的保护作用是否被阻断。

5

过表达小胶质细胞Chrna7恢复VNS疗效

确认小胶质细胞α7nAChR的特异性作用。

在Chrna7 KO小鼠中通过AAV-CX3CR1-Chrna7过表达小胶质细胞Chrna7,然后评估VNS的保护作用。

6

体外验证α7nAChR激动剂PNU对NLRP3的抑制

在体外模型中验证α7nAChR激活抑制NLRP3炎性小体激活的机制。

BV2细胞用PNU预处理后接受OGD/R或LPS+ATP刺激,检测NLRP3表达和NF-κB信号。

7

评估微胶质细胞NLRP3激活对神经元的影响及PNU的神经保护

验证微胶质细胞NLRP3激活导致神经元损伤,而α7nAChR激活保护神经元。

收集BV2细胞或原代小胶质细胞的培养基,处理PC12细胞或原代神经元,检测细胞活力和凋亡。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
尼龙线栓广州嘉灵生物科技有限公司L1800
MoorFLPI-2全视野激光灌注成像仪Gene&I--
低频电刺激器(ES-420)ITO Physiotherapy and Rehabilitation--
PowerLab数据采集系统ADINSTRUMENTS--
甲基牛扁亭碱柠檬酸盐MedChemExpress (MCE)HY-N2332A
PNU-282987MedChemExpress (MCE)HY-12560A
RIPA裂解液Beyotime Biotechnology--
PVDF膜----
Image Quant™ LAS 4000成像系统GE Healthcare--
抗α7nAChR抗体Santa Cruzsc-58607
抗NLRP3抗体AdipoGenAG-20B-0014-C100
抗NLRP4抗体ABclonalA7382
抗pro-caspase-1抗体AdipoGenAG-20B-0042-C100
抗caspase-1抗体AdipoGenAG-20B-0042-C100
抗pro-IL-1β抗体SigmaI-3767
抗IL-1β抗体SigmaI-3767
抗ASC抗体AdipoGenAG-25B-0006
抗p-NF-κB (p-p65)抗体Cell SignalingSer536
抗GAPDH抗体Proteintech6000-1-lg
抗Tubulin抗体Proteintech10004491
HRP标记的山羊抗兔IgGYEASEN33101ES60
HRP标记的山羊抗鼠IgGYEASEN33913ES60647
HRP标记的兔抗山羊IgGBiossbs-0294R-HRP
TRIzol试剂Invitrogen--
TaKaRa Master MixTaKaRa--
SYBR Green预混液Applied Biosystems--
StepOnePlus实时荧光定量PCR仪Applied Biosystems--
Chrna2引物GeneCopoeiaMQP038106
Chrna3引物GeneCopoeiaMQP038266
Chrna4引物GeneCopoeiaMQP031242
Chrna5引物GeneCopoeiaMQP126183
Chrna6引物GeneCopoeiaMQP032530
Chrna7引物GeneCopoeiaMQP026490
Chrnb2引物GeneCopoeiaMQP090776
Chrnb3引物GeneCopoeiaMQP090399
Chrnb4引物GeneCopoeiaMQP039770
抗Iba1抗体Wako019-19741
抗GFAP抗体MilliporeMAB360
HISTOV多色免疫荧光试剂盒HISTOVNECC450
抗NeuN抗体MilliporeMAB377
抗Iba1抗体CST17198
抗GFAP抗体MilliporeMAB360
抗ASC抗体AdipoGenAG-25B-0006
抗caspase1抗体AdipoGenAG-20B-0042-C100
抗NLRP3抗体AdipoGenAG-20B-0014-C100
抗NF-κB (p-p65)抗体Abcamab32536
抗MAP2抗体ThermoFisherPA5-17646
抗兔IgG二抗ThermoFisher35552
DAPI----
DMEM培养基ThermoFisherC11995500BT
胎牛血清ThermoFisher10100147
青霉素/链霉素----
Neurobasal/B27/谷氨酰胺培养基----
无糖DMEMGibco11966-025
CCK-8试剂盒Beyotimec0037
IL-1β ELISA试剂盒Jiancheng Bioengineering Technology--
AnnexinV-FITC/PI试剂盒VazymeA211-02
FACS Calibur流式细胞仪BD--
TTCSigmaT8877-25G

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
tMCAO模型
线栓规格(0.18±0.01mm)、缺血时间(60分钟)、血流减少>70%的纳入标准
阅读提示:Materials and methods: Transient middle cerebral artery occlusion model
VNS干预
刺激参数(频率20Hz、电流0.5mA、脉冲宽度0.5ms、开/关时间0.5/4.5分钟)、干预时机(Pre、Dur、Post)
阅读提示:Materials and methods: Vagus nerve stimulation; Figure 1 legend
神经功能评估
mNSS评估时间(再灌注后24小时)、评分系统(14分制)
阅读提示:Materials and methods: Neurological function assessment
梗死体积测量
TTC浓度(2%)、染色时间(15分钟,37℃)、水肿校正公式
阅读提示:Materials and methods: Measurement of infarct volume
药理干预(MLA)
MLA剂量(2.5mg/kg)、给药途径(腹腔注射)、给药时间(tMCAO前1小时)
阅读提示:Materials and methods: Methyllycaconitine citrate (MLA) administration; Figure 5 legend
细胞处理
PNU浓度(0.1μM)和预处理时间(1小时)、LPS浓度(100ng/mL,5.5小时)、ATP浓度(5mM,0.5小时)
阅读提示:Materials and methods: Cell culture and treatment; Figure 8 caption