肝纤维化小鼠模型及恢复模型的建立与验证
建立CCl4诱导的肝纤维化小鼠模型和恢复模型,并验证模型成功。
通过每周两次腹腔注射10%(v/v)CCl4(0.001 ml/g)建立HF模型;恢复模型在注射6周后停止,正常喂养6周。通过组织学染色(H&E、Masson、Sirius red)、α-SMA免疫组化、血清ALT/AST、RT-qPCR和WB检测肝损伤和纤维化标志物。
miR-324-3p Suppresses Hepatic Stellate Cell Activation and Hepatic Fibrosis Via Regulating SMAD4 Signaling Pathway.
包含体内小鼠模型(CCl4诱导HF及恢复模型)和体外细胞实验(TGF-β1诱导LX-2细胞),并进行功能验证(过表达/敲低)、机制验证(荧光素酶报告基因)及靶基因验证(siRNA)。
CCl4诱导的肝纤维化小鼠模型 TGF-β1诱导的LX-2细胞(人肝星状细胞系) 293T细胞(用于荧光素酶报告基因)
CCl4注射剂量(0.001 ml/g,10% v/v,每周两次) AAV-miR-324-3p注射(1×10^12 VG/ml,尾静脉) TGF-β1处理浓度(5 ng/mL)和处理时间(48小时) miR-324-3p mimics和inhibitor转染浓度(40 nM和80 nM) SMAD4 siRNA转染
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立CCl4诱导的肝纤维化小鼠模型和恢复模型,并验证模型成功。
通过每周两次腹腔注射10%(v/v)CCl4(0.001 ml/g)建立HF模型;恢复模型在注射6周后停止,正常喂养6周。通过组织学染色(H&E、Masson、Sirius red)、α-SMA免疫组化、血清ALT/AST、RT-qPCR和WB检测肝损伤和纤维化标志物。
建立TGF-β1诱导的LX-2细胞活化模型,并检测miR-324-3p及纤维化标志物的表达。
使用TGF-β1(5 ng/mL)处理LX-2细胞48小时,通过RT-qPCR和WB检测miR-324-3p、α-SMA和Vimentin表达。
评估AAV介导的miR-324-3p过表达对CCl4诱导HF小鼠肝损伤和纤维化的影响。
HF建模前一周,通过尾静脉注射AAV-miR-324-3p或空载体(1×10^12 VG/ml)。6周后收集血清和肝组织,检测ALT/AST、组织学、α-SMA和Vimentin表达。
验证miR-324-3p过表达或敲低对TGF-β1诱导LX-2细胞增殖、细胞周期、凋亡及纤维化标志物表达的影响。
将miR-324-3p mimics或inhibitor转染至LX-2细胞,随后用TGF-β1处理。通过CCK-8检测增殖,流式细胞术检测周期和凋亡,RT-qPCR和WB检测α-SMA和Vimentin。
验证miR-324-3p直接靶向SMAD4并调控其表达。
通过生物信息学预测结合位点,构建SMAD4野生型和突变型3'UTR荧光素酶报告质粒,共转染293T细胞,检测荧光素酶活性。同时,在LX-2细胞中转染mimics或inhibitor,检测SMAD4 mRNA和蛋白水平。
通过敲低SMAD4,验证其对TGF-β1诱导LX-2细胞中纤维化标志物表达的影响。
使用siRNA转染敲低SMAD4,然后用TGF-β1处理24小时,通过WB检测SMAD4、α-SMA和Vimentin蛋白表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | 橄榄油 | -- | 8001-25-0 |
| 原代HSC分离 | 链霉蛋白酶E | Sigma-Aldrich | -- |
| 胶原酶IV | Sigma-Aldrich | -- | |
| 尼可登 | Axis-Shield Diagnostics | -- | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素/链霉素 | Gibco | -- | |
| 转化生长因子-β1 | R&D Systems | -- | |
| 转染 | Lipofectamine 2000 | Invitrogen | -- |
| Opti-MEM培养基 | Gibco | -- | |
| 基因下调 | SMAD4 siRNA | GenePharma | -- |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| RNA浓度测定 | NanoDrop 2000分光光度计 | Thermo Scientific | -- |
| 逆转录 | 逆转录试剂盒 | Fermentas | -- |
| RT-qPCR | SYBR Green预混液试剂盒 | TaKaRa | -- |
| miR-324-3p一步法RT-qPCR试剂盒 | Biomics | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| PVDF膜 | Millipore | -- | |
| 抗SMAD4抗体 | Abcam | -- | |
| 抗β-肌动蛋白抗体 | Bioss | -- | |
| 抗平滑肌肌动蛋白抗体 | Bioss | -- | |
| 抗波形蛋白抗体 | Bioss | -- | |
| HRP标记的抗兔二抗 | Bioss | -- | |
| 增强化学发光系统 | Bio-Rad | -- | |
| 免疫组化 | DAB染色 | -- | -- |
| 荧光素酶报告基因 | 双荧光素酶报告基因检测试剂盒 | Promega | -- |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂盒 | Beyotime | -- |
| 自动酶标仪 | BioTek | -- | |
| 流式细胞术 | 细胞周期和凋亡分析试剂盒 | Beyotime | -- |
| Annexin V-FITC/PI凋亡分析试剂盒 | Bestbio | -- | |
| CytoFLEX流式细胞仪 | Beckman Coulter | -- | |
| 血清ALT/AST检测 | ALT/AST检测试剂盒 | Jiancheng | -- |
| 动物实验 | AAV-miR-324-3p | Hanheng | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | CCl4注射剂量、频率、溶剂(橄榄油)、注射途径(腹腔)、小鼠品系、年龄、性别;AAV注射剂量、途径、时机 阅读提示:Materials and Methods: Hepatic Fibrosis (HF) Mice Model Construction; Overexpression of miR-324-3p in Mice |
| 细胞培养与处理 | LX-2细胞来源、培养条件(DMEM、10% FBS、1% P/S)、TGF-β1浓度和处理时间、miR-324-3p mimics/inhibitor浓度、转染试剂、转染后处理 阅读提示:Materials and Methods: Culture of Cells, Mimic and Inhibitors of miR-324-3p |
| Western blot | 一抗(anti-SMAD4、anti-β-actin、anti-SMA、anti-Vimentin)的稀释比例、二抗浓度、蛋白分离胶浓度、PVDF膜、封闭时间 阅读提示:Materials and Methods: Western Blot (WB) Assay |
| RT-qPCR | 引物序列、内参基因(GAPDH/β-actin)、SYBR Green Master Mix、miR-324-3p检测方法(one-step RT-qPCR)、RNA提取方法 阅读提示:Materials and Methods: Real-Time-Quantitative Polymerase Chain Reaction (RT-qPCR) and RNA Isolation; Table 1 |
| 荧光素酶报告基因 | 报告质粒(SMAD4-Wt/Mut 3' UTR)、共转染的miRNA(miR-324-3p mimics或NC)、转染试剂(Lipofectamine 2000)、转染时间(48h)、双荧光素酶检测试剂盒 阅读提示:Materials and Methods: Luciferase Reporter Assay |