建立CIH动物模型和IH细胞模型
模拟OSA的慢性间歇性缺氧环境。
C57BL/6N小鼠暴露于CIH(21-5% FiO2,3分钟/周期,8小时/天,持续35天);H9C2细胞暴露于IH(0.1% O2 3分钟,21% O2 7分钟,循环24小时)。
Hydrogen Attenuates Chronic Intermittent Hypoxia-Induced Cardiac Hypertrophy by Regulating Iron Metabolism.
包含小鼠CIH模型和H9C2细胞IH模型两个独立证据层级,并进行了功能验证(心脏功能、线粒体)和机制验证(铁代谢、氧化应激)。
C57BL/6N小鼠CIH模型 H9C2心肌细胞IH模型
CIH暴露方案:21-5% FiO2,3分钟/周期,8小时/天,持续35天 H2吸入方案:氢氧混合气(66% H2,33% O2),2小时/天,持续35天 H2富集培养基制备:0.4 MPa高压溶解6小时,H2含量0.8 ppm,处理IH细胞1小时 IH细胞模型:0.1% O2 3分钟,21% O2 7分钟,循环24小时 H9C2细胞培养基:DMEM,10%胎牛血清,青霉素/链霉素
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
模拟OSA的慢性间歇性缺氧环境。
C57BL/6N小鼠暴露于CIH(21-5% FiO2,3分钟/周期,8小时/天,持续35天);H9C2细胞暴露于IH(0.1% O2 3分钟,21% O2 7分钟,循环24小时)。
评估H2对CIH和IH损伤的干预效果。
小鼠每天吸入氢氧混合气(66% H2,33% O2)2小时;H9C2细胞使用氢富集培养基处理1小时。
验证CIH是否导致心脏肥厚及H2的改善作用。
采用超声心动图检测EF、FS、LVESD、LVEDD、LVPWD;WGA染色评估心肌细胞横截面积;Q-PCR检测Nppa、Nppb、MYH7 mRNA。
评估CIH对线粒体结构、膜电位和分裂/融合蛋白的影响及H2的调节作用。
TEM观察线粒体超微结构;JC-1染色测膜电位;Western blot和Q-PCR检测Fis-1、Drp-1、Opa-1表达。
检测CIH诱导的氧化损伤和抗氧化能力及H2的影响。
Western blot检测4-HNE、i-NOS、Nrf2、Keap1、HO-1蛋白;IHC检测Nrf2。
评估CIH诱导的铁沉积和铁代谢失调及H2的调节作用。
Perls'染色和总铁含量检测铁沉积;IHC和Western blot检测FPN1、hepcidin、HIF-1α、IRPs等蛋白;Q-PCR检测FPN1、DMT1(+ire)、DMT1(-ire)、hepcidin mRNA。
在细胞水平验证H2对IH诱导的Fe2+和ROS的抑制作用及机制。
CCK-8检测细胞活力;FerroOrange检测Fe2+;DCFH-DA检测ROS;免疫荧光双标检测FPN1和hepcidin。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | OxyCycler低氧舱 | BioSpherix | -- |
| 氢气干预 | 氢氧气雾化机 | Shanghai Asclepius Meditech | -- |
| 超声心动图 | Vevo 2100小动物超声成像系统 | VisualSonic | -- |
| 线粒体膜电位检测 | JC-1线粒体膜电位检测试剂盒 | Servicebio | G1515-100T |
| 组织染色 | WGA溶液 | Solarbio | I3300 |
| 总铁含量检测 | 铁含量检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng | A039-2-1 |
| RNA提取 | RNA提取试剂盒 | Tiangen | DP419 |
| 逆转录 | PrimeScript RT试剂盒(含gDNA Eraser) | Takara | RR047A |
| Q-PCR | SYBR-Green PCR Master Mix试剂盒 | Takara | RR820A |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | Yesen | 40203ES76 |
| Fe2+检测 | FerroOrange探针 | Maokangbio | MX4580 |
| ROS检测 | DCFH-DA | Servicebio | G1706 |
| 免疫荧光染色 | Triton X-100 | Solarbio | T8200 |
| Western blot | RIPA裂解液 | -- | -- |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| BCA法 | -- | -- | |
| 线粒体提取 | 线粒体提取试剂盒 | Invent Biotechnologies | MP-007 |
| 免疫组织化学 | DAB显色试剂盒 | -- | -- |
| 免疫组化/免疫荧光 | 抗体:Nrf2 | Proteintech | 66504-1-Ig |
| 抗体:FPN1 | Alpha Diagnostic International | MTP11-A | |
| 免疫组化 | 抗体:Hepcidin | Affinity Biosciences | DF6492 |
| 免疫组化/免疫荧光 | 抗体:HIF-1α | Boster | PB9253 |
| Western blot | 抗体:Fis-1 | Zen-bioscience | 505821 |
| 抗体:Opa-1 | Zen-bioscience | 382025 | |
| 抗体:Drp-1 | Zen-bioscience | 340336 | |
| 抗体:4-HNE | Arigo Biolaboratories | ARG23717 | |
| 抗体:i-NOS | Servicebio | GB11119 | |
| 抗体:Keap1 | BIOSS | bs-4900R | |
| 抗体:HO-1 | Abclonal | A1346 | |
| 抗体:TfR1 | Absin | abs120325 | |
| 抗体:FTH | Abcam | ab183781 | |
| 抗体:FTL | Abcam | ab218400 | |
| 抗体:MtFt | Abcam | ab66111 | |
| 抗体:IRP-1 | Cell Signaling Technology | 20272S | |
| 抗体:IRP-2 | Cell Signaling Technology | 37135S | |
| 抗体:FBXL5 | GeneTex | GTX32599 | |
| 抗体:β-actin | Servicebio | GB15001 | |
| 抗体:α-Tubulin | GeneTex | GTX628802 | |
| 抗体:GAPDH | Servicebio | GB15002 | |
| 动物饲料 | 小鼠饲料 | HUANYU BIO | HD8013 |
| 微板读数 | Varioskan LUX多功能酶标仪 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 透射电镜 | HT7800透射电子显微镜 | HITACHI | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 小鼠品系、性别、年龄、分组、CIH暴露参数(21-5% FiO2,3分钟/周期,8小时/天,持续35天),对照处理 阅读提示:详见Methods 2.1 Animals |
| 氢气干预 | 氢气吸入浓度(66% H2,33% O2),每天2小时,持续5周;氢富集培养基制备(0.4 MPa,6小时,0.8 ppm),细胞处理时间1小时 阅读提示:详见Methods 2.1 Animals和2.11.1 Preparation of Hydrogen-Rich Media |
| 心脏功能和形态学评估 | 超声心动图参数(EF、FS、LVESD、LVEDD、LVPWD),WGA染色、Nppa/Nppb/MYH7 mRNA水平 阅读提示:详见Results 3.1.1及Figure 1 |
| 线粒体功能检测 | JC-1染色检测膜电位,TEM观察形态,Fis-1、Drp-1、Opa-1的蛋白和mRNA水平 阅读提示:详见Results 3.1.2及Figure 2 |
| 氧化应激评估 | 4-HNE、i-NOS、Nrf2、Keap1、HO-1的蛋白水平,Nrf2免疫组化 阅读提示:详见Results 3.1.3及Figure 3 |
| 铁代谢检测 | Perls'染色、总铁含量、FPN1、TfR1、DMT1(+ire)、FTL、MtFt等蛋白和mRNA水平,hepcidin、HIF-1α、IRPs等 阅读提示:详见Results 3.1.4、3.1.5、3.1.6及Figure 4-6 |