褪黑素改善慢性睡眠剥夺大鼠的神经精神行为、肠道微生物群和微生物衍生代谢物

Melatonin Ameliorates Neuropsychiatric Behaviors, Gut Microbiome, and Microbiota-Derived Metabolites in Rats with Chronic Sleep Deprivation.

作者信息Bingcong Li, Yin-Ru Hsieh, Wen-De Lai, Te-Hsuan Tung, Yu-Xuan Chen, Chia-Hui Yang, Yu-Chiao Fang, Shih-Yi Huang
PMID38069141
发布时间2023-11-27
DOI10.3390/ijms242316820

实验完整度

包含动物模型、行为学测试、肠道菌群16S测序、代谢物分析及蛋白表达检测等多个独立实验层级,并进行了相关性和机制验证。

主要模型

Wistar大鼠慢性睡眠剥夺模型 肠道菌群 脑皮层和结肠组织

重点核对

Wistar大鼠,6周龄,雄性,体重300-350g 分组:对照组(C)、睡眠剥夺组(SD)、褪黑素补充组(SDM),每组6只 褪黑素剂量:10 mg/kg体重,腹腔注射,每日睡眠剥夺前1小时,持续3周 慢性睡眠剥夺方法:改良多平台水浴法,每日16:00至次日10:00,持续28天 行为学测试:旷场实验、高架十字迷宫、糖水偏好实验、强迫游泳实验、莫里斯水迷宫

摘要

随着睡眠剥夺相关疾病的日益普遍,睡眠障碍的有效治疗已成为一个关键的健康研究课题。因此,我们假设并研究了为期3周的褪黑素干预对慢性睡眠剥夺大鼠中通过褪黑素受体、肠道微生物群和脂质代谢物介导的神经精神行为反应的有效性。使用18只6周龄Wistar大鼠,分为对照组(C,n=6)、睡眠剥夺组(SD,n=6)和褪黑素补充组(SDM,n=6)。在第0至6周,动物提供AIN-93M饮食并可自由饮水。从第7至10周进行为期4周的慢性睡眠剥夺。在SDM组,在每日睡眠剥夺前1小时腹腔注射外源性褪黑素(10 mg/kg体重),持续3周。SD大鼠表现出焦虑样行为、抑郁样行为和认知障碍。外源性褪黑素给药改善了慢性睡眠剥夺诱导的神经精神行为。粪便代谢物分析表明,褪黑素可能通过增加短链脂肪酸(SCFA)的产生和减少次级胆汁酸(SBA)的产生,通过微生物群-肠-脑轴影响大脑信号传导。4周睡眠剥夺降低了大脑皮层MT1的表达,但结肠中未降低。慢性睡眠剥夺导致大鼠出现焦虑和抑郁样行为及认知能力下降,以及肠道SCFA水平降低和SBA水平升高。在这项工作中,我们证实了我们的假设,即3周的褪黑素干预对慢性睡眠剥夺大鼠中通过褪黑素受体、肠道微生物群和脂质代谢物介导的神经精神行为反应有效。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
褪黑素能否通过调节肠道菌群及其代谢物和褪黑素受体表达来改善慢性睡眠剥夺诱导的神经精神行为异常?
核心机制
褪黑素通过调节肠道菌群组成,增加短链脂肪酸产生并减少次级胆汁酸产生,并通过褪黑素受体(尤其是MT1)介导,改善焦虑和抑郁样行为及认知功能。
主要证据
在慢性睡眠剥夺大鼠模型中,褪黑素补充改善了焦虑、抑郁样行为和认知障碍,增加了粪便总SCFA水平,降低了DCA水平,并改变菌群组成;脑皮层MT1表达与行为指标相关。
研究意义
该研究表明褪黑素可能作为改善睡眠剥夺相关神经精神障碍的潜在干预策略,为临床治疗提供实验依据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

动物模型建立与分组

建立慢性睡眠剥夺大鼠模型,并设置对照组、模型组和褪黑素干预组。

使用6周龄Wistar大鼠,适应性喂养后随机分为三组,对照组常规饲养,SD组和SDM组接受4周慢性睡眠剥夺。

2

褪黑素干预

评估外源性褪黑素对慢性睡眠剥夺大鼠行为及代谢的影响。

SDM组大鼠每日睡眠剥夺前1小时腹腔注射褪黑素(10 mg/kg体重),持续3周。

3

行为学测试

评估慢性睡眠剥夺及褪黑素干预对大鼠焦虑、抑郁样行为和认知功能的影响。

依次进行旷场实验、高架十字迷宫、糖水偏好实验、强迫游泳实验和莫里斯水迷宫测试,记录相关指标。

4

血液生化、炎症和神经化学指标检测

评估慢性睡眠剥夺及褪黑素干预对大鼠代谢、炎症和应激水平的影响。

采集血液,检测血清甘油三酯、游离脂肪酸、尿素氮、皮质酮、TNF-α、IL-1β、LPS等。

5

粪便菌群及代谢物分析

分析慢性睡眠剥夺及褪黑素干预对肠道菌群组成及短链脂肪酸、次级胆汁酸水平的影响。

提取粪便DNA进行16S rRNA测序,分析菌群多样性和组成;气相色谱检测SCFAs,超高效液相色谱质谱联用检测SBAs。

6

褪黑素受体蛋白表达检测

评估慢性睡眠剥夺及褪黑素干预对脑皮层和结肠中褪黑素受体(MT1、MT2)表达的影响。

提取脑皮层和结肠组织蛋白,通过Western blot检测MT1和MT2蛋白表达水平。

7

相关性分析

探讨褪黑素受体表达与神经精神行为之间的关联。

使用Pearson相关系数分析脑皮层MT1/MT2表达与行为学指标之间的相关性。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
实验室啮齿动物饲料5001----
AIN-93M纯化饲料MP Biomedicals--
褪黑素Sigma-AldrichM5250
ActualTrackActual Analytics--
索尼摄像机Sony--
Forced Swim Scan 2.0CleverSys--
CineLyzerPlexon--
UniCel DxC 800 全自动生化分析仪Beckman Coulter--
大鼠TNF-α ELISA试剂盒BioLegend438207
大鼠IL-1β ELISA试剂盒R&D SystemsRLB00
大鼠NGF/NGF-β ELISA试剂盒Abcam--
多巴胺ELISA试剂盒Labor Diagnostika Nord--
PowerSoil DNA分离试剂盒Qiagen--
Illumina MiSeq测序系统Illumina--
Agilent 7820/5977B气-质联用仪Agilent--
Nukol毛细管气相色谱柱Merck KGaA--
ACQUITY BEH C8色谱柱Waters--
Xevo TQS质谱仪Waters--
RIPA裂解液Bio BasicRB4475
蛋白酶抑制剂混合物Sigma-AldrichP8340
褪黑素受体1A抗体Biossbs-0027R
褪黑素受体1B抗体Abcamab203346
抗β-肌动蛋白单克隆抗体Affinity BiosciencesT0022
抗鼠IgG辣根过氧化物酶偶联抗体Cell Signaling7076S
抗兔IgG辣根过氧化物酶偶联抗体Cell Signaling7074S
增强化学发光试剂Merck MilliporeWBBLUF0500
UVP BioSpectrumAC成像系统Analytik Jena--
Prism 8统计软件GraphPad--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型建立
Wistar大鼠品系、年龄(6周龄)、体重范围(300-350g)、性别(雄性)、饲养环境(12小时光照/黑暗循环)、适应性喂养时间(2周)、分组(C、SD、SDM,每组6只)、慢性睡眠剥夺方法(改良多平台水浴法)、持续时间(28天,每日16:00至次日10:00)
阅读提示:详见Materials and Methods 4.1节和4.3节
褪黑素干预
褪黑素剂量(10 mg/kg体重)、给药途径(腹腔注射)、给药时间(每日睡眠剥夺前1小时)、持续时间(3周)、溶剂配制(0.5 mL无水乙醇和15 mL生理盐水)
阅读提示:详见Materials and Methods 4.2节
行为学测试
旷场实验装置尺寸(50×50×40 cm,中央区20×20 cm)、测试时间(5分钟)、高架十字迷宫尺寸(臂长550 cm,宽110 cm,高50 cm)、测试时间(5分钟)、糖水偏好实验(1%蔗糖溶液,禁水24小时,测试1小时)、强迫游泳实验(水温20±2°C,水深35 cm,预试15分钟,正式5分钟)、莫里斯水迷宫(池直径150 cm,高100 cm,水温20±2°C,训练4次/天,共3天,探针测试40秒)
阅读提示:详见Materials and Methods 4.4节
生化及炎症指标检测
血液采集方法(腹主动脉取血)、离心条件(3000 rpm, 10 min, 4°C)、检测指标(TG、TC、LDL、HDL、FFA、AST、ALT、TBIL、ALB、BUN、CRE、皮质酮、TNF-α、IL-1β、LPS、NGF、多巴胺)、试剂盒品牌和货号
阅读提示:详见Materials and Methods 4.5节和Table 2
肠道菌群及代谢物分析
粪便样本采集时间(每周上午10时)、DNA提取试剂盒(PowerSoil DNA Isolation Kit)、16S rRNA测序平台(Illumina MiSeq,V3-V4区)、数据处理流程(UPARSE聚类,SILVA数据库)、SCFA检测条件(气相色谱法)、SBA检测条件(UPLC-MS/MS)
阅读提示:详见Materials and Methods 4.6节和4.7节
蛋白表达检测
组织裂解(RIPA缓冲液)、蛋白定量(Bradford法)、上样量(40 μg)、SDS-PAGE凝胶浓度(10%)、一抗稀释比(MT1 1:1000, MT2 1:1000, β-actin 1:5000)、二抗稀释比(1:5000)
阅读提示:详见Materials and Methods 4.8节