验证DDR1介导内皮细胞对剪切力的响应
确定DDR1是否在内皮细胞对剪切力的响应中发挥必要作用。
在HUVECs中敲低DDR1,施加PS、LS、OS,检测细胞排列方向和力学响应基因表达;在NIH3T3细胞中过表达DDR1,观察其对剪切力的响应。
Endothelial discoidin domain receptor 1 senses flow to modulate YAP activation.
包含细胞实验(HUVECs、NIH3T3)、动物模型(Ddr1iECKO)、单分子磁镊、微流控、FRAP和体内验证,功能与机制验证充分。
人脐静脉内皮细胞(HUVECs) NIH3T3成纤维细胞(过表达DDR1) 内皮特异性Ddr1敲除小鼠(Ddr1iECKO)
剪切力类型:PS(12±4 dyn/cm2)、LS(12 dyn/cm2)、OS(0.5±4 dyn/cm2) DDR1敲低采用siRNA转染,浓度50 nmol/L DDR1抑制剂DDR1-IN-1使用浓度10 μmol/L 动物模型:AAV8-PCSK9注射和Western diet喂养,部分颈动脉结扎手术 YAP激活检测:核转位、S127磷酸化、下游基因CTGF、CYR61、ANKRD1表达
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定DDR1是否在内皮细胞对剪切力的响应中发挥必要作用。
在HUVECs中敲低DDR1,施加PS、LS、OS,检测细胞排列方向和力学响应基因表达;在NIH3T3细胞中过表达DDR1,观察其对剪切力的响应。
探究DDR1是否直接响应剪切力并形成凝聚体。
对HUVECs施加PS或OS不同时间,免疫荧光检测DDR1液滴形成;非还原SDS-PAGE检测DDR1寡聚化;Western blot检测DDR1磷酸化;微流控芯片模拟层流和扰动流,实时成像DDR1液滴;小鼠主动脉弓和胸主动脉内皮进行en face染色观察DDR1分布。
证明DDR1能够直接感知机械力而不依赖配体或其他机械传感器。
使用磁镊对包被DDR1配体或抗体的磁珠施加约4 pN的力,观察DDR1聚集和细胞内钙离子升高;使用基于FRET的膜张力生物传感器MSS检测剪切过程中的膜张力变化;通过MβCD-胆固醇处理增加膜胆固醇降低膜流动性,检测对DDR1激活的影响。
确定DS样结构域的构象变化是否必要,以及Cys287暴露是否促进受体寡聚化。
使用单分子磁镊测量DDR1胞外域(21-416 aa)在剪切前后的展开力;构建DS样结构域锁定突变体(D189C/F364C)、C287A突变体,检测其剪切或胶原诱导的液滴形成和寡聚化;使用双色FRAP和寡聚化分析验证。
识别DDR1相互作用蛋白并确认YWHAE在DDR1相分离中的作用。
通过co-IP和质谱鉴定DDR1相互作用蛋白;使用Opto-YWHAE光遗传系统检测YWHAE的相分离能力;体外表征DDR1-C与YWHAE的共凝聚;通过突变和Co-IP验证结合位点(K674、S677、Y214)。
确定DDR1-YWHAE轴是否介导剪切力诱导的YAP激活。
在HUVECs中敲低DDR1或YWHAE,或使用DDR1抑制剂DDR1-IN-1,检测YAP核转位、S127磷酸化和下游基因表达;结合LATS抑制剂Lats-IN-1,探究DDR1-LATS1作用。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | M199培养基 | Gemini | 900-008 |
| 内皮细胞生长因子 | Sigma | E1388 | |
| DMEM培养基 | HARVEYBIO | CT0035001 | |
| 胎牛血清 | Gemini | 900-008 | |
| 流动实验 | 明胶 | HARVEYBIO | MB1720 |
| 单分子磁镊 | 硅化试剂 | Sigma-Aldrich | SL2 |
| Dynabeads M-280磁珠 | Invitrogen | 11205D | |
| 磁珠拉拽/磁镊系统 | Dynabeads抗体偶联试剂盒 | Invitrogen | 14311D |
| 钙成像 | Fluo-4 AM钙离子指示剂 | Invitrogen | F14217 |
| DDR1抗体 | Santa Cruz | sc-390268 | |
| 聚丙烯酰胺凝胶制备 | 硫代-SANPAH交联剂 | Pierce | -- |
| 抗体 | 抗pDDR1-Y792抗体 | CST | 11994S |
| 抗DDR1抗体 | Proteintech | 10536-1-AP | |
| 抗YAP1抗体 | Proteintech | 13584-1-AP | |
| 抗pYAP1-S127抗体 | ABclonal | AP0489 | |
| 抗YWHAE抗体 | Proteintech | 11648-2-AP | |
| 抗VE-钙黏蛋白抗体 | Bioss | bs-4310R | |
| 抗GAPDH抗体 | Easybio | BE0024 | |
| 免疫荧光染色 | 罗丹明标记鬼笔环肽 | ABclonal | RM02835 |
| 抗YAP1抗体 | Proteintech | 66900-1-Ig | |
| 抗VE-钙黏蛋白抗体 | Santa Cruz | sc-9989 | |
| 抗E选择素抗体 | Invitrogen | MA1-22165 | |
| 抗ICAM1抗体 | Santa Cruz | sc-7891 | |
| 抗VCAM1抗体 | Santa Cruz | sc-13160 | |
| 抗小窝蛋白-1抗体 | Proteintech | 66067-1-Ig | |
| 抗Rab5A抗体 | Santa Cruz | sc-166600 | |
| PE标记CD63抗体 | BaiCheng Technology | BC-353003 | |
| 抗LATS1抗体 | CST | 3477S | |
| RNA提取和定量RT-PCR | TRIzol试剂 | -- | -- |
| Hifair III 第一链cDNA合成SuperMix | Yeasen | 11141ES60 | |
| 2×RealStar power SYBR Mix | Yeasen | 11202ES08 | |
| 蛋白质印迹 | RIPA裂解液 | Macgene | MP015 |
| Pierce™ BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher | 23250 | |
| 非还原样品缓冲液 | Biosharp | BL529B | |
| 辣根过氧化物酶标记的山羊抗兔IgG | Procell | CW0103S | |
| 辣根过氧化物酶标记的山羊抗小鼠IgG | Procell | CW0102S | |
| 硝酸纤维素膜 | -- | -- | |
| ChemiDoc XRS+凝胶成像系统 | Bio-Rad | -- | |
| 质粒构建 | 快速突变系统 | TRANS | FM111-02 |
| CRY2olig-mCherry质粒 | Addgene | 60032 | |
| CDH5质粒 | MiaoLingBio | P29785 | |
| ClonExpress Ultra一步克隆试剂盒 | Vazyme | C115-01 | |
| EGFP-Vimentin-7质粒 | Addgene | 56439 | |
| 细胞转染 | 脂质体转染试剂2000 | Thermo Fisher | -- |
| 免疫荧光 | Alexa Fluor 488标记的山羊抗兔IgG | Abcam | ab150077 |
| Alexa Fluor 488标记的山羊抗小鼠IgG | Abcam | ab150113 | |
| Alexa Fluor 555标记的山羊抗兔IgG | Abcam | ab150078 | |
| Alexa Fluor 555标记的山羊抗小鼠IgG | Abcam | ab150114 | |
| 胆固醇处理 | 甲基-β-环糊精-胆固醇复合物 | Sigma | -- |
| 重组蛋白表达 | HisTrap FF Crude预装柱 | Cytiva | 29048631 |
| Transetta (DE3)化学感受态细胞 | TransGen Biotech | CD801 | |
| Amicon Ultra 4 mL 50 kDa离心过滤器 | Merck | -- | |
| 免疫共沉淀 | 蛋白酶抑制剂混合物 | Roche | -- |
| 蛋白A/G琼脂糖珠 | -- | -- | |
| 部分颈动脉结扎 | AAV8-PCSK9病毒 | -- | -- |
| 血清生化分析 | 总胆固醇检测试剂盒 | BioSino | 000180 |
| 甘油三酯检测试剂盒 | BioSino | 000220 | |
| 低密度脂蛋白胆固醇检测试剂盒 | BioSino | 020245 | |
| 高密度脂蛋白胆固醇检测试剂盒 | BioSino | 020235 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 流动实验 | 剪切力类型和大小:PS 12±4 dyn/cm2,LS 12 dyn/cm2,OS 0.5±4 dyn/cm2,频率1 Hz;流动时间:1-24小时 阅读提示:Methods: Flow experiments, Figure 1 legend |
| 细胞培养 | HUVECs分离来源和混合脐带数量;培养基成分(Medium 199, 10% FBS, 4 μg/mL ECGF);传代范围(P5-P8) 阅读提示:Methods: Cell culture |
| DDR1敲低和过表达 | siRNA浓度(50 nmol/L);转染方法(nucleofection);质粒构建 阅读提示:Methods: Plasmids and transient transfection |
| 药物处理 | DDR1-IN-1浓度10 μmol/L,处理3小时;MβCD-胆固醇浓度0.1 mmol/L,处理30分钟 阅读提示:Methods: Cholesterol treatment, Figure 7 legend |
| 动物模型 | 小鼠品系(C57BL/6),年龄(8-10周);Ddr1iECKO基因型;他莫昔芬剂量50 mg/kg每天,连续7天;AAV8-PCSK9注射和Western diet喂养;部分颈动脉结扎手术细节 阅读提示:Methods: Animals, Partial carotid ligation, Figure 1 legend |