检测Mincle在银屑病皮损中的表达
评估Mincle在银屑病患者和小鼠皮损中的表达及其与巨噬细胞浸润的关系
通过免疫组化和免疫荧光染色检测银屑病患者和正常皮肤样本中Mincle、CD68、IL-6、TNF-α的表达,并在IMQ诱导的银屑病小鼠皮肤中检测Mincle和F4/80。
Macrophages mediate psoriasis via Mincle-dependent mechanism in mice.
包含患者样本、IMQ小鼠模型、巨噬细胞耗竭与回补、巨噬细胞特异性敲除、体外共培养及抗体治疗等多个独立证据层级,并进行功能验证和机制验证。
IMQ诱导的银屑病小鼠模型 骨髓来源巨噬细胞(BMDM) 小鼠表皮细胞JB6
IMQ剂量:62.5 mg/天,连续7天 氯膦酸盐脂质体注射时间:IMQ处理后第2天,剂量200 μl BMDM过继转移:5×10^6细胞/50 μl,尾静脉注射,分别在第3天和第5天 Mincle中和抗体剂量:5 μg/天,皮下注射,连续7天 LPS浓度:体外实验用500 ng/ml刺激BMDM
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估Mincle在银屑病患者和小鼠皮损中的表达及其与巨噬细胞浸润的关系
通过免疫组化和免疫荧光染色检测银屑病患者和正常皮肤样本中Mincle、CD68、IL-6、TNF-α的表达,并在IMQ诱导的银屑病小鼠皮肤中检测Mincle和F4/80。
确定巨噬细胞在银屑病中的作用以及Mincle在其中的必要性
在IMQ处理的银屑病小鼠中,皮下注射氯膦酸盐脂质体耗竭巨噬细胞,然后尾静脉过继转移Mincle表达或Mincle-KO BMDM,观察皮肤病变和炎症指标。
进一步验证Mincle在巨噬细胞介导银屑病中的病理作用
使用Mincleflox/flox/Lyz2-cre+/+小鼠(巨噬细胞特异性Mincle敲除)建立IMQ诱导的银屑病模型,评估皮肤病变、炎症因子和角蛋白17表达。
阐明Mincle激活M1巨噬细胞的分子机制及其对表皮细胞损伤的影响
从WT和Mincle-KO小鼠分离BMDM,用LPS刺激,检测Mincle、iNOS、MyD88表达及Syk/NF-κB激活;将BMDM与JB6细胞共培养,测定表皮细胞损伤相关分子表达;利用ChIP和过表达/敲低PU.1分析其调控Mincle的机制。
评估靶向Mincle中和抗体对银屑病小鼠的治疗效果
对IMQ诱导的银屑病小鼠连续7天皮下注射Mincle中和抗体或IgG对照,分析皮肤病理、炎症因子和角蛋白17表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型 | 咪喹莫特乳膏 | -- | -- |
| 中和抗体治疗 | 抗小鼠Mincle IgG中和单克隆抗体 | Invivogen | mabg-mmcl |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| RPMI 1640培养基 | -- | -- | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | TianGen | DP419 |
| 逆转录 | HiScript III逆转录预混液 | Vazyme | R323-01 |
| 实时荧光定量PCR | ChamQ通用SYBR qPCR预混液 | Vazyme | Q711-02 |
| LightCycler 480 II实时荧光定量PCR仪 | Roche | -- | |
| 组织学 | 光学显微镜(DM500) | Leica | DM500 |
| 免疫荧光 | EVOS成像系统 | -- | -- |
| 流式细胞术 | 流式细胞仪 | BD bioscience | -- |
| 蛋白质印迹 | Mincle抗体 | Santa cruz | sc-390806 |
| p-Syk抗体 | Cell Signaling Technology | 2717S | |
| Syk抗体 | Cell Signaling Technology | 13198S | |
| p-P65抗体 | Cell Signaling Technology | 3033S | |
| P65抗体 | Cell Signaling Technology | 8242S | |
| iNOS抗体 | Cell Signaling Technology | 13120S | |
| F4/80抗体 | Santa cruz | sc-52664 | |
| IL-1β抗体 | Santa cruz | sc-52012 | |
| IL-6抗体 | Santa cruz | sc-32296 | |
| TNFα抗体 | Santa cruz | sc-52746 | |
| PU.1抗体 | Cell Signaling Technology | 2258S | |
| 角蛋白17抗体 | Proteintech | 17516-1-AP | |
| 整合素β1抗体 | Bioss | bs-0486R | |
| CXCL9抗体 | Bioss | bs-2551R | |
| 共培养实验 | Transwell小室 | Millicell | PIHT30R48 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | IMQ剂量:62.5 mg/天;涂抹面积:3.0 cm × 2.0 cm;持续时间:7天 阅读提示:材料与方法中的“The psoriasis mice model”一节 |
| 巨噬细胞耗竭与过继转移 | 氯膦酸盐脂质体注射时间:IMQ后第2天;剂量:200 μl;BMDM过继转移:5×10^6细胞/50 μl,尾静脉,第3和第5天 阅读提示:材料与方法中的“Macrophage deletion and Neutralizing antibody injection”及图3A、B |
| 巨噬细胞特异性Mincle敲除小鼠 | 小鼠品系:Mincleflox/flox/Lyz2-cre+/+;对照组:Mincleflox/flox/Lyz2-cre−/−;样本量:每组4只 阅读提示:材料与方法中的“Animals”及图4 |
| 体外细胞实验 | BMDM分化条件:DMEM+30% L929上清,7天;LPS浓度:500 ng/ml;共培养比例:BMDM 2×10^5,JB6 5×10^5 阅读提示:材料与方法中的“Cell culture”和“Co-culture system” |
| 抗体治疗 | Mincle中和抗体剂量:5 μg/天;注射方式:皮下;持续时间:7天;对照组:IgG对照 阅读提示:材料与方法中的“Macrophage deletion and Neutralizing antibody injection” |