建立ALF小鼠模型并验证CD73表达上调
验证酒精+CCl4诱导的ALF模型中CD39-CD73-腺苷轴及纤维化指标的变化。
雄性C57BL/6小鼠喂食含5%乙醇的液体饲料8周,每周两次灌胃高浓度酒精(5 g/kg),最后两周腹腔注射CCl4。通过H&E、Masson、Sirius Red染色、ALT/AST检测和免疫组化评估肝损伤和纤维化,并检测CD73、CD39、α-SMA、COL1a1表达。
CD73/NT5E-mediated ubiquitination of AURKA regulates alcohol-related liver fibrosis via modulating hepatic stellate cell senescence.
包含人类肝组织样本、CD73敲除小鼠模型、细胞模型(HSC-T6、LX-2),并进行功能验证(细胞增殖、凋亡、衰老)和机制验证(Co-IP、分子对接、泛素化实验)等至少两个独立证据层级。
CD73基因敲除小鼠(酒精+CCl4诱导ALF模型) 人肝星状细胞系LX-2 大鼠肝星状细胞系HSC-T6 原代小鼠肝星状细胞
CD73基因敲除小鼠(KO)经酒精+CCl4处理8周(酒精液体饲料5%,灌胃5 g/kg每周两次,最后两周CCl4腹腔注射)与WT对照 HSC-T6细胞用200 μM乙醛处理48小时;LX-2细胞用600 μM乙醛处理 利用siRNA敲低和pEX3质粒过表达CD73、p53、AURKA,并用MLN8237抑制AURKA(HSC-T6用25 nM,LX-2用2.5 nM) 泛素化实验:MG132(1 μM)抑制蛋白酶体,CHX追踪AURKA蛋白半衰期
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证酒精+CCl4诱导的ALF模型中CD39-CD73-腺苷轴及纤维化指标的变化。
雄性C57BL/6小鼠喂食含5%乙醇的液体饲料8周,每周两次灌胃高浓度酒精(5 g/kg),最后两周腹腔注射CCl4。通过H&E、Masson、Sirius Red染色、ALT/AST检测和免疫组化评估肝损伤和纤维化,并检测CD73、CD39、α-SMA、COL1a1表达。
在乙醛刺激的HSC-T6和LX-2细胞中比较CD39和CD73对细胞活化、增殖和凋亡的影响。
HSC-T6细胞用200 μM乙醛处理48小时,LX-2细胞用600 μM乙醛处理。通过siRNA敲低和pEX3质粒过表达CD39和CD73,检测α-SMA、COL1a1表达、细胞凋亡(流式)和增殖相关蛋白。
验证CD73缺失对酒精+CCl4诱导的肝损伤和纤维化的保护作用。
使用CD73敲除(KO)小鼠和WT小鼠,分为四组(WT、WT+EtOH+CCl4、KO、KO+EtOH+CCl4),进行上述模型处理,检测血清ALT/AST、肝组织病理、CD73、α-SMA和COL1a1表达。
验证CD73是否通过p53信号通路调节肝星状细胞衰老。
用siRNA敲低或pEX3质粒过表达CD73或p53,检测p53、p21、p16、α-SMA、COL1a1表达及SA-β-Gal染色。
鉴定CD73的下游靶点AURKA,并验证抑制AURKA对纤维化和衰老的影响。
通过蛋白质组学与STRING数据库预测重叠,鉴定AURKA。用MLN8237抑制AURKA,检测细胞活力(CCK-8)、AURKA表达、α-SMA、COL1a1、p53、p21、p16和SA-β-Gal活性。
验证CD73与AURKA的直接结合,并阐明CD73对AURKA蛋白稳定性和泛素化的影响。
通过Co-IP和免疫荧光双染检测CD73与AURKA相互作用;用CHX追踪蛋白半衰期;用MG132、CQ、ALLN抑制不同降解途径;用泛素化实验检测AURKA泛素化水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 抗体 | 抗β-肌动蛋白抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-47778 |
| 抗α-平滑肌肌动蛋白抗体 | Bioss | bs-10196R | |
| 抗α-平滑肌肌动蛋白抗体 | Bioss | bsm-33187M | |
| 抗COL1a1抗体 | Bioss | bs-10423R | |
| 抗CD39抗体 | proteintech | 14211-1-AP | |
| 抗CD73抗体 | Invitrogen | PA5-81614 | |
| 抗CD73抗体 | proteintech | 12231-1-AP | |
| 抗c-Myc抗体 | Abcam | ab32072 | |
| 抗Cyclin D1抗体 | Abcam | ab40754 | |
| 抗Bax抗体 | Abcam | ab32503 | |
| 抗Bcl-2抗体 | Abcam | ab182858 | |
| 抗cleaved caspase 3抗体 | Abcam | ab184787 | |
| 抗AURKA抗体 | Wanleibio | WL03733 | |
| 抗AURKA抗体 | Abcam | ab52973 | |
| 抗磷酸化AURKA抗体 | Abmart | TA3011 | |
| 抗p53抗体 | Bioss | bs-8687R | |
| 抗p21抗体 | Abcam | ab109199 | |
| 抗p16抗体 | Wanleibio | WL01418 | |
| HRP标记的抗兔二抗 | ZSGB-BIO | -- | |
| 药物处理 | MLN8237 | ApexBio Technology | A4110 |
| MG132 | Selleck | -- | |
| 氯喹 | Selleck | -- | |
| ALLN | Selleck | -- | |
| 生化检测 | ALT检测试剂盒 | Mindray | -- |
| AST检测试剂盒 | Mindray | -- | |
| 细胞衰老检测 | 衰老β-半乳糖苷酶染色试剂盒 | Beyotime | C0602 |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | HyClone | -- |
| 胎牛血清 | Biological Industries | -- | |
| Nycodenz密度梯度介质 | Sigma | -- | |
| Hank's液 | Gibco | -- | |
| 细胞凋亡检测 | Annexin-V-FITC/PI凋亡检测试剂盒 | Best bio | -- |
| 转染 | LipoFiterTM3转染试剂 | -- | -- |
| Opti-MEM培养基 | -- | -- | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| RNA定量 | Nanodrop 2000分光光度计 | Thermo Scientific | -- |
| 蛋白检测 | ECL化学发光检测系统 | Bio-Rad | -- |
| 蛋白分析 | ImageJ软件 | National Institutes of Health | -- |
| 免疫共沉淀 | 裂解液 | Beyotime Biotechnology | -- |
| 蛋白A/G琼脂糖珠 | Bioworld | -- | |
| 腺苷检测 | 腺苷检测试剂盒 | Abcam | ab211094 |
| 显微镜 | Olympus IX83显微镜 | Olympus | -- |
| 流式细胞术 | 流式细胞仪 | Beckman Coulter | -- |
| 质谱分析 | Orbitrap质谱仪(Q-Exacitve HF) | -- | -- |
| 分子对接 | ZDOCK | -- | -- |
| AUTODOCK 4.1 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| ALF小鼠模型 | 小鼠品系、周龄、性别;酒精饮食浓度及持续时间;酒精灌胃剂量和频率;CCl4浓度、溶剂及注射剂量和时间 阅读提示:Materials and methods:Animal studies;图1F |
| 细胞模型 | 细胞系来源;乙醛浓度和处理时间;细胞培养条件(培养基、血清、CO2、温度) 阅读提示:Materials and methods:Cell culture and treatment |
| 转染 | siRNA序列和质粒名称;转染试剂及用量;转染时间 阅读提示:Materials and methods:Cell transfection;表2 |
| AURKA抑制实验 | MLN8237浓度选择(HSC-T6和LX-2不同);处理时间 阅读提示:Materials and methods:CCK-8 Analysis;图6 |
| 泛素化实验 | CHX浓度和处理时间;MG132、CQ、ALLN浓度和应用目的;泛素化检测方法 阅读提示:Materials and methods:CCK-8 Analysis;图8F-J |