抑制PD-1通过改变SHP1/2-PI3K/Akt轴减少肺缺血再灌注损伤中肺泡巨噬细胞的M1极化

Inhibition of PD-1 Alters the SHP1/2-PI3K/Akt Axis to Decrease M1 Polarization of Alveolar Macrophages in Lung Ischemia-Reperfusion Injury.

作者信息Xiaojing He, Jingyuan Xiao, Zhao Li, Mengling Ye, Jinyuan Lin, Zhen Liu, Yubing Liang, Huijun Dai, Ren Jing, Fei Lin
PMID36357527
发布时间2023-04
DOI10.1007/s10753-022-01762-6

实验完整度

包含大鼠LIRI模型和NR8383细胞OGD/R模型两个独立证据层级,并进行了PD-1抑制、SHP1/2抑制、Akt激活等药物干预及机制验证。

主要模型

Sprague-Dawley大鼠LIRI模型 NR8383大鼠肺泡巨噬细胞OGD/R模型

重点核对

大鼠LIRI模型:左肺门夹闭1小时,再灌注2小时(用于结果分析) NR8383细胞OGD/R模型:1小时缺氧(1% O2)后2小时复氧 PD-1抑制剂BMS202剂量:体内5 mg/kg口服灌胃,体外1 µM预处理30分钟 SHP1/2抑制剂NSC87877剂量:体内10 mg/kg口服灌胃,体外10 µM预处理30分钟 Akt激活剂SC79剂量:体内40 mg/kg腹腔注射,体外10 µM预处理60分钟

摘要

肺泡巨噬细胞(AMs)极化为M1表型有助于肺缺血再灌注损伤(LIRI)期间的炎症反应和组织损伤。程序性细胞死亡因子-1(PD-1)调节巨噬细胞的极化,但其在LIRI中的作用尚不清楚。我们在体内和体外LIRI模型中研究了PD-1在AM极化中的作用。成年Sprague-Dawley大鼠接受缺血再灌注,伴有或不伴有PD-1抑制剂、SHP1/2抑制剂或Akt激活剂的预处理。评估肺组织损伤和M1型AMs的浸润。作为动物研究的体外补充,培养的大鼠肺泡巨噬细胞经受氧葡萄糖剥夺和再氧合。使用Western blots评估SHP1/2和Akt蛋白水平,而使用酶联免疫吸附测定测量促炎细胞因子水平。损伤在体内和体外均上调PD-1。抑制PD-1减少了M1型AMs的数量、SHP1和SHP2的表达以及炎性细胞因子的水平。同时,它部分恢复了Akt激活。在抑制SHP1/2或激活PI3K/Akt通路后观察到类似的结果。PD-1通过SHP1/2-PI3K/Akt轴促进AMs向M1表型极化和炎症反应。抑制PD-1可能是限制LIRI的有效治疗策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
PD-1在肺缺血再灌注损伤(LIRI)中对肺泡巨噬细胞(AMs)极化的作用及其机制是什么?
核心机制
PD-1通过招募SHP1和SHP2,限制PI3K/Akt信号通路活性,从而促进AMs向M1表型极化并加剧炎症反应。
主要证据
在体内大鼠LIRI模型和体外NR8383细胞OGD/R模型中,抑制PD-1(BMS202)减少M1型AMs标志物(CD11c、CD16、CD86)表达和炎性细胞因子(TNF-α、IL-1β、IL-6)水平,降低SHP1/2表达并恢复Akt磷酸化;SHP1/2抑制剂(NSC87877)和Akt激活剂(SC79)产生类似效应。
研究意义
抑制PD-1可能是限制LIRI的有效治疗策略,为临床治疗提供潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立LIRI大鼠模型并评估损伤

建立肺缺血再灌注损伤模型,并评估损伤程度和PD-1表达变化。

成年雄性SD大鼠行左肺门夹闭1小时再灌注,于2、6、24、72小时处死,通过透射电镜、H&E染色、肺湿干比和病理评分评估组织损伤,通过Western blot和RT-qPCR检测PD-1表达。

2

体内药理学干预实验

验证抑制PD-1、抑制SHP1/2或激活Akt在体内的作用,明确其在LIRI中的功能角色。

分别用PD-1抑制剂BMS202(5 mg/kg,灌胃)、Akt激活剂SC79(40 mg/kg,腹腔注射)、SHP1/2抑制剂NSC87877(10 mg/kg,灌胃)预处理大鼠,然后进行I/R(1h缺血/2h再灌注),评估肺损伤、炎症因子和M1标志物。

3

体外OGD/R模型验证

在体外模型中验证PD-1对AM极化和炎症的影响,并探究其机制。

NR8383细胞经BMS202(1 µM)、SC79(10 µM)或NSC87877(10 µM)预处理后,进行氧糖剥夺(1% O2,1小时)和再氧合(95% O2,2小时),检测HIF-1α、PD-1、SHP1/2、p-Akt/Akt表达及炎症因子水平。

4

检测M1型巨噬细胞极化和炎症因子

评估不同干预对AMs向M1表型极化及炎症反应的影响。

通过免疫组化、流式细胞术和免疫荧光检测M1标志物(CD11c、CD16、CD86)表达,通过ELISA检测TNF-α、IL-1β、IL-6水平,通过Western blot检测相关蛋白表达。

5

验证SHP1/2和PI3K/Akt通路参与

验证PD-1通过SHP1/2-PI3K/Akt轴影响巨噬细胞极化。

使用Western blot检测SHP1、SHP2、p-Akt、Akt的表达,并用SHP1/2抑制剂NSC87877和Akt激活剂SC79处理,观察对M1极化和炎症的逆转作用。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
BMS202Selleck Chemicals--
SC79Selleck Chemicals--
NSC87877Selleck Chemicals--
TNF-α、IL-6和IL-1β ELISA试剂盒Elabscience Biotechnology--
抗HIF-1α、SHP1、SHP2、p-Akt、Akt和β-actin抗体Cell Signaling Technology--
抗PD-1、CD11c、CD16、CD86和CD86/PE抗体Bioss--
Alexa Fluor 594标记的山羊抗兔二抗Beyotime--
山羊抗兔IgG-HRPBeyotime--
牛血清白蛋白Beyotime--
BCA蛋白测定试剂盒Beyotime--
两步法Poly-HRP抗小鼠/兔IgG检测系统试剂盒Solarbio Life Sciences--
TRIzol试剂Invitrogen--
PrimeScript™反转录试剂盒Takara--
胎牛血清Gibco--
Ham's F-12K(Kaighn's)培养基Gibco--
透射电子显微镜HitachiH-7560
FACSCalibur™流式细胞仪BD Biosciences--
荧光显微镜OlympusBX51
光学显微镜OlympusCX23
Bio-Rad凝胶成像系统Bio-Rad--
Whitley H35低氧工作站Don Whitley Scientific--
SPSS 22.0IBM--
GraphPad Prism 5.0GraphPad Software--
Image-Pro-PlusMedia Cybernetics--
FlowJo软件Tree Star--
DAPISolarbio Life Sciences--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型
大鼠性别、品系、体重、周龄;缺血时间和再灌注时间;动物分组及每组样本量
阅读提示:Materials and Methods 的 Animals 和 LIRI Model 部分
药物干预
BMS202 剂量(5 mg/kg)、给药方式(口服灌胃)和给药时间;SC79 剂量(40 mg/kg)、给药方式(腹腔注射)和给药时间;NSC87877 剂量(10 mg/kg)、给药方式(口服灌胃)和给药时间
阅读提示:Materials and Methods 的 LIRI Model 部分
体外OGD/R模型
细胞系(NR8383)、培养条件、OGD/R处理时间(1小时缺氧、2小时复氧)、药物预处理浓度和时间(BMS202 1 µM 30分钟,SC79 10 µM 60分钟,NSC87877 10 µM 30分钟)
阅读提示:Materials and Methods 的 In Vitro OGD/R Model 部分
蛋白表达检测
抗体稀释比例(PD-1 1:500,HIF-1α 1:1000,SHP1 1:1000,SHP2 1:1000,p-Akt 1:2000,Akt 1:2000,β-actin 1:1000);蛋白上样量(等量);封闭液(5% BSA)
阅读提示:Materials and Methods 的 Western Blot Assay 部分
炎症因子和极化检测
ELISA试剂盒来源和检测指标;CD86流式抗体(PE标记)染色浓度和时间;免疫组化抗体稀释度(CD11c、CD16、CD86 1:500)
阅读提示:Materials and Methods 的 ELISAs、Flow Cytometry、Immunohistochemical Staining 部分