建立LIRI大鼠模型并评估损伤
建立肺缺血再灌注损伤模型,并评估损伤程度和PD-1表达变化。
成年雄性SD大鼠行左肺门夹闭1小时再灌注,于2、6、24、72小时处死,通过透射电镜、H&E染色、肺湿干比和病理评分评估组织损伤,通过Western blot和RT-qPCR检测PD-1表达。
Inhibition of PD-1 Alters the SHP1/2-PI3K/Akt Axis to Decrease M1 Polarization of Alveolar Macrophages in Lung Ischemia-Reperfusion Injury.
包含大鼠LIRI模型和NR8383细胞OGD/R模型两个独立证据层级,并进行了PD-1抑制、SHP1/2抑制、Akt激活等药物干预及机制验证。
Sprague-Dawley大鼠LIRI模型 NR8383大鼠肺泡巨噬细胞OGD/R模型
大鼠LIRI模型:左肺门夹闭1小时,再灌注2小时(用于结果分析) NR8383细胞OGD/R模型:1小时缺氧(1% O2)后2小时复氧 PD-1抑制剂BMS202剂量:体内5 mg/kg口服灌胃,体外1 µM预处理30分钟 SHP1/2抑制剂NSC87877剂量:体内10 mg/kg口服灌胃,体外10 µM预处理30分钟 Akt激活剂SC79剂量:体内40 mg/kg腹腔注射,体外10 µM预处理60分钟
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立肺缺血再灌注损伤模型,并评估损伤程度和PD-1表达变化。
成年雄性SD大鼠行左肺门夹闭1小时再灌注,于2、6、24、72小时处死,通过透射电镜、H&E染色、肺湿干比和病理评分评估组织损伤,通过Western blot和RT-qPCR检测PD-1表达。
验证抑制PD-1、抑制SHP1/2或激活Akt在体内的作用,明确其在LIRI中的功能角色。
分别用PD-1抑制剂BMS202(5 mg/kg,灌胃)、Akt激活剂SC79(40 mg/kg,腹腔注射)、SHP1/2抑制剂NSC87877(10 mg/kg,灌胃)预处理大鼠,然后进行I/R(1h缺血/2h再灌注),评估肺损伤、炎症因子和M1标志物。
在体外模型中验证PD-1对AM极化和炎症的影响,并探究其机制。
NR8383细胞经BMS202(1 µM)、SC79(10 µM)或NSC87877(10 µM)预处理后,进行氧糖剥夺(1% O2,1小时)和再氧合(95% O2,2小时),检测HIF-1α、PD-1、SHP1/2、p-Akt/Akt表达及炎症因子水平。
评估不同干预对AMs向M1表型极化及炎症反应的影响。
通过免疫组化、流式细胞术和免疫荧光检测M1标志物(CD11c、CD16、CD86)表达,通过ELISA检测TNF-α、IL-1β、IL-6水平,通过Western blot检测相关蛋白表达。
验证PD-1通过SHP1/2-PI3K/Akt轴影响巨噬细胞极化。
使用Western blot检测SHP1、SHP2、p-Akt、Akt的表达,并用SHP1/2抑制剂NSC87877和Akt激活剂SC79处理,观察对M1极化和炎症的逆转作用。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 药物处理 | BMS202 | Selleck Chemicals | -- |
| SC79 | Selleck Chemicals | -- | |
| NSC87877 | Selleck Chemicals | -- | |
| ELISA | TNF-α、IL-6和IL-1β ELISA试剂盒 | Elabscience Biotechnology | -- |
| Western blot | 抗HIF-1α、SHP1、SHP2、p-Akt、Akt和β-actin抗体 | Cell Signaling Technology | -- |
| 免疫组织化学/流式细胞术 | 抗PD-1、CD11c、CD16、CD86和CD86/PE抗体 | Bioss | -- |
| 免疫荧光 | Alexa Fluor 594标记的山羊抗兔二抗 | Beyotime | -- |
| Western blot | 山羊抗兔IgG-HRP | Beyotime | -- |
| 封闭 | 牛血清白蛋白 | Beyotime | -- |
| 蛋白定量 | BCA蛋白测定试剂盒 | Beyotime | -- |
| 免疫组织化学 | 两步法Poly-HRP抗小鼠/兔IgG检测系统试剂盒 | Solarbio Life Sciences | -- |
| RT-qPCR | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| PrimeScript™反转录试剂盒 | Takara | -- | |
| 细胞培养 | 胎牛血清 | Gibco | -- |
| Ham's F-12K(Kaighn's)培养基 | Gibco | -- | |
| 透射电镜 | 透射电子显微镜 | Hitachi | H-7560 |
| 流式细胞术 | FACSCalibur™流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| 免疫荧光 | 荧光显微镜 | Olympus | BX51 |
| H&E染色/免疫组化图像采集 | 光学显微镜 | Olympus | CX23 |
| Western blot | Bio-Rad凝胶成像系统 | Bio-Rad | -- |
| 细胞培养 | Whitley H35低氧工作站 | Don Whitley Scientific | -- |
| 数据统计 | SPSS 22.0 | IBM | -- |
| GraphPad Prism 5.0 | GraphPad Software | -- | |
| 免疫组化定量 | Image-Pro-Plus | Media Cybernetics | -- |
| 流式数据分析 | FlowJo软件 | Tree Star | -- |
| 免疫荧光 | DAPI | Solarbio Life Sciences | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 大鼠性别、品系、体重、周龄;缺血时间和再灌注时间;动物分组及每组样本量 阅读提示:Materials and Methods 的 Animals 和 LIRI Model 部分 |
| 药物干预 | BMS202 剂量(5 mg/kg)、给药方式(口服灌胃)和给药时间;SC79 剂量(40 mg/kg)、给药方式(腹腔注射)和给药时间;NSC87877 剂量(10 mg/kg)、给药方式(口服灌胃)和给药时间 阅读提示:Materials and Methods 的 LIRI Model 部分 |
| 体外OGD/R模型 | 细胞系(NR8383)、培养条件、OGD/R处理时间(1小时缺氧、2小时复氧)、药物预处理浓度和时间(BMS202 1 µM 30分钟,SC79 10 µM 60分钟,NSC87877 10 µM 30分钟) 阅读提示:Materials and Methods 的 In Vitro OGD/R Model 部分 |
| 蛋白表达检测 | 抗体稀释比例(PD-1 1:500,HIF-1α 1:1000,SHP1 1:1000,SHP2 1:1000,p-Akt 1:2000,Akt 1:2000,β-actin 1:1000);蛋白上样量(等量);封闭液(5% BSA) 阅读提示:Materials and Methods 的 Western Blot Assay 部分 |
| 炎症因子和极化检测 | ELISA试剂盒来源和检测指标;CD86流式抗体(PE标记)染色浓度和时间;免疫组化抗体稀释度(CD11c、CD16、CD86 1:500) 阅读提示:Materials and Methods 的 ELISAs、Flow Cytometry、Immunohistochemical Staining 部分 |