生物材料形态对HUVECs O-糖基化的影响。

Morphology of Biomaterials Affect O-Glycosylation of HUVECs.

作者信息Xingyou Hu, Jiaoyue Sheng, Guoping Guan, Tongzhong Ju, David F Smith, Lu Wang
PMID36412876
发布时间2022-11-11
DOI10.3390/jfb13040235

实验完整度

包含体外细胞实验、表面表征(SEM、FTIR)、功能验证(CCK-8增殖、ELISA)、分子检测(COR A、Lectin blot、质谱)及机制探讨。

主要模型

HUVEC细胞系(ATCC PCS-100-013) PET编织物(经纱单丝,纬纱复丝)

重点核对

等离子体处理条件:20 Pa真空、5分钟、功率150-300 W 细胞接种密度:2×10^4 cells/well(用于粘附和糖基化分析) 培养时间:1, 3, 5, 7天(增殖和sICAM-1检测) 实验重复次数:3次 O-聚糖分析使用CORA技术,标记浓度为50 μM

摘要

生物材料已广泛应用于手术中病变组织的替代,并取得了巨大的成功和关注。目前,诸如PET编织物等生物材料的生物相容性通常通过体外和体内实验进行评估。然而,现有的实验方法无法揭示材料表面与细胞粘附之间的关系,且很少有研究关注材料表面形态如何影响细胞粘附和增殖的机制。因此,探究改变后的表面如何影响细胞粘附和生长具有重要意义。在本研究中,我们采用氩低温等离子体处理技术在PET编织物的经纱上创建纳米沟槽,并将人脐静脉内皮细胞(HUVEC)接种在这些织物上。随后,我们评估了在不同结构的聚酯编织物上生长的细胞的O-聚糖和N-聚糖谱。结果表明,聚酯编织物的表面形态可以影响培养的HUVEC的O-聚糖谱,但不影响N-聚糖谱。综上,本研究描述了生物材料表面形态对细胞聚糖生物合成的影响,并可能为基于培养细胞表面O-聚糖表达谱的生物材料的设计和制造(用作血管)提供新的见解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
生物材料表面形态是否以及如何影响HUVECs的粘附、增殖和糖基化?
核心机制
表面沟槽结构通过影响细胞粘附分子的表达和分布,进而调节O-聚糖的合成,但不影响N-聚糖。
主要证据
SEM观察表面形态;CCK-8评估增殖;ELISA检测sICAM-1;CORA和MALDI-TOF-MS分析O-聚糖;Lectin blot和PNGase F消化分析N-聚糖。
研究意义
为基于O-聚糖表达谱的血管用生物材料的设计和制造提供新的见解。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

等离子体处理构建表面微结构

验证不同等离子体功率和时间对PET单丝表面形态的影响。

使用氩低温等离子体处理PET单丝和复丝,通过SEM观察表面沟槽的形成。

2

细胞培养与增殖评估

评估不同表面结构对HUVECs增殖的影响。

将HUVECs接种于不同织物上,培养1、3、5、7天,使用CCK-8检测细胞增殖。

3

粘附分子表达检测

检测表面结构对ICAM-1表达和分布的影响。

通过免疫荧光染色观察mICAM-1分布,ELISA检测sICAM-1水平。

4

O-聚糖谱分析

分析不同表面结构对HUVECs O-糖基化的影响。

采用CORA技术代谢标记O-聚糖,结合MALDI-TOF-MS分析。

5

N-聚糖谱分析

分析不同表面结构对HUVECs N-糖基化的影响。

使用Lectin blot和PNGase F消化,结合MALDI-TOF-MS分析N-聚糖结构。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
低温等离子体----
扫描电子显微镜ZEISSEVOLS15
傅里叶变换红外光谱Thermo Fisher Scientific--
内皮细胞生长试剂盒-BBEATCCPCS-100-013
胎牛血清Gibco--
青霉素-链霉素Gibco--
CCK-8试剂盒Keygen--
酶标仪Tecan--
sICAM-1 ELISA试剂盒Sigma--
兔抗人ICAM-1-FITC抗体Beijing Biosynthesis Biotechnology Co., Ltd.--
TRITC标记的鬼笔环肽Yeasen--
DAPIYeasen--
共聚焦激光扫描显微镜Leica--
[12C6]苄基-α-GalNAc(Ac)3----
[13C6]苄基-α-GalNAc(Ac)3----
PNGase F----
MALDI-TOF质谱----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
等离子体处理
真空度20 Pa;处理时间3 min和5 min;功率150, 200, 250, 300 W;织物类型:单丝和复丝
阅读提示:Methods 2.1, Table 1
细胞增殖检测
细胞接种密度2×10^4 cells/well;培养时间20, 68, 116, 164 h;CCK-8试剂盒(Keygen);OD 450测量
阅读提示:Methods 2.3
sICAM-1 ELISA
培养时间1天和7天;离心条件3000 rpm,10 min;ELISA试剂盒(Sigma);OD 450测量
阅读提示:Methods 2.4
免疫荧光成像
细胞培养7天;固定4% PFA,4°C 2h;抗体浓度1:100;细胞核染色DAPI 1 min
阅读提示:Methods 2.5
O-聚糖分析
细胞接种密度2×10^4 cells/well;标记浓度50 μM;标记时间3天;样本混合比例1:1
阅读提示:Methods 2.7
N-聚糖分析
细胞接种密度5×10^4 cells/well;培养时间3天;PNGase F消化;MALDI-TOF-MS分析
阅读提示:Methods 2.8, 2.9