LPAR1和异常表达的LPAR3差异化促进恶性外周神经鞘瘤细胞的迁移和增殖

LPAR1 and aberrantly expressed LPAR3 differentially promote the migration and proliferation of malignant peripheral nerve sheath tumor cells.

作者信息Shannon Weber Doutt, Jody Fromm Longo, Steven L Carroll
PMID36416236
期刊Glia
发布时间2023-03
DOI10.1002/glia.24308

实验完整度

包含体外细胞系模型、患者肿瘤样本、RNA-seq和全外显子测序、shRNA敲低功能验证以及R-Ras/ROCK信号通路机制验证等多层次实验。

主要模型

人MPNST细胞系(ST88-14、STS-26T、90.8TL等) 非肿瘤性人雪旺细胞 手术切除的MPNST肿瘤样本

重点核对

LPAR1和LPAR3在MPNST细胞中的表达水平(RNA-Seq和RT-qPCR验证) LPAR1和LPAR3的敲低效率(shRNA)及其对增殖和迁移的影响 油酰-LPA处理浓度(1 nM至10 μM)和持续时间(48小时增殖,6小时迁移) DN R-Ras和Y27632抑制剂的浓度(2 μg/mL多西环素诱导,10 μM Y27632)

摘要

由雪旺细胞衍生的肿瘤,称为恶性外周神经鞘瘤(MPNST),是1型神经纤维瘤病患者中最常见的恶性肿瘤和主要死因。利用基因组规模的shRNA筛选,我们先前发现了溶血磷脂酸受体(LPAR)对MPNST增殖和/或存活至关重要的证据。在此,我们检测了MPNST中所有六种LPA受体的表达和突变状态,评估了单个LPA受体在MPNST生理学中的作用,并检查了它们激活关键神经纤维瘤蛋白调控的信号级联的能力。我们发现人雪旺细胞表达LPAR1和LPAR6,而MPNST细胞主要表达LPAR1和LPAR3。对16个MPNST细胞系的全外显子组测序显示,任何LPAR基因或ENPP2(编码主要LPA生物合成酶的基因)均无突变证据。油酰-LPA(一种具有不饱和侧链的LPA变体)促进MPNST细胞增殖和迁移。LPAR1敲低消除了LPA的促迁移效应,而LPAR3敲低则降低了增殖。用多西环素诱导的显性负性(DN)R-Ras突变体抑制R-Ras信号传导(该突变体同时抑制R-Ras和R-Ras2),阻断了LPA的促迁移效应。相反,DN R-Ras不影响神经调节蛋白-1β(NRG1β)诱导的迁移,表明LPA和NRG1β通过不同的途径促进MPNST迁移。LPA诱导的迁移也受到Y27632(一种介导MPNST中R-Ras效应的ROCK1/2激酶抑制剂)的抑制。因此,LPAR1和异常表达的LPAR3在MPNST中介导不同的效应。这些受体及其调控的信号通路可能是MPNST中潜在的治疗靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
LPA及其受体在MPNST细胞生理学中的作用,以及不同LPA受体是否介导不同的功能。
核心机制
LPA通过LPAR1和LPAR3差异化发挥功能:LPAR1介导LPA诱导的迁移,LPAR3驱动增殖;LPA诱导的迁移依赖于R-Ras/R-Ras2信号通路和ROCK活性。
主要证据
RNA-Seq显示MPNST细胞表达LPAR1和LPAR3;shRNA敲低LPAR1减少迁移,敲低LPAR3减少增殖;DN R-Ras和Y27632阻断LPA诱导的迁移。
研究意义
LPAR1和LPAR3可能成为MPNST的新的治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

LPA对MPNST细胞增殖和迁移的影响

确定外源性LPA是否影响MPNST细胞的增殖和迁移。

用不同浓度油酰-LPA处理三种MPNST细胞系(ST88-14、STS-26T、90.8TL),进行3H-胸苷掺入实验和Transwell迁移实验。

2

LPA受体表达和突变分析

确定MPNST细胞和肿瘤样本中LPA受体的表达和突变状态。

通过RNA-Seq和RT-qPCR检测非肿瘤雪旺细胞和16个MPNST细胞系中LPAR1-6的表达;通过免疫组化检测手术切除MPNST中LPAR1和LPAR3的表达;通过全外显子测序检测LPAR基因和ENPP2的突变。

3

LPAR1和LPAR3功能验证

确定LPAR1和LPAR3在LPA诱导的增殖和迁移中的作用。

在ST88-14和STS-26T细胞中使用shRNA敲低LPAR1或LPAR3,评估对增殖(Celigo增殖实验,7天)和迁移(Transwell)的影响。

4

R-Ras和ROCK信号通路验证

确定LPA诱导的迁移是否依赖于R-Ras和ROCK信号通路。

在ST88-14和STS-26T细胞中使用多西环素诱导的DN R-Ras突变体,检测LPA诱导的迁移和ERK/AKT磷酸化;使用ROCK抑制剂Y27632检测对LPA诱导迁移的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
油酰-LPAAvianti Polar Lipids#857128X
Ki16425Cayman Chemical Company#10012659
Y27632Selleckchem#S6390
DMEM培养基----
胎牛血清----
TruSeq RNA样本制备试剂盒Illumina--
QIAamp DNA血液迷你试剂盒Qiagen#51104
SureSelectXT人类全外显子试剂盒Agilent Technologies--
LPAR1抗体Abcam#ab166903
LPAR3抗体Abcam#137497
LPAR1抗体Novus BiologicalsNBPI-03363
LPAR3抗体Biossbs-2882R
质膜标志物抗体Abcamab7671
Hoechst 33258----
鬼笔环肽----
Prolong Diamond封片剂Invitrogen--
Transwell小室Becton Dickinson Labware--
EVOS M5000成像系统Thermo Scientific--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
MPNST细胞系来源和培养条件(DMEM10,10% FCS,青霉素/链霉素)
阅读提示:Materials and Methods 2.2
LPA刺激
油酰-LPA浓度(1 nM-10 μM);增殖实验刺激48小时,迁移实验刺激6小时
阅读提示:Results 3.1, Figure 1
受体表达分析
RNA-Seq和RT-qPCR检测LPAR1-6的表达;全外显子测序检测LPAR基因和ENPP2突变
阅读提示:Materials and Methods 2.4, 2.10; Results 3.2
shRNA敲低
shRNA序列(表S1);转导效率;敲低效率验证(RT-qPCR)
阅读提示:Materials and Methods 2.6; Results 3.3, Figure S5
功能实验
增殖实验(Celigo,7天,2000细胞/孔);迁移实验(Transwell,6小时,多聚赖氨酸/层粘连蛋白包被)
阅读提示:Materials and Methods 2.8, 2.9; Results 3.1
信号通路验证
DN R-Ras诱导(多西环素2 μg/mL,48小时);Y27632浓度(10 μM);pERK/pAKT检测
阅读提示:Materials and Methods 2.9, 2.11; Results 3.4