建立脊髓损伤模型并检测SASH1表达
确定SASH1在脊髓损伤后表达变化及其与损伤的相关性。
在成年大鼠T9-T10节段进行中度挫伤,于损伤后7、14、21天取损伤处脊髓组织,通过Western blot检测SASH1蛋白水平。
Depletion of SASH1, an astrocyte differentiation-related gene, contributes to functional recovery in spinal cord injury.
包含体外细胞实验(原代星形胶质细胞、神经元、神经干细胞)、体内动物模型(大鼠SCI模型)以及分子检测(Western blot、qRT-PCR、ELISA、免疫荧光),并进行了功能验证(BBB评分)和机制研究。
大鼠脊髓损伤模型 原代脊髓星形胶质细胞 原代脊髓神经元 神经干细胞分化模型
SASH1 siRNA体内注射剂量和位点(1 μg/5位点) BBB评分时间点(0,1,3,7,10,14,17,21天) siRNA处理浓度(200 nM)及转染方法(电转) 细胞培养条件(胎牛血清、谷氨酰胺、双抗)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定SASH1在脊髓损伤后表达变化及其与损伤的相关性。
在成年大鼠T9-T10节段进行中度挫伤,于损伤后7、14、21天取损伤处脊髓组织,通过Western blot检测SASH1蛋白水平。
评估SASH1敲低对脊髓损伤后运动功能恢复的影响。
在SCI后注射siSASH1或siCtrl,于不同时间点进行BBB评分,并通过Western blot验证敲低效率。
区分SASH1在神经元和星形胶质细胞中的作用。
用siSASH1处理原代脊髓神经元和星形胶质细胞,检测神经元存活、轴突长度,以及星形胶质细胞分泌的BDNF、IFN-γ等细胞因子。
验证SASH1敲低的星形胶质细胞是否通过分泌因子促进轴突生长。
将siSASH1处理的星形胶质细胞与神经元共培养,测量轴突长度和p-TrkB表达。
探究SASH1在神经干细胞向星形胶质细胞分化中的作用。
体外培养NSCs,分别诱导分化为星形胶质细胞和神经元,检测SASH1、GFAP、PAX6表达,并在SASH1敲低后检测Nestin和BDNF变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM/F12培养基 | Invitrogen | 11320033 |
| 胎牛血清 | Gibco | 10099141C | |
| 谷氨酰胺 | Gibco | 25030164 | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | 15140122 | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| RT-qPCR | HiScript逆转录酶 | Vazyme Biotech | -- |
| 2×SYBR Green qPCR预混液 | Vazyme Biotech | -- | |
| Western blot | 抗SASH1抗体 | Bioss | bs-6099R |
| 抗GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| 化学发光液 | Tanon | 180-5001 | |
| 免疫荧光 | 抗Tuj1抗体 | BioLegend | 801201 |
| 抗磷酸化TrkB抗体 | MilliporeSigma | ABN1381 | |
| Hoechst染料 | Sigma | B2261 | |
| 免疫组化 | 抗GFAP抗体 | CST | 12389 |
| 抗神经丝蛋白200抗体 | Sigma | N4142 | |
| 抗硫酸软骨素蛋白聚糖抗体 | Sigma | C8035 | |
| DAPI染料 | Sigma | B9542 | |
| ELISA | BDNF ELISA试剂盒 | Hengyuan Biotechnology | HB500-Ra |
| bFGF ELISA试剂盒 | Hengyuan Biotechnology | HB1259-Ra | |
| VEGF ELISA试剂盒 | Hengyuan Biotechnology | HB1192-Ra | |
| IFN-γ ELISA试剂盒 | Hengyuan Biotechnology | HB986-Ra | |
| LCN2 ELISA试剂盒 | Hengyuan Biotechnology | HB1260-Ra | |
| C1q ELISA试剂盒 | Hengyuan Biotechnology | HB920-Ra | |
| 细胞培养 | N2添加剂-B | StemCell | 07156 |
| 重组bFGF | Proteintech | 450-33 | |
| 表皮生长因子 | Sigma | E9644 | |
| 多聚赖氨酸 | Sigma-Aldrich | P4832 | |
| 纤连蛋白 | Gibco | 33016-015 | |
| siRNA合成 | SASH1 siRNA | GENERAL BIOL | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 大鼠品系(Sprague-Dawley),体重(200±20g),分组(sham和SCI),每组3只;挫伤力度(160 kilodyne),停留时间(30秒) 阅读提示:见Materials and Methods第2.1节 |
| 体内siRNA处理 | siRNA剂量(1μg/位点),注射位点(5个),SASH1敲低效率(7天74%,14天51%) 阅读提示:见Materials and Methods第2.1节及Figure 1C |
| 体外细胞实验 | siRNA浓度(200 nM),转染方法(电转),原代细胞来源(E14脊髓神经元,P1脊髓星形胶质细胞),培养条件(DMEM/F12,10%胎牛血清,0.5mM谷氨酰胺,1%青霉素-链霉素) 阅读提示:见Materials and Methods第2.5节 |
| 共培养实验 | 星形胶质细胞接种密度(4.5×10^4细胞/孔),神经元密度(4×10^4细胞/孔),转染时间(48小时) 阅读提示:见Materials and Methods第2.8节及Figure 3C |
| 神经干细胞分化 | NSC来源(E14大鼠大脑皮层),分化时间(24和48小时),星形胶质细胞分化培养基及包被(0.1mg/ml多聚赖氨酸),神经元分化培养基及包被(30μg/ml纤连蛋白) 阅读提示:见Materials and Methods第2.9节 |