建立NSD1缺失模型
验证NSD1缺失对SCC肿瘤免疫表型的影响
使用CRISPR-Cas9在MOC1和Cal27等细胞中敲除NSD1,并通过Nsd1条件敲除小鼠结合4NQO诱导口腔鳞癌模型。
Histone methylation antagonism drives tumor immune evasion in squamous cell carcinomas.
包含同基因小鼠模型、基因工程小鼠模型、患者样本和体外细胞实验等多个独立证据层级,并有功能验证和机制验证。
MOC1小鼠口腔鳞状细胞癌细胞系 4NQO诱导的口腔鳞状细胞癌小鼠模型 Cal27人HNSCC细胞系 人HNSCC患者样本
MOC1细胞中Nsd1敲除(CRISPR-Cas9)及对照克隆 C57BL/6和NSG小鼠皮下移植2×10^6细胞 EPZ-6438剂量(200或400 mg/kg)及给药方式(口服,每日一次) 4NQO浓度(50 μg/ml)处理16周 肿瘤浸润免疫细胞(CD8+ T、NK、巨噬细胞)定量
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证NSD1缺失对SCC肿瘤免疫表型的影响
使用CRISPR-Cas9在MOC1和Cal27等细胞中敲除NSD1,并通过Nsd1条件敲除小鼠结合4NQO诱导口腔鳞癌模型。
检测NSD1缺失对肿瘤微环境中免疫细胞浸润的影响
通过流式细胞术和免疫荧光染色分析肿瘤内T细胞、CD8+ T细胞、NK细胞和巨噬细胞的浸润情况,并在人HNSCC样本中验证。
探究NSD1缺失对干扰素刺激基因表达和信号通路的影响
通过RNA-seq、qRT-PCR和Western blot检测ISG表达和STAT1磷酸化,并利用LPS和htDNA处理评估PAMP诱导的干扰素反应。
阐明NSD1缺失导致干扰素抑制的表观遗传机制
通过CUT&Tag分析H3K36me2和H3K27me3分布,鉴定IFNLR1等基因的表观遗传沉默,并探讨PRC2的参与。
评估EZH2抑制对NSD1缺陷肿瘤的治疗效果
在MOC1同基因模型中,给予EPZ-6438(200或400 mg/kg)口服治疗,观察肿瘤生长和免疫浸润变化,并在免疫缺陷小鼠中验证免疫依赖性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Sigma-Aldrich | -- |
| 胎牛血清 | Sigma-Aldrich | -- | |
| IMDM培养基 | Cytiva | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 胰岛素 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 氢化可的松 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 表皮生长因子 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 药物处理 | EPZ-6438(Tazemetostat) | MedChemExpress | HY-13803 |
| 5-氮杂胞苷 | MedChemExpress | HY-10586 | |
| SGI-110 | MedChemExpress | HY-13542 | |
| 他莫昔芬 | Sigma-Aldrich | T5648 | |
| 脂多糖 | Sigma-Aldrich | L7895 | |
| 鲱鱼精DNA | Sigma-Aldrich | D6898 | |
| 免疫染色 | J2抗体 | SCICONS | 10010500 |
| 流式细胞术 | IV型胶原酶 | ThermoFisher | 17104019 |
| 脱氧核糖核酸酶I | Sigma-Aldrich | -- | |
| 红细胞裂解液 | Biolegend | 420301 | |
| 活/死染料 | ThermoFisher | -- | |
| CD45抗体 | Biolegend | 103127 | |
| CD8a抗体 | Biolegend | 100721 | |
| NK1.1抗体 | Biolegend | 108739 | |
| CD11b抗体 | Biolegend | 101241 | |
| Western blot | H3K36me2抗体 | Cell Signaling Technology | 2901 |
| H3K27me3抗体 | Cell Signaling Technology | 9733 | |
| NSD1抗体 | NeuroMab | N312/10 | |
| STAT1抗体 | ThermoFisher | AHO0832 | |
| 磷酸化STAT1抗体 | Cell Signaling Technology | 9167 | |
| RT-qPCR | SYBR Green预混液 | ThermoFisher | A25741 |
| cDNA合成试剂盒 | Takara | -- | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | 15596-018 |
| ELISA | 2'3'-cGAMP ELISA试剂盒 | Cayman | 501700 |
| IFN-λ2/λ3 ELISA试剂盒 | R&D Systems | DY1789B | |
| CUT&Tag | 刀豆蛋白A包被磁珠 | Bangs Laboratories | BP531 |
| AMPure XP磁珠 | Beckman Coulter | A63881 | |
| 高活性pA-Tn5转座酶 | -- | -- | |
| ChIP | Dynabeads蛋白A磁珠 | Invitrogen | 10006D |
| 细胞转染 | Lipofectamine LTX转染试剂 | ThermoFisher | A12621 |
| Lipofectamine RNAiMAX转染试剂 | ThermoFisher | 13778-150 | |
| 病毒包装 | PEG-it病毒沉淀试剂 | SystemBio | LV810A-1 |
| 质粒构建 | pSpCas9(BB)-2A-GFP质粒 | Addgene | 48138 |
| psPAX2包装质粒 | Addgene | 12260 | |
| pVSV-G包膜质粒 | Addgene | 138479 | |
| CRISPRa | dCas9VPR-Neo | Addgene | 63798 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系来源和培养条件(培养基、血清浓度、添加剂) 阅读提示:STAR Methods - Cell lines and Cell Culture |
| 基因敲除 | sgRNA序列、转染试剂、单克隆筛选和验证方法 阅读提示:STAR Methods - CRISPR-Cas9 mediated gene knockout |
| 动物模型 | 小鼠品系、周龄、性别、细胞注射数量、肿瘤测量时间点 阅读提示:STAR Methods - Xenograft experiments |
| 4NQO诱导模型 | 4NQO剂量、处理时间、他莫昔芬剂量和给药方式 阅读提示:STAR Methods - Nsd1 conditional knockout mice and carcinogen-induced oral SCC model |
| EPZ-6438治疗 | 给药剂量、给药途径、给药频率、治疗开始时间 阅读提示:STAR Methods (在Xenograft experiments部分)和Figure 7 legend |
| 免疫浸润分析 | 流式抗体、IF抗体、ROI选取标准 阅读提示:STAR Methods - Flow Cytometry 和 Immunohistochemistry (IHC) and immunofluorescence (IF) staining |