组蛋白甲基化拮抗驱动鳞状细胞癌的肿瘤免疫逃逸

Histone methylation antagonism drives tumor immune evasion in squamous cell carcinomas.

作者信息Yinglu Li, Elizabeth M Goldberg, Xiao Chen, Xinjing Xu, John T McGuire, Giuseppe Leuzzi, Dimitris Karagiannis, Tiffany Tate, Nargess Farhangdoost, Cynthia Horth, Esther Dai, Zhiming Li, Zhiguo Zhang, Benjamin Izar, Jianwen Que, Alberto Ciccia, Jacek Majewski, Angela J Yoon, Laurie Ailles, Cathy Lee Mendelsohn, Chao Lu
PMID36206767
期刊Mol Cell
发布时间2022-10
DOI10.1016/j.molcel.2022.09.007

实验完整度

包含同基因小鼠模型、基因工程小鼠模型、患者样本和体外细胞实验等多个独立证据层级,并有功能验证和机制验证。

主要模型

MOC1小鼠口腔鳞状细胞癌细胞系 4NQO诱导的口腔鳞状细胞癌小鼠模型 Cal27人HNSCC细胞系 人HNSCC患者样本

重点核对

MOC1细胞中Nsd1敲除(CRISPR-Cas9)及对照克隆 C57BL/6和NSG小鼠皮下移植2×10^6细胞 EPZ-6438剂量(200或400 mg/kg)及给药方式(口服,每日一次) 4NQO浓度(50 μg/ml)处理16周 肿瘤浸润免疫细胞(CD8+ T、NK、巨噬细胞)定量

摘要

癌症相关的染色质异常如何影响肿瘤-免疫相互作用仍不完全清楚。最近的研究将DNA低甲基化和逆转录转座子的去抑制与通过诱导干扰素反应实现的抗肿瘤免疫联系起来。在此,我们报道,组蛋白H3K36甲基转移酶NSD1的失活(这在鳞状细胞癌(SCC)中常见并诱导DNA低甲基化)出乎意料地导致肿瘤免疫浸润减少。在头颈部鳞状细胞癌的同基因和基因工程小鼠模型中,NSD1缺陷型肿瘤表现出免疫排斥和干扰素反应降低,尽管逆转录转座子高表达。机制上,NSD1缺失通过耗尽H3K36二甲基化(H3K36me2)和增加H3K27三甲基化(H3K27me3)导致先天免疫基因(包括III型干扰素受体IFNLR1)的沉默。抑制EZH2可恢复免疫浸润并损害Nsd1突变肿瘤的生长。因此,我们的工作揭示了一种可靶向的染色质串扰,它调节病毒模拟反应并使DNA低甲基化肿瘤能够逃避免疫。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
NSD1失活如何影响鳞状细胞癌的肿瘤免疫微环境和免疫逃逸?
核心机制
NSD1缺失导致H3K36me2减少和H3K27me3增加,通过表观遗传沉默先天免疫基因(如IFNLR1),损害干扰素信号通路,从而促进免疫排斥。
主要证据
在同基因MOC1和基因工程4NQO小鼠模型中,Nsd1敲除肿瘤免疫浸润减少;人HNSCC样本中NSD1突变与免疫排斥相关;细胞实验中NSD1敲除降低ISG表达和STAT1磷酸化。
研究意义
揭示NSD1突变肿瘤免疫逃逸的表观遗传机制,提出EZH2抑制剂作为NSD1缺陷型SCC治疗的潜在策略,并提示NSD1/H3K36me2可作为免疫检查点抑制剂疗效的预测生物标志物。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立NSD1缺失模型

验证NSD1缺失对SCC肿瘤免疫表型的影响

使用CRISPR-Cas9在MOC1和Cal27等细胞中敲除NSD1,并通过Nsd1条件敲除小鼠结合4NQO诱导口腔鳞癌模型。

2

评估肿瘤免疫浸润

检测NSD1缺失对肿瘤微环境中免疫细胞浸润的影响

通过流式细胞术和免疫荧光染色分析肿瘤内T细胞、CD8+ T细胞、NK细胞和巨噬细胞的浸润情况,并在人HNSCC样本中验证。

3

分析干扰素反应

探究NSD1缺失对干扰素刺激基因表达和信号通路的影响

通过RNA-seq、qRT-PCR和Western blot检测ISG表达和STAT1磷酸化,并利用LPS和htDNA处理评估PAMP诱导的干扰素反应。

4

机制研究

阐明NSD1缺失导致干扰素抑制的表观遗传机制

通过CUT&Tag分析H3K36me2和H3K27me3分布,鉴定IFNLR1等基因的表观遗传沉默,并探讨PRC2的参与。

5

体内功能验证

评估EZH2抑制对NSD1缺陷肿瘤的治疗效果

在MOC1同基因模型中,给予EPZ-6438(200或400 mg/kg)口服治疗,观察肿瘤生长和免疫浸润变化,并在免疫缺陷小鼠中验证免疫依赖性。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

构建基因敲除或敲入模型
验证肿瘤免疫浸润
基因表达分析
表观基因组分析

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Sigma-Aldrich--
胎牛血清Sigma-Aldrich--
IMDM培养基Cytiva--
青霉素-链霉素Sigma-Aldrich--
胰岛素Sigma-Aldrich--
氢化可的松Sigma-Aldrich--
表皮生长因子Sigma-Aldrich--
EPZ-6438(Tazemetostat)MedChemExpressHY-13803
5-氮杂胞苷MedChemExpressHY-10586
SGI-110MedChemExpressHY-13542
他莫昔芬Sigma-AldrichT5648
脂多糖Sigma-AldrichL7895
鲱鱼精DNASigma-AldrichD6898
J2抗体SCICONS10010500
IV型胶原酶ThermoFisher17104019
脱氧核糖核酸酶ISigma-Aldrich--
红细胞裂解液Biolegend420301
活/死染料ThermoFisher--
CD45抗体Biolegend103127
CD8a抗体Biolegend100721
NK1.1抗体Biolegend108739
CD11b抗体Biolegend101241
H3K36me2抗体Cell Signaling Technology2901
H3K27me3抗体Cell Signaling Technology9733
NSD1抗体NeuroMabN312/10
STAT1抗体ThermoFisherAHO0832
磷酸化STAT1抗体Cell Signaling Technology9167
SYBR Green预混液ThermoFisherA25741
cDNA合成试剂盒Takara--
TRIzol试剂Invitrogen15596-018
2'3'-cGAMP ELISA试剂盒Cayman501700
IFN-λ2/λ3 ELISA试剂盒R&D SystemsDY1789B
刀豆蛋白A包被磁珠Bangs LaboratoriesBP531
AMPure XP磁珠Beckman CoulterA63881
高活性pA-Tn5转座酶----
Dynabeads蛋白A磁珠Invitrogen10006D
Lipofectamine LTX转染试剂ThermoFisherA12621
Lipofectamine RNAiMAX转染试剂ThermoFisher13778-150
PEG-it病毒沉淀试剂SystemBioLV810A-1
pSpCas9(BB)-2A-GFP质粒Addgene48138
psPAX2包装质粒Addgene12260
pVSV-G包膜质粒Addgene138479
dCas9VPR-NeoAddgene63798

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系来源和培养条件(培养基、血清浓度、添加剂)
阅读提示:STAR Methods - Cell lines and Cell Culture
基因敲除
sgRNA序列、转染试剂、单克隆筛选和验证方法
阅读提示:STAR Methods - CRISPR-Cas9 mediated gene knockout
动物模型
小鼠品系、周龄、性别、细胞注射数量、肿瘤测量时间点
阅读提示:STAR Methods - Xenograft experiments
4NQO诱导模型
4NQO剂量、处理时间、他莫昔芬剂量和给药方式
阅读提示:STAR Methods - Nsd1 conditional knockout mice and carcinogen-induced oral SCC model
EPZ-6438治疗
给药剂量、给药途径、给药频率、治疗开始时间
阅读提示:STAR Methods (在Xenograft experiments部分)和Figure 7 legend
免疫浸润分析
流式抗体、IF抗体、ROI选取标准
阅读提示:STAR Methods - Flow Cytometry 和 Immunohistochemistry (IHC) and immunofluorescence (IF) staining