CIA大鼠模型构建及HQT药效评估
验证HQT对RA动物模型的治疗效果及其对miR-125b表达的影响。
使用CIA大鼠模型,设对照组、模型组、MTX组和三个HQT剂量组,给药30天,测量关节肿胀、血清TNF-α、IL-1β、IL-6和miR-125b水平。
Chinese Herbal Formula Huayu-Qiangshen-Tongbi Decoction Attenuates Rheumatoid Arthritis through Upregulating miR-125b to Suppress NF-κB-Induced Inflammation by Targeting CK2.
包含体内CIA大鼠模型、体外LPS诱导MH7A细胞模型,以及双荧光素酶报告基因、Western blot、ELISA、qRT-PCR等功能验证和机制验证。
LPS处理的人风湿性成纤维样滑膜细胞MH7A细胞 胶原诱导性关节炎(CIA)大鼠模型
CIA大鼠模型:Wistar大鼠,6-8周龄,分为6组(n=8),包括对照组、模型组、MTX(1mg/kg)、HQT低(9.4g/kg)、中(18.8g/kg)、高(37.6g/kg)剂量组 LPS诱导炎症模型:MH7A细胞先用0.1mg/mL HQT预处理2小时,再暴露于1μg/mL LPS 24小时 细胞转染:miR-125b mimics、miR-125b inhibitor及其阴性对照转染MH7A细胞48小时 NF-κB抑制剂PDTC(S3633)处理 IκB-α过表达(pcDNA-IκB-α转染)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证HQT对RA动物模型的治疗效果及其对miR-125b表达的影响。
使用CIA大鼠模型,设对照组、模型组、MTX组和三个HQT剂量组,给药30天,测量关节肿胀、血清TNF-α、IL-1β、IL-6和miR-125b水平。
验证CK2是否为miR-125b的直接靶基因。
将含CK2 3'UTR野生型(WT)或突变型(MUT)的荧光素酶报告质粒与miR-125b mimics或inhibitor共转染MH7A细胞,检测荧光素酶活性。
验证miR-125b是否通过CK2抑制NF-κB活化并减少炎症因子产生。
用LPS处理转染miR-125b mimics或inhibitor的MH7A细胞,检测CK2表达、NF-κB通路蛋白(p-p65, p-IκB-α)及炎症因子水平。
证实NF-κB通路在miR-125b抗炎作用中的关键性。
在LPS处理的MH7A细胞中,用PDTC处理或过表达IκB-α(pcDNA-IκB-α),检测NF-κB活化及炎症因子水平。
验证HQT在体外是否通过miR-125b/CK2/NF-κB轴发挥抗炎作用。
用0.1mg/mL HQT预处理LPS诱导的MH7A细胞,检测miR-125b、pre-miR-125b、pri-miR-125b、CK2、NF-κB通路及炎症因子;并用miR-125b inhibitor和PDTC干预。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | -- | |
| 药物处理 | 脂多糖 | Sigma | L2880 |
| 细胞转染 | Lipofectamine 2000转染试剂 | Invitrogen | -- |
| miR-125b模拟物 | GenePharma | -- | |
| miR-125b抑制剂 | GenePharma | -- | |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂盒 | Dojindo | -- |
| 双荧光素酶报告基因实验 | pmirGLO荧光素酶报告载体 | Promega | -- |
| 双荧光素酶报告基因检测系统 | Promega | -- | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| RT-qPCR | PrimeScript II第一链cDNA合成试剂盒 | Takara Bio | -- |
| SYBR Premix Ex Taq II | Takara Bio | -- | |
| 7500 Fast实时荧光定量PCR仪 | Applied Biosystems | -- | |
| miScript SYBR-Green PCR试剂盒 | -- | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | -- | -- |
| 抗p-p65抗体 | Bioss | bs-5660R | |
| 抗p-IκB-α抗体 | Bioss | bs-3191R | |
| 抗GAPDH抗体 | Aksomics | KC-5G5 | |
| HRP标记的二抗 | -- | -- | |
| Amersham ECL试剂盒 | GE Healthcare | -- | |
| ELISA | 大鼠TNF-α ELISA试剂盒 | 北京冬歌博业生物科技有限公司 | DG20065D |
| 小鼠IL-1β ELISA试剂盒 | 北京冬歌博业生物科技有限公司 | DG94484Q | |
| 小鼠IL-6 ELISA试剂盒 | 北京冬歌博业生物科技有限公司 | DG94490Q | |
| 人CK2 ELISA试剂盒 | 北京冬歌博业生物科技有限公司 | DG95793Q | |
| 人TNF-α ELISA试剂盒 | 北京冬歌博业生物科技有限公司 | DG10053H | |
| 人IL-1β ELISA试剂盒 | 北京冬歌博业生物科技有限公司 | DG10307H | |
| 人IL-6 ELISA试剂盒 | 北京冬歌博业生物科技有限公司 | DG10306H | |
| 动物实验 | 牛II型胶原 | Chondrex | -- |
| 不完全弗氏佐剂 | Chondrex | -- | |
| Wistar大鼠 | 北京维通利华实验动物技术有限公司 | -- | |
| 细胞培养 | MH7A细胞 | ATCC | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| CIA大鼠模型 | 大鼠品系(Wistar)、性别(雄性)、年龄(6-8周)、分组(对照组、模型组、MTX组、HQT低/中/高剂量组)、每组样本量(n=8)、胶原剂量(100μg)、免疫方式(尾基部皮下注射)、给药方式(灌胃)、给药剂量(MTX 1mg/kg,HQT 9.4/18.8/37.6 g/kg)、给药时间(30天) 阅读提示:Methods 2.1 |
| LPS诱导炎症细胞模型 | MH7A细胞系、LPS浓度(1μg/mL)、HQT预处理浓度(0.1mg/mL)、预处理时间(2小时)、处理时间(24小时) 阅读提示:Methods 2.3 |
| 细胞转染 | 转染试剂(Lipofectamine 2000)、转染时间(48小时)、miR-125b mimics/inhibitor浓度(未明确) 阅读提示:Methods 2.4 |
| 双荧光素酶报告基因实验 | 报告质粒(pmirGLO)、共转染的miR-125b mimics/inhibitor浓度(未明确)、转染时间(48小时) 阅读提示:Methods 2.6 |
| Western blot | 一抗稀释比例(anti-p-p65 1:500, anti-p-IκB-α 1:500, anti-GAPDH 1:10000)、二抗孵育时间(1小时)、封闭时间(5分钟)、蛋白上样量(未明确) 阅读提示:Methods 2.8 |
| ELISA | 检测的细胞因子种类(TNF-α, IL-1β, IL-6, CK2)、样本类型(血清或细胞上清)、试剂盒品牌(北京冬歌博业) 阅读提示:Methods 2.9 |