细胞信号汇聚于NOX2-SHP-2轴诱导癌细胞中的还原羧化

Cellular signals converge at the NOX2-SHP-2 axis to induce reductive carboxylation in cancer cells.

作者信息Rukang Zhang, Dong Chen, Hao Fan, Rong Wu, Jiayi Tu, Freya Q Zhang, Mei Wang, Hong Zheng, Cheng-Kui Qu, Shannon E Elf, Brandon Faubert, Yu-Ying He, Marc B Bissonnette, Xue Gao, Ralph J DeBerardinis, Jing Chen
PMID35429459
发布时间2022-07-21
DOI10.1016/j.chembiol.2022.03.010

实验完整度

研究包含细胞系模型(A549、H1299、K562、MOLM-14、MEF)的多种应激处理,结合shRNA敲低、回补实验、抑制剂处理、体外磷酸酶实验、亚细胞ROS检测等多种验证手段,并涵盖功能与机制验证。

主要模型

A549细胞(人肺癌细胞系) H1299细胞(人肺癌细胞系) K562细胞(人慢性髓系白血病细胞系) MEF(小鼠胚胎成纤维细胞,包括SHP-2敲除型)

重点核对

缺氧处理(48h,1% O2)对IDH1 Y42/Y391磷酸化的影响 脱离处理(24h,超低附着培养皿)对IDH1磷酸化及还原羧化的影响 鱼藤酮处理(10μM,16h)对IDH1磷酸化及还原羧化的影响 SHP-2抑制剂SHP099(10μM)处理对IDH1磷酸化及还原羧化的影响 NOX2抑制剂GSK2795039(20μM)处理对还原羧化的影响

摘要

环境应激,包括缺氧或锚定非依赖性生长,或通过抑制电子传递链减弱线粒体呼吸,可诱导细胞中还原羧化,其中柠檬酸通过谷氨酰胺的还原代谢产生增强。这种代谢过程有助于氧化还原稳态并维持脂质生物合成。还原羧化通常依赖于胞质异柠檬酸脱氢酶1(IDH1)。然而,不同的细胞信号是否差异性地诱导还原羧化,或通过一个共同的信号汇聚节点,仍不清楚。我们发现,还原羧化的诱导通常需要增强的酪氨酸磷酸化和IDH1的激活,这令人惊讶地是通过减弱胞质蛋白酪氨酸磷酸酶Src同源区2结构域含磷酸酶2(SHP-2)实现的。机制上,不同的信号通过汇聚于NADPH氧化酶2的上调来诱导还原羧化,导致胞质活性氧升高,进而抑制SHP-2。总之,我们的工作阐明了癌细胞中还原羧化诱导的信号基础。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
不同的环境应激(缺氧、脱离、电子传递链抑制)如何通过共同的信号机制诱导癌细胞中的还原羧化?
核心机制
不同的还原羧化诱导信号汇聚于NOX2上调,导致胞质ROS升高,进而抑制胞质蛋白酪氨酸磷酸酶SHP-2,从而增强IDH1的酪氨酸磷酸化(Y42和Y391)并激活其酶活性,促进还原羧化。
主要证据
通过Western blot检测IDH1磷酸化水平,通过14C-脂质合成实验检测还原羧化速率;使用SHP099抑制SHP-2、siRNA敲低SHP-2和NOX2、Shp-2敲除MEF、NAC和MitoTEMPO抗氧化处理、GSK2795039抑制NOX2、体外去磷酸化实验等。
研究意义
该研究阐明了癌细胞中还原羧化诱导的信号基础,为理解肿瘤代谢适应机制提供了新的视角。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

检测不同应激对IDH1磷酸化的影响

验证缺氧、脱离、鱼藤酮处理是否增强IDH1的酪氨酸磷酸化(Y42和Y391)。

对A549、H1299、K562和MOLM-14细胞进行缺氧(48h)、脱离(24h)、鱼藤酮(10μM,16h)处理,通过Western blot检测IDH1的Y42和Y391磷酸化水平。

2

验证IDH1磷酸化对还原羧化的必要性

确定IDH1的酪氨酸磷酸化是否是还原羧化所必需的。

在A549细胞中用siRNA敲低内源性IDH1,并回补siRNA抗性的FLAG-IDH1 WT或磷酸化缺陷突变体Y42F/Y391F,检测缺氧、脱离、鱼藤酮处理后14C-脂质合成速率。

3

鉴定SHP-2为IDH1上游磷酸酶

确定SHP-2是介导IDH1去磷酸化的磷酸酶,并验证其活性在诱导还原羧化时被抑制。

使用SHP-2抑制剂SHP099、PTPMT1抑制剂alexidine dihydrochloride、PTP1B抑制剂TCS401处理A549细胞,检测IDH1磷酸化水平;用siRNA敲低SHP-2、PTPMT1、PTP1B;在Shp-2敲除MEF中检测还原羧化;用纯化的SHP-2蛋白进行体外去磷酸化实验;用免疫沉淀的SHP-2进行活性测定。

4

验证胞质ROS在抑制SHP-2中的作用

确定胞质ROS是否介导SHP-2的抑制。

使用HyPer探针检测胞质和线粒体ROS;用NAC(胞质抗氧化剂)和MitoTEMPO(线粒体抗氧化剂)处理,检测SHP-2活性、IDH1磷酸化和还原羧化水平。

5

鉴定NOX2为ROS产生的关键酶

确定NOX2是介导胞质ROS产生和SHP-2抑制的关键NADPH氧化酶。

检测NOX家族成员mRNA和蛋白水平;使用NOX抑制剂(DPI、GSK2795039、GKT137831、GLX351322、ML090)处理,检测还原羧化水平;用siRNA敲低NOX2,检测ROS、IDH1磷酸化、SHP-2活性和还原羧化;通过免疫细胞化学检测NOX2和p67phox的定位。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

检测蛋白表达和磷酸化
检测还原羧化
检测基因表达
检测活性氧
可视化蛋白定位

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Sigma--
RPMI 1640培养基----
胎牛血清SigmaF2442
重组人GM-CSFR&D Systems--
鱼藤酮Sigma-Aldrich83-79-4
SHP099Selleckchem1801747-42-1
双盐酸阿来西定Sigma-Aldrich1715-30-6
TCS401CAYMAN243966-09-8
N-乙酰-L-半胱氨酸Sigma-Aldrich616-91-1
MitoTEMPOThermo Fisher--
二苯基氯化碘盐Selleckchem4673-26-1
GSK2795039Sigma-Aldrich1415925-18-6
GKT137831Selleckchem1218942-37-0
ML090CAYMAN531-46-4
依布硒啉Millipore Sigma--
L-[5-14C]谷氨酰胺ARC--
DiFMUPThermo Fisher--
人重组EGFR蛋白Thermo Fisher--
人重组Src蛋白Thermo Fisher--
SHP-2表达质粒Addgene--
GSTrap™ High PerformanceCytiva17-5281-01
PD-10脱盐柱----
抗β-肌动蛋白抗体Sigma-AldrichA1978
抗FLAG M2抗体Sigma-AldrichF3165
NOX2抗体AbcamAb129068
SHP-2抗体Proteintech20145-1-AP
p-IDH1 Y42抗体SHANGHAI GENOMICS, INC.--
p-IDH1 Y391抗体SHANGHAI GENOMICS, INC.--
异柠檬酸脱氢酶1/IDH1抗体R&D SYSTEMSMAB7049
山羊抗小鼠IgG(H+L)二抗,HRPThermo Fisher Scientific31430
山羊抗兔IgG(H+L)二抗,HRPThermo Fisher Scientific31460
DYKDDDDK标签抗体Cell Signaling Technology2368S
抗兔IgG(H+L)F(ab')2片段(Alexa Fluor® 488偶联物)Cell Signaling Technology4412
抗小鼠IgG(H+L)F(ab')2片段(Alexa Fluor® 555偶联物)Cell Signaling Technology4409
NOX2/gp91phox多克隆抗体BiossBS-3889R
p67phox抗体Santa Cruzsc-374510
TransIT®-LT1转染试剂MirusMIR 2305
Lipofectamine RNAiMAX转染试剂Thermo Fisher13778500
TRIzol试剂Thermo Fisher15596026
iScript cDNA合成试剂盒BIO-RAD1708890
iTaq™ Universal SYBR® Green SupermixBIO-RAD1725122
ANTI-FLAG® M2亲和凝胶Sigma-AldrichA2220
Protein G Sepharose® 4 Fast FlowSigma-AldrichGE17-0618-01
Triton X-100Millipore Sigma64-846-410ML
pCS2+HyPer7-NES质粒Addgene136467
pCS2+MLS-HyPer7质粒Addgene136470

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
IDH1磷酸化检测
细胞类型、处理方式(缺氧、脱离、鱼藤酮)、处理时间、抗体(p-IDH1 Y42和Y391)
阅读提示:Methods中“Cell culture treatment”和“Antibodies”部分
还原羧化测定
14C-谷氨酰胺的浓度(4μM)、标记时间(48h)、处理条件(缺氧、脱离、鱼藤酮)
阅读提示:Methods中“Lipid biosynthesis assay”部分
SHP-2活性检测
细胞裂解方法、免疫沉淀条件、底物DiFMUP浓度(100μM)、反应时间(10分钟)
阅读提示:Methods中“SHP2 activity assay”部分
NOX2抑制或敲低实验
抑制剂浓度(GSK2795039 20μM)、siRNA序列(si-NOX2)、处理时间
阅读提示:Methods中“Reagents”和“Small interfering RNA-mediated knockdown”部分