MDSC的分离与纯化
获取高纯度Gr-1+CD11b+ MDSC用于后续实验。
从BALB/c小鼠骨髓细胞中提取细胞,通过Percoll密度梯度离心和CD11b磁珠分选,经流式细胞术验证纯度。
Upregulation of CD3ζ and L-selectin in antigen-specific cytotoxic T lymphocytes by eliminating myeloid-derived suppressor cells with doxorubicin to improve killing efficacy of neuroblastoma cells in vitro.
包含体外细胞共培养、流式、实时PCR、Western blot及杀伤实验,但缺少动物模型和患者样本验证。
SK‐N‐SH细胞系 BALB/c小鼠骨髓来源MDSC BALB/c小鼠脾脏来源CD3+ T细胞
MDSC与CTL比例1:4 DOX浓度2 μmol/L CTL与SK‐N‐SH比例20:1 CFSE浓度5 μmol/L CD3/CD28抗体刺激
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取高纯度Gr-1+CD11b+ MDSC用于后续实验。
从BALB/c小鼠骨髓细胞中提取细胞,通过Percoll密度梯度离心和CD11b磁珠分选,经流式细胞术验证纯度。
获得针对SK-N-SH细胞的抗原特异性CTL。
用rmGM-CSF和rmIL-4诱导骨髓细胞分化为DC,以SK-N-SH细胞冻融抗原负载DC,再与CD3+ T细胞共培养激活。
验证MDSC是否抑制CTL增殖。
用CFSE标记CTL,与MDSC共培养4天,通过荧光显微镜和流式细胞术检测增殖。
检测MDSC和DOX对CTL中CD3ζ和L-选择素表达的影响。
将CTL与MDSC和/或DOX共培养,通过实时PCR和Western blot检测CD3ζ和L-选择素的mRNA和蛋白水平。
评估DOX清除MDSC后CTL对SK-N-SH细胞的杀伤能力及细胞因子分泌。
将CTL、SK-N-SH、MDSC和DOX按不同组合共培养,通过CCK-8法检测杀伤率,用ELISA检测IL-2和IFN-γ分泌。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | P‐04–03590 |
| 胎牛血清 | Gibco | 10082–147 | |
| MDSC分离 | 抗Gr-1单克隆抗体 | eBioscience | 85–11–5320–82 |
| 抗CD11b单克隆抗体 | eBioscience | 85–12–0113–42 | |
| 抗CD80单克隆抗体 | eBioscience | 85–12–0809–42 | |
| 抗F4/80单克隆抗体 | Bioss | bs‐7058R‐FITC | |
| 抗CD11c单克隆抗体 | eBioscience | 85–12–0116–42 | |
| 抗MHC-II单克隆抗体 | eBioscience | 85–11–5320–82 | |
| Percoll | Solarbio | P8370 | |
| CD11b磁珠 | Miltenyi | 130–049–601 | |
| DC培养 | 重组小鼠粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子 | PeproTech | 300–03 |
| 重组小鼠白细胞介素-4 | PeproTech | 200–04 | |
| DC成熟 | 重组小鼠肿瘤坏死因子-α | PeproTech | 300‐01A |
| T细胞分选 | 小鼠CD3+ T细胞磁珠 | Miltenyi | 130–050–101 |
| T细胞培养 | 重组小鼠白细胞介素-2 | PeproTech | 200–02 |
| 台盼蓝 | Solarbio | T8070 | |
| CTL增殖检测 | 羧基荧光素二醋酸盐琥珀酰亚胺酯 | Sigma | 21888‐25MG‐F |
| CTL刺激 | CD3/CD28抗体 | eBioscience | 85–11–0036‐42/85‐12–0289–42 |
| 实时PCR | 超纯RNA提取试剂盒 | Cwbio | CW0597S |
| HiFi-MMLV cDNA第一链合成试剂盒 | Cwbio | CW0744M | |
| LightCycler 480 II | Roche | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Thermo Fisher | 89901 |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher | 23225 | |
| PVDF膜 | Millipore | ISEQ00010 | |
| 牛血清白蛋白 | Solarbio | SW3015 | |
| FluorChem HD2 | Alpha Innotech | -- | |
| 杀伤实验 | CCK-8试剂盒 | Biyuntian | C0038 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| MDSC分离与鉴定 | BALB/c小鼠骨髓细胞、Percoll密度梯度离心、CD11b磁珠分选、纯度验证 阅读提示:见Materials and Methods 2.2节及Figure 1 |
| DC培养与抗原负载 | rmGM-CSF和rmIL-4浓度、rmTNF-α添加时间、SK-N-SH冻融抗原制备、DC:T比例 阅读提示:见Materials and Methods 2.3.1-2.3.2节及Figure 1D-E |
| CTL制备与激活 | CD3+ T细胞磁珠分选、rmIL-2浓度、DC:T比例、激活时长 阅读提示:见Materials and Methods 2.3.3-2.3.4节 |
| 增殖抑制实验 | CFSE浓度、CTL:MDSC比例、CD3/CD28抗体刺激、培养时间 阅读提示:见Materials and Methods 2.4节及Figure 2 |
| 分子表达检测 | DOX浓度、CTL:MDSC比例、实时PCR引物序列与程序、Western blot抗体与内参 阅读提示:见Materials and Methods 2.5节及Figure 3 |
| 杀伤实验 | 效应细胞与靶细胞比例、DOX浓度、MDSC比例、CCK-8检测时间与波长、ELISA检测 阅读提示:见Materials and Methods 2.6节及Figure 4 |