临床样本分析
评估FcγRIIIa在PCa患者中的表达及其与临床病理特征的关系
免疫组化检测TMA中FcγRIIIa蛋白表达,分析mRNA表达和基因改变(基于cBioPortal数据库)。
FcγRIIIa receptor interacts with androgen receptor and PIP5K1α to promote growth and metastasis of prostate cancer.
涉及临床样本分析(TMA、数据库)、体外细胞功能实验(过表达/敲低、肿瘤球)、体内异种移植模型及机制研究(免疫共沉淀、报告基因),多层级验证。
PCa细胞系(C4-2、LNCaP、PC-3、PC-3M) 异种移植小鼠模型(PC-3和PC-3M肿瘤) 转移性异种移植小鼠模型(ALDHhigh PC-3M细胞来源的肿瘤球) PCa患者组织样本(原发和转移灶)
FcγRIIIa在PCa细胞中的表达水平及与转移的相关性(P=0.006) FcγRIIIa过表达或敲低对细胞增殖、肿瘤球形成和迁移的影响 AR和PIP5K1α对FcγRIIIa表达的正向调控 FcγRIIIa与AR和PIP5K1α的蛋白相互作用 M3G8抗体和ISA-2011B对肿瘤生长和转移的抑制效果
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估FcγRIIIa在PCa患者中的表达及其与临床病理特征的关系
免疫组化检测TMA中FcγRIIIa蛋白表达,分析mRNA表达和基因改变(基于cBioPortal数据库)。
验证FcγRIIIa在PCa细胞系中的表达
RT-PCR和免疫印迹检测FcγRIIIa在PC-3、C4-2、VCaP、PC-3M等细胞中的表达。
研究FcγRIIIa对PCa细胞增殖、肿瘤球形成和迁移的影响
通过过表达或siRNA敲低FcγRIIIa,进行肿瘤球形成实验和迁移实验。
阐明FcγRIIIa与AR和PIP5K1α的相互作用及下游信号通路
免疫沉淀、免疫荧光、Western blot、报告基因实验检测蛋白相互作用、亚细胞定位及转录活性。
评估FcγRIIIa抑制对肿瘤生长和转移的作用
皮下移植PC-3M-siRNA细胞或PC-3细胞,或注射ALDHhigh肿瘤球建立转移模型,给予M3G8抗体处理,测量肿瘤体积和转移。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养和处理 | 双氢睾酮 | -- | -- |
| 恩杂鲁胺 | Selleck Chemicals | -- | |
| ISA-2011B | -- | -- | |
| 抗人FcγRIIIa单克隆抗体(M3G8) | BioLegend | -- | |
| 转染 | TransIT-TKO转染试剂 | Mirus Bio LLC | -- |
| Lipofectamine 2000/3000转染试剂 | Life Technologies | -- | |
| TransIT-2020转染试剂 | Mirus Bio | MIR5410 | |
| 蛋白提取 | NE-PER核和细胞质提取试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 免疫印迹和免疫沉淀 | 抗FCGR3A (CD16a)抗体 | Biosite | -- |
| 免疫沉淀 | 抗PIP5K1α抗体 | -- | -- |
| IgG抗体 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| ALDEFLUOR assay | ALDEFLUOR试剂盒 | StemCell Technologies | -- |
| 流式分选 | FACS Aria流式细胞分选仪 | BD Biosciences | -- |
| 免疫荧光 | FITC偶联的抗HLA-ABC抗体 | Biosite | -- |
| 抗FCGR3A (CD16a)抗体 | Biosite | -- | |
| PIP5K1α抗体 | Protein Technologies | -- | |
| Alexa Fluor 488偶联的抗兔抗体 | Invitrogen | -- | |
| Alexa Fluor 546偶联的抗鼠抗体 | Invitrogen | -- | |
| 罗丹明偶联的抗兔抗体 | Chemicon International Inc | -- | |
| DAPI(4',6-二脒基-2-苯基吲哚) | SERVA Electrophoresis GmbH | -- | |
| Olympus AX70显微镜 | Olympus | -- | |
| Zeiss Apoptome显微镜 | Zeiss | -- | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| cDNA合成 | Maxima第一链cDNA合成试剂盒 | Thermo Scientific | -- |
| PCR检测 | Proxima C16Phi+生物成像系统 | Isogen Life Science | -- |
| 增殖实验 | MTS增殖检测试剂 | Promega Biotech Sweden | -- |
| Infinite M200多功能酶标仪 | Tecan | -- | |
| 荧光素酶检测 | 双荧光素酶检测试剂盒 | Promega | -- |
| 迁移实验 | 透明PET膜小室 | Corning | -- |
| 动物实验 | 680-DyLight NHS-ester偶联的HLA-ABC抗体 | Life Technologies | -- |
| IVIS成像系统 | PerkinElmer | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 临床样本分析 | 组织微阵列中包含的样本类型和数量(BPH、原发PCa、转移灶);FcγRIIIa表达水平与转移的相关性(P=0.006) 阅读提示:Materials and methods 2.1、Results 3.1、Figure legends 图1 |
| 细胞培养和处理 | 细胞系来源和培养条件;DHT浓度为5nM处理12h;enzalutamide浓度为10μM处理6-24h;ISA-2011B浓度为25或50μM处理48h;M3G8抗体浓度为500 ng/mL 阅读提示:Materials and methods 2.3、Results 3.2、3.3、3.4 |
| 功能实验 | 肿瘤球形成实验的细胞密度(5×10^3)和培养时间(10-14天);迁移实验的细胞数量(0.5-2×10^5) 阅读提示:Materials and methods 2.8、2.13、Results 3.2、3.4 |
| 机制实验 | 免疫沉淀使用抗PIP5K1α抗体和IgG对照;报告基因检测使用ARE-Luc和cyclin A1-Luc载体 阅读提示:Materials and methods 2.6、2.12、Results 3.2、3.4 |
| 体内实验 | 小鼠品系(NMRI-Foxn1nu裸鼠)、年龄(4-6周)、体重(25-27g);细胞注射量(1×10^6)和肿瘤球数量(40个/只);M3G8剂量(5mg/kg)和给药频率(每周两次);肿瘤体积测量和转移评估方法 阅读提示:Materials and methods 2.4、Results 3.5、3.6、3.7 |