建立糖尿病肾病小鼠模型及分组处理
评估miR-155在体内对糖尿病肾病炎症和肾功能的影响
使用KK-Ay小鼠建立DN模型,分为NC组(C57BL/6J)、DN组、DN+miR-155抑制剂组,尾静脉注射miR-155抑制剂或对照,3周后收集样本进行检测。
Inhibition of miRNA-155 Alleviates High Glucose-Induced Podocyte Inflammation by Targeting SIRT1 in Diabetic Mice.
包含体外足细胞实验(高糖处理、miR-155 mimic/inhibitor、SIRT1 siRNA)和体内KK-Ay小鼠模型(miR-155抑制剂尾静脉注射),并通过Western blot、PCR、ELISA、免疫荧光及荧光素酶报告基因进行功能与机制验证。
条件永生化小鼠足细胞 糖尿病KK-Ay小鼠模型
KK-Ay小鼠:8周龄,高脂饮食4周,随机血糖≥16.7 mmol/L且ACR≥300 μg/mg作为DN诊断标准 miR-155抑制剂尾静脉注射:0.1 nmol/kg·d,每周3次,持续3周 体外足细胞分组:高糖(30 mmol/L)处理,miR-155 mimic或inhibitor(50 nM),SIRT1 siRNA(50 nM),处理48小时 实验重复性:体内每组n=8,体外实验生物学重复次数文中未明确说明 统计方法:两组比较采用非配对t检验,多组比较采用单因素方差分析,P<0.05为显著性
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估miR-155在体内对糖尿病肾病炎症和肾功能的影响
使用KK-Ay小鼠建立DN模型,分为NC组(C57BL/6J)、DN组、DN+miR-155抑制剂组,尾静脉注射miR-155抑制剂或对照,3周后收集样本进行检测。
验证miR-155对高糖诱导的足细胞炎症和损伤的影响
体外培养足细胞,分为对照组、高糖组、miR-155 mimic/inhibitor转染组及相应对照组,高糖处理,检测炎症因子分泌和nephrin表达。
确证miR-155是否直接靶向SIRT1并调控其表达
通过生物信息学预测,构建SIRT1野生型和突变型荧光素酶报告载体,与miR-155 mimic共转染HEK293T细胞,检测荧光素酶活性;在足细胞中检测miR-155 mimic/inhibitor对SIRT1表达的影响。
验证SIRT1是否是miR-155调控足细胞炎症的必要下游分子
在高糖条件下,将miR-155 inhibitor与SIRT1 siRNA共转染足细胞,检测SIRT1表达、炎症因子分泌和nephrin表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| RNA干扰与转染 | SIRT1小干扰RNA | Ribobio | -- |
| miR-155调控 | miR-155模拟物 | Ribobio | -- |
| miR-155抑制剂 | Ribobio | -- | |
| 免疫荧光 | 抗nephrin抗体 | Novus Biologicals | NBP1-77303 |
| Western blot | 抗SIRT1抗体 | Abcam | ab12193 |
| ELISA | 小鼠IL-6 ELISA试剂盒 | Cusabio | CSB-E04639m |
| 小鼠IL-1β ELISA试剂盒 | Cusabio | CSB-E08054m | |
| 小鼠TNF-α ELISA试剂盒 | Cusabio | CSB-E04741m | |
| 小鼠MCP-1 ELISA试剂盒 | Cusabio | CSB-E07430m | |
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Genview | -- |
| 胎牛血清 | Sciencell | -- | |
| 干扰素-γ | Bioss | -- | |
| 免疫荧光染色 | 石蜡 | Sigma-Aldrich | -- |
| 3%过氧化氢 | Santa Cruz | -- | |
| 5%山羊血清 | Thermo Scientific | -- | |
| 二抗 | Invitrogen | -- | |
| DAPI | Santa Cruz | -- | |
| 细胞转染 | Lipofectamine 2000转染试剂 | Invitrogen | -- |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| Western blot | PVDF膜 | Merck Millipore | -- |
| 脱脂奶粉 | -- | -- | |
| 辣根过氧化物酶标记二抗 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 荧光素酶报告基因 | pmirGLO荧光素酶载体 | Promega | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | KK-Ay小鼠(8周龄)、C57BL/6J小鼠(8周龄)、高脂饮食、DN诊断标准(随机血糖≥16.7 mmol/L且ACR≥300 μg/mg)、miR-155抑制剂剂量(0.1 nmol/kg·d)、给药频率(每周3次)、持续时间(3周) 阅读提示:Materials and Methods 2.2 Animals |
| 细胞培养与处理 | 永生化小鼠足细胞分化条件(IFN-γ存在时33°C培养,去除IFN-γ后37°C培养>7天)、血清饥饿(无血清培养基24h)、高糖浓度(30 mmol/L)、处理时间(48h)、miR-155 mimic/inhibitor浓度(50 nM)、SIRT1 siRNA浓度(50 nM) 阅读提示:Materials and Methods 2.3 Cell Culture,2.5 Cell Transfection |
| 机制验证 | 荧光素酶报告基因实验:SIRT1-WT/MUT载体构建、共转染HEK293T细胞(使用Lipofectamine 2000)、检测时间(转染后48h) 阅读提示:Materials and Methods 2.8 Luciferase Reporter Assay |
| 分子表达检测 | 实时PCR:RNA提取试剂(TRIzol)、内参基因(GAPDH、U6)、定量方法(2-ΔΔCT);Western blot:抗体及其稀释比例(抗nephrin 1:500,抗SIRT1 1:1000) 阅读提示:Materials and Methods 2.6 Real Time PCR Analysis,2.7 Western Blotting Analysis |
| 统计分析 | 两组比较采用非配对t检验,多组比较采用单因素方差分析,显著性水平P<0.05 阅读提示:Materials and Methods 2.9 Statistical Methods |