ADSCs和sEV的分离与鉴定
验证从人脂肪组织和脂肪瘤组织中成功分离出ADSCs及sEV-LT和sEV-AT。
从人皮下脂肪组织分离ADSCs,并通过流式细胞术(CD105、CD90、CD73阳性;CD34、CD31阴性)及成脂、成骨分化实验进行鉴定。从脂肪瘤组织和脂肪组织分离sEV,通过TEM、ZetaView和Western blot(CD9、CD63、TSG101)鉴定。
Therapeutic potential of small extracellular vesicles derived from lipoma tissue in adipose tissue regeneration-an in vitro and in vivo study.
研究包含体外细胞实验(ADSCs增殖、迁移、成脂分化)和体内动物模型(SD大鼠皮下移植)两个独立证据层级,且包含功能验证和机制相关验证。
人脂肪组织来源的ADSCs 人脂肪瘤组织来源的sEV-LT 人脂肪组织来源的sEV-AT SD大鼠皮下移植模型
sEV-LT处理ADSCs的浓度(40 μg/ml)及对应颗粒数(1.40×10^9 particles/ml) sEV-AT处理ADSCs的浓度(40 μg/ml)及对应颗粒数(2.55×10^9 particles/ml) 体内移植:每管含100 μl Matrigel和100 μg sEV-LT或sEV-AT 体内移植时间点:2、4、8、12周,每个时间点n=4 ADSCs鉴定:CD105、CD90、CD73阳性,CD34和CD31阴性
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证从人脂肪组织和脂肪瘤组织中成功分离出ADSCs及sEV-LT和sEV-AT。
从人皮下脂肪组织分离ADSCs,并通过流式细胞术(CD105、CD90、CD73阳性;CD34、CD31阴性)及成脂、成骨分化实验进行鉴定。从脂肪瘤组织和脂肪组织分离sEV,通过TEM、ZetaView和Western blot(CD9、CD63、TSG101)鉴定。
验证sEV-LT和sEV-AT是否能够被ADSCs内吞。
用DiO标记sEV,与ADSCs共培养6小时,通过荧光共聚焦显微镜观察。
比较sEV-LT和sEV-AT对ADSCs迁移能力的影响。
采用划痕实验,在ADSCs单层划痕后分别加入sEV-LT、sEV-AT或PBS,在0、12、24小时记录图像并计算迁移面积。
比较sEV-LT和sEV-AT对ADSCs增殖能力的影响。
采用CCK-8实验,在ADSCs培养的第0、1、2、3、4、5天检测OD值。
比较sEV-LT和sEV-AT对ADSCs成脂分化的影响。
用含sEV-LT、sEV-AT或对照培养基处理ADSCs至14天,通过油红O染色和RT-PCR检测成脂相关基因表达。
评估sEV-LT和sEV-AT在体内对脂肪组织再生的促进作用。
将sEV-LT或sEV-AT与Matrigel混合后注入硅胶管,皮下植入SD大鼠,在不同时间点取材进行组织学分析。
比较各组新生组织中脂肪生成和血管生成情况。
对新生组织进行H&E染色,定量脂肪细胞面积和毛细血管数量;通过免疫组化检测C/EBP-α、PPARγ、Adiponectin和CD31的表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM/F12培养基 | BI | -- |
| 胎牛血清 | BI | -- | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| L-谷氨酰胺 | -- | -- | |
| 细胞分离 | I型胶原酶 | Sigma | -- |
| 流式分析 | CD105-PE抗体 | Biolegend | -- |
| CD90-PE抗体 | Biolegend | -- | |
| CD73-PE抗体 | Biolegend | -- | |
| CD34-PE抗体 | Biolegend | -- | |
| CD14-PE抗体 | Biolegend | -- | |
| 成脂分化 | 成脂分化培养基 | Cyagen | -- |
| 成骨分化 | 成骨分化培养基 | Cyagen | -- |
| 茜素红S | Cyagen | -- | |
| sEV分离 | Celstir搅拌瓶 | Wheaton | -- |
| Amicon® Ultra-50离心过滤装置 | Millipore | -- | |
| 总外泌体分离试剂 | Life Technologies | -- | |
| 蛋白浓度测定 | Pierce BCA蛋白测定试剂盒 | KeyGEN | -- |
| TEM | 透射电子显微镜 | FEI Tecnai G2 Spirit | -- |
| 纳米颗粒追踪 | ZetaView®系统 | Particle Metrix | -- |
| Western blot | RIPA裂解缓冲液 | KeyGEN | -- |
| 抗CD9抗体 | Abcam | ab92726 | |
| 抗CD63抗体 | Abclonal | a5271 | |
| 抗TSG101抗体 | Proteintech | 28283-1-ap | |
| ImageQuant LAS 4000 mini成像系统 | GE Healthcare | -- | |
| 细胞摄取实验 | DiO染料 | Invitrogen | -- |
| 鬼笔环肽 | Invitrogen | -- | |
| DAPI | Sigma | -- | |
| 共聚焦显微镜 | Olympus FV1000 | -- | |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂盒 | KeyGEN | -- |
| 酶标仪 | BioTek | -- | |
| 成脂分化染色 | 油红O | Cyagen | -- |
| RT-PCR | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| Revert Aid第一链cDNA合成试剂盒 | Thermo Scientific | -- | |
| SYBR Premix ExTaq | TaKaRa | -- | |
| 实时定量PCR仪 | Biometra Tone | -- | |
| 动物实验 | Matrigel基质胶 | Corning | -- |
| 4/0尼龙缝线 | -- | -- | |
| 组织学 | 抗CEBP-α抗体 | Bioss | bs1630R |
| 抗PPARγ抗体 | Bioss | bs4888R | |
| 抗脂联素抗体 | Bioss | bs0471R | |
| 抗CD31抗体 | Sino Biological | 50408-T16 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 体外细胞迁移实验 | ADSCs接种密度、划痕工具、sEV处理浓度和颗粒数、对照组设置、检测时间点 阅读提示:Methods中的Cell migration assay |
| 体外细胞增殖实验 | ADSCs接种密度、sEV处理浓度和颗粒数、对照组设置、检测时间点、检测波长 阅读提示:Methods中的Cell proliferation assay |
| 体外成脂分化实验 | ADSCs接种密度、处理分组、sEV浓度和颗粒数、培养时间、换液频率、油红O染色定量 阅读提示:Methods中的Adipogenic differentiation of ADSCs |
| 体内动物实验 | 大鼠品系、周龄、体重、数量、麻醉剂量、移植管规格、分组及sEV剂量、取材时间点 阅读提示:Methods中的Adipose tissue regeneration experiments in an animal model |
| 组织学分析 | 切片厚度、染色方法、图像放大倍数、随机视野数、定量指标(脂肪细胞面积、毛细血管数量)、免疫组化抗体及编号 阅读提示:Methods中的Histology |
| ADSCs和sEV的鉴定 | ADSCs表面标志物(CD105、CD90、CD73阳性;CD34、CD31阴性)、sEV标志物(CD9、CD63、TSG101)、sEV平均粒径 阅读提示:Methods中的Characterization of ADSCs和Characterization of small extracellular vesicles |