重组α-突触核蛋白纤维株的制备与表征
生成具有不同构象的α-突触核蛋白纤维株,并验证其构象差异。
重组人A53T突变α-突触核蛋白在含或不含100 mM NaCl的缓冲液中聚合,生成S和NS纤维。通过ThT荧光、电子显微镜、蛋白酶K消化、姜黄素结合和构象稳定性实验表征纤维。
α-Synuclein strains target distinct brain regions and cell types
包含重组蛋白体外聚集、培养细胞生物测定、转基因小鼠体内传代、患者样本分析等多层级验证,并进行了功能与构象稳定性机制验证。
半合子TgM83转基因小鼠 HEK293细胞(稳定表达A53T突变α-突触核蛋白-YFP) MSA患者脑匀浆 M83+/+小鼠脑匀浆
重组S和NS纤维的制备条件(含或不含100 mM NaCl) 脑内接种剂量:1微克重组α-突触核蛋白纤维或1%脑匀浆 疾病潜伏期和临床症状的评估 PSyn沉积的脑区和细胞类型分布 α-突触核蛋白聚集物的构象稳定性(GdnHCl50)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
生成具有不同构象的α-突触核蛋白纤维株,并验证其构象差异。
重组人A53T突变α-突触核蛋白在含或不含100 mM NaCl的缓冲液中聚合,生成S和NS纤维。通过ThT荧光、电子显微镜、蛋白酶K消化、姜黄素结合和构象稳定性实验表征纤维。
评估S和NS纤维在细胞内引发不同α-突触核蛋白聚集体形态的能力。
使用脂质体介导转导将S或NS纤维导入表达A53T突变α-突触核蛋白-YFP的HEK293细胞,观察荧光聚集体的形态。
验证不同α-突触核蛋白株在体内产生不同疾病表型并能连续传代维持。
将S纤维、NS纤维、MSA或M83+/+脑匀浆等接种于半合子TgM83小鼠脑内,观察疾病潜伏期、临床症状、病理和生化特征,并通过脑匀浆进行连续传代。
比较不同株系诱导的α-突触核蛋白病理的脑区和细胞类型分布。
通过免疫组化检测Ser129磷酸化α-突触核蛋白(PSyn)在不同脑区的沉积水平,评估神经元和星形胶质细胞中的包涵体形态(环状或LB样)和细胞类型倾向性。
分析不同株系诱导的α-突触核蛋白聚集物的蛋白酶抗性和构象稳定性。
从接种小鼠脑匀浆中提取不溶性α-突触核蛋白,用蛋白酶K或热溶素消化,并通过免疫印迹分析条带模式,使用构象稳定性实验(CSA)测定GdnHCl50值。
比较不同突触核蛋白病患者脑中α-突触核蛋白聚集物的构象差异。
通过构象稳定性实验(CSA)测定MSA、DLB和AD患者脑提取物中PSyn聚集物的GdnHCl50值,并比较其传播能力。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 重组蛋白表达与纯化 | pET-28a载体 | EMD Millipore | -- |
| 异丙基β-D-1-硫代半乳糖苷 | -- | -- | |
| Mono Q阴离子交换柱 | GE Healthcare | -- | |
| NanoDrop分光光度计 | -- | -- | |
| 纤维制备与表征 | Eppendorf Thermomixer F1.5恒温混匀仪 | Eppendorf | -- |
| BMG CLARIOstar酶标仪 | BMG Labtech | -- | |
| 硫黄素T | Sigma-Aldrich | T3516 | |
| 蛋白酶K | Thermo Scientific | EO0491 | |
| 姜黄素 | Sigma-Aldrich | C1386 | |
| 盐酸胍 | -- | -- | |
| Technai G20透射电子显微镜 | Thermo Fisher FEI | -- | |
| Eagle 4kx4k CCD相机 | Thermo Fisher FEI | -- | |
| 超声破碎仪(QSonica Q700) | QSonica | -- | |
| 培养细胞聚集实验 | HEK293细胞 | -- | -- |
| Lipofectamine-2000转染试剂 | Thermo Scientific | -- | |
| Opti-MEM培养基 | -- | -- | |
| ProLong Diamond防淬灭封片剂(含DAPI) | Thermo Scientific | -- | |
| Leica TCS SP8共聚焦显微镜 | Leica | -- | |
| Leica DM6000B显微镜 | Leica | -- | |
| 免疫印迹 | Bolt Bis-Tris Plus凝胶 | Thermo Scientific | -- |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| Western Lightning ECL Pro化学发光底物 | PerkinElmer | -- | |
| LiCor Odyssey Fc成像系统 | Li-Cor | -- | |
| 抗磷酸化α-突触核蛋白抗体EP1536Y | Abcam | ab51253 | |
| 抗α-突触核蛋白抗体Syn-1 | BD Biosciences | 610786 | |
| 抗人α-突触核蛋白抗体MJFR1 | Abcam | ab138501 | |
| 抗鼠α-突触核蛋白抗体D37A6 | Cell Signaling Technology | 4179 | |
| 免疫组织化学 | 抗p62/SQSTM1抗体 | Abcam | ab56416 |
| 抗GFAP抗体 | Novus Biologicals | NB100-53809 | |
| ImmPress HRP检测试剂盒 | Vector Laboratories | MP-7401或MP-7402 | |
| ImmPACT DAB过氧化物酶底物 | Vector Laboratories | SK-4105 | |
| Leica DM6000B显微镜 | Leica | -- | |
| Zeiss LSM880扫描共聚焦显微镜 | Zeiss | -- | |
| Prolong Diamond防淬灭封片剂 | Thermo Scientific | P36961 | |
| 动物实验 | TgM83小鼠 | Jackson Lab | 004479 |
| B6C3F1非转基因小鼠 | Jackson Lab | 100010 | |
| DBD | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 重组纤维制备 | 盐(S)和无盐(NS)纤维的聚合条件,包括缓冲液成分(20 mM Tris-HCl, pH 7.4,含或不含100 mM NaCl)、α-突触核蛋白浓度(1 mg/mL)、温度(37°C)、振荡(600 rpm)和时间(7天)。 阅读提示:Methods部分“Generation of α-syn fibrils” |
| 小鼠接种 | 小鼠品系(半合子TgM83)、年龄(~5周龄)、接种途径(非立体定向脑内,深度~3mm)、接种体积(30 μL)、接种物剂量(重组纤维1 μg;脑匀浆1% w/v)。 阅读提示:Methods部分“Intracerebral inoculations” |
| 疾病监测与终点 | 疾病终点定义(后肢瘫痪伴运动减少,或后肢颤抖伴体重下降和脊柱后凸)、监测频率(每日健康检查,每周2-3次神经症状评估)、潜伏期统计(中位数或平均±SEM)。 阅读提示:Methods部分“Intracerebral inoculations” |
| 免疫组化分析 | 用于PSyn检测的抗体(EP1536Y)、稀释度(1:320,000)、评分系统(0-3)、脑区评分列表(9个区域)、PSyn阳性星形胶质细胞计数区域(丘脑)、包涵体形态分类(环状 vs LB样,中脑)。 阅读提示:Methods部分“Immunohistochemistry” |
| 构象稳定性实验 | 脑提取物制备、GdnHCl浓度梯度(1-4 M,有时扩展至1-6 M)、孵育时间(2小时)、超速离心条件(100,000 g, 1小时)、GdnHCl50计算方法。 阅读提示:Methods部分“CSA for α-syn aggregates in brain extracts” |