TMSB10组织与细胞表达分析
明确鹿TMSB10在鹿茸生长中心和不同细胞系中的表达分布
通过免疫组织化学检测鹿茸尖不同层次(真皮、RM、PC、TZ、软骨)中TMSB10蛋白表达;通过Western blot和免疫荧光检测鹿细胞系(AP、PP、FP、RM、PC、TZ、C)中TMSB10表达。
Deer thymosin beta 10 functions as a novel factor for angiogenesis and chondrogenesis during antler growth and regeneration.
包含体外细胞实验(APCs/HUVECs增殖、管形成、迁移)和体内模型(CAM、主动脉环、DRG),并进行分子机制(Western blot)和结构模拟验证。
鹿茸骨膜细胞(APCs) 人脐静脉内皮细胞(HUVECs) 鸡胚绒毛尿囊膜(CAM)模型 大鼠主动脉环模型
鹿TMSB10在APCs和HUVECs中的过表达(慢病毒)及外源蛋白处理(50、100、150 ng/ml) CAM实验中鹿eTMSB10(1、5、10 μg)剂量及血管计数方法(双盲、角度≤45度) 主动脉环实验中eTMSB10(50 ng/ml)处理5天,每2天换液 HUVECs管形成实验中Matrigel浓度(10 mg/ml)和细胞数(1.5×10^4) Western blot检测VEGF家族蛋白表达(VEGF、VEGF-B、VEGF-C、VEGF-D、VEGFR2、VEGFR3)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
明确鹿TMSB10在鹿茸生长中心和不同细胞系中的表达分布
通过免疫组织化学检测鹿茸尖不同层次(真皮、RM、PC、TZ、软骨)中TMSB10蛋白表达;通过Western blot和免疫荧光检测鹿细胞系(AP、PP、FP、RM、PC、TZ、C)中TMSB10表达。
验证鹿eTMSB10与人eTMSB10在体内的血管生成作用差异
将不同剂量(1、5、10 μg)的鹿或人eTMSB10(溶于20 μl 0.1% BSA-PBS)加到CAM上,第6天移植,第10天固定并计数新血管数量。
评估鹿TMSB10对APCs和HUVECs功能(增殖、迁移、管形成)的影响
MTT法检测APCs和HUVECs的增殖;Transwell和伤口愈合实验检测HUVECs迁移;Matrigel管形成实验评估血管生成能力。
检测鹿TMSB10过表达对APCs软骨分化的作用
APCs-ODT和对照细胞在微团培养中于软骨形成培养基培养3周,用Alcian Blue染色评估软骨基质形成。
评估鹿eTMSB10对神经突起生长的促进作用
从胎鼠(Wistar E16)分离DRG,培养于含eTMSB10或NGF的培养基中5天,观察并测量层状足突生长。
检测鹿TMSB10过表达对VEGF家族表达的影响
提取HUVECs-ODT和对照细胞总蛋白,Western blot检测VEGFA、VEGFB、VEGFC、VEGFD、FLT1、KDR、FLT4的表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | GIBCO | 21875091 |
| DMEM培养基 | GIBCO | 11965092 | |
| 胎牛血清 | GIBCO | 10099141 | |
| 青霉素-链霉素 | Corning | 30-002 | |
| 胰蛋白酶 | Life technologies | 27250018 | |
| 慢病毒生产 | X-tremeGENE DNA转染试剂 | Roche | 06366236001 |
| 慢病毒感染 | 聚凝胺 | Millipore | TR-1003-50UL |
| 嘌呤霉素 | Sigma | p8833 | |
| MTT实验 | MTT试剂 | Sigma-Aldrich | M2128-100MG |
| 二甲基亚砜 | Amresco | 0231 | |
| 管形成实验 | 基质胶 | BD technologies | 354230 |
| 细胞免疫荧光 | TRITC-鬼笔环肽 | ThermoFisher | R415 |
| 肌动蛋白示踪绿色 | Beyotime | C1033 | |
| Western blot | PVDF膜 | Millipore | ISEQ00010 |
| ECL化学发光系统 | ThermoFisher | 34077 | |
| RNA提取 | PureLink RNA小提试剂盒 | Life Technologies | 12183018A |
| RT-PCR | Primescript逆转录试剂盒 | TaKaRa | R023A |
| PCR产物纯化 | QIAEX II凝胶提取试剂盒 | QIAGEN | 20021 |
| 质粒克隆 | pMD-19 T载体 | TaKaRa | 6013 |
| ClonExpress II一步克隆试剂盒 | Vazyme | C112-01 | |
| 质粒提取 | Concert快速质粒小提系统 | Omega | D6943-01 |
| 慢病毒浓缩 | Lenti-X浓缩液 | Clonetech | 631232 |
| DRG培养 | Neurobasal培养基 | Invitrogen | 21103049 |
| B-27无血清补充剂 | Invitrogen | 17504044 | |
| 多聚赖氨酸 | Sigma | P4707 | |
| Western blot | 裂解液 | Beyotime | P0013B |
| 蛋白酶抑制剂 | Sigma | P8340-1ML | |
| 磷酸酶抑制剂 | KyGene | KGP250 | |
| 脱脂奶粉 | BD biosciences | 232100 | |
| TBS-T缓冲液 | Solarbio | T1080 | |
| 细胞处理 | 牛血清白蛋白 | Sigma | B2064-10G |
| 细胞培养 | Triton X-100 | Sigma | T8787-100ML |
| 软骨诱导 | 转化生长因子β1 | Peprotech | 100-21 |
| 地塞米松 | Sigma | D1756 | |
| L-抗坏血酸2-磷酸 | Sigma | A4403-100MG | |
| L-脯氨酸 | Sigma | P0380-10MG | |
| 细胞培养 | ITS预混通用培养添加物 | Corning | 354351 |
| CAM实验 | 血管内皮生长因子 | Peprotech | 100-20 |
| DRG实验 | 神经生长因子 | Peprotech | 450-01 |
| CAM实验 | 肝细胞生长因子 | Peprotech | 100-39H |
| 碱性成纤维细胞生长因子 | Dalian Meilunbio | 62031-54-3 | |
| 细胞成像 | 倒置显微镜 | EVOS, ThermoFisher | -- |
| RT-PCR | Eppendorf PCR仪 | Eppendorf | -- |
| 细胞迁移 | IBIDI培养插入物 | IBIDI | 80206 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| TMSB10表达分析 | 梅花鹿年龄(3岁)、鹿茸生长天数(约35天)、取材部位(主枝远端5cm)、切片方向(矢状面)。 阅读提示:Methods: Antler growth center tissue sampling and immunohistochemistry |
| 细胞培养 | AP细胞系来源(8月龄雄鹿)、PP和FP(2岁)、RM/PC/TZ/C(3岁);HUVECs(ScienCell, 8000)培养条件(37°C, 5% CO2, RPMI-1640+10%FBS);细胞传代范围(4-10代)。 阅读提示:Methods: Cell culture |
| 慢病毒过表达 | 慢病毒载体(pLVX-ires-mCherry-puro)、病毒包装辅助质粒(pSPAX2, pMD2.G)、转染试剂(X-tremeGENE)、感染时聚凝胺浓度(10 μg/ml)、筛选浓度(APCs 2.5 μg/ml,HUVECs 3 μg/ml)和时间(2周)。 阅读提示:Methods: Vectors and preparation of recombination lentivirus; Lentiviral infection |
| 增殖实验 | 细胞密度(APCs 2500细胞/孔,HUVECs 5000细胞/孔)、eTMSB10浓度(50, 100, 150 ng/ml)和处理时间(24, 48, 72h)、MTT孵育时间(4h)、OD570检测。 阅读提示:Methods: In vitro cytotoxicity MTT assay |
| CAM实验 | 受精蛋孵化温度(38°C)、湿度(85%)、eTMSB10剂量(1, 5, 10 μg)、载体(0.1% BSA-PBS)、移植天数(6天)、固定天数(10天)、血管计数标准(距载体1mm内,角度≤45°,排除<0.05mm直径)。 阅读提示:Methods: Chicken embryo chorioallantoic membrane (CAM) assay |
| 软骨形成实验 | APCs-ODT密度(1×10^8 cells/ml)、接种体积(100 μl)、培养基组成(高糖DMEM, TGFβ1 10 ng/ml, 地塞米松0.1 μM, L-抗坏血酸2-磷酸50 μg/ml, L-脯氨酸40 μg/ml, 1% ITS)、培养时间(3周)、换液频率(每2天)。 阅读提示:Methods: In vitro chondrocyte induction of APCs using micromass culture |
| DRG出芽实验 | DRG来源(Wistar胎鼠E16)、培养基(Neurobasal + B-27)、包被(poly-L-lysine 10 μg/ml)、eTMSB10浓度(50,100,150 ng/ml)、培养时间(5天,每2天换液)。 阅读提示:Methods: Dorsal root ganglia (DRG) outgrowth assay |
| 分子机制(Western blot) | 抗体列表及稀释度(见表1)、上样量(60 μg)、丙烯酰胺浓度(12%或15%)、转膜(PVDF 0.22μm)、封闭(5% NFDM)、一抗孵育(4°C过夜)、二抗及ECL检测。 阅读提示:Methods: Western blotting |