鹿胸腺素β10在鹿茸生长和再生过程中作为血管生成和软骨形成的新型因子

Deer thymosin beta 10 functions as a novel factor for angiogenesis and chondrogenesis during antler growth and regeneration.

作者信息Wei Zhang, Wenhui Chu, Qingxiu Liu, Dawn Coates, Yudong Shang, Chunyi Li
PMID29921287
发布时间2018-06-19
DOI10.1186/s13287-018-0917-y

实验完整度

包含体外细胞实验(APCs/HUVECs增殖、管形成、迁移)和体内模型(CAM、主动脉环、DRG),并进行分子机制(Western blot)和结构模拟验证。

主要模型

鹿茸骨膜细胞(APCs) 人脐静脉内皮细胞(HUVECs) 鸡胚绒毛尿囊膜(CAM)模型 大鼠主动脉环模型

重点核对

鹿TMSB10在APCs和HUVECs中的过表达(慢病毒)及外源蛋白处理(50、100、150 ng/ml) CAM实验中鹿eTMSB10(1、5、10 μg)剂量及血管计数方法(双盲、角度≤45度) 主动脉环实验中eTMSB10(50 ng/ml)处理5天,每2天换液 HUVECs管形成实验中Matrigel浓度(10 mg/ml)和细胞数(1.5×10^4) Western blot检测VEGF家族蛋白表达(VEGF、VEGF-B、VEGF-C、VEGF-D、VEGFR2、VEGFR3)

摘要

背景:鹿茸是唯一已知的具有血管化软骨并能完全再生的哺乳动物器官。鹿茸作为基于哺乳动物干细胞的再生模型具有真正意义,尤其与软骨形成、血管生成和再生医学领域相关。最近研究发现胸腺素β10(TMSB10)在生长中的鹿茸生长中心高表达。本研究报道了鹿TMSB10的表达、功能和分子相互作用。方法:检测了鹿茸生长中心组织和细胞中TMSB10的表达水平。评估了外源性(合成蛋白)和内源性鹿TMSB10(慢病毒过表达)对鹿茸骨膜细胞(APCs;未激活的鹿茸干细胞,无TMSB10基础表达)和人脐静脉内皮细胞(HUVECs;无TMSB10基础表达的内皮细胞)的影响,以确定TMSB10是否在软骨形成和血管生成中发挥作用。分别使用动物模型和分子动力学模拟确定了鹿和人TMSB10在血管生成和分子结构上的差异。还探讨了鹿TMSB10促进血管生成的分子机制。结果:鹿TMSB10在体外和体内被鉴定为一种新型促血管生成因子。免疫组织化学显示TMSB10在鹿茸生长中心原位广泛表达,在储备间充质、前软骨和过渡区表达最高。使用鹿细胞系的Western blot分析进一步支持了这一结果。外源性和内源性鹿TMSB10均显著降低APCs的增殖(P<0.05),同时增加HUVECs的增殖(P<0.05)。此外,鹿TMSB10增强了微团培养中的软骨形成和背根神经节模型评估的神经生长(P<0.05)。鹿TMSB10在鸡胚绒毛尿囊膜、管形成和主动脉弓实验中具有促血管生成作用。在分子水平上,内源性鹿TMSB10上调了HUVECs中血管内皮生长因子(VEGF)、VEGF-B、VEGF-C和VEGF-D,以及VEGFR2和VEGFR3的表达(P<0.05)。结论:鹿TMSB10与人TMSB10相比,被鉴定为血管生成、软骨形成和神经生长的新型刺激因子,这可以理解,因为鹿茸(可以说是哺乳动物中生长最快的组织)在快速生长和再生期间可能需要这种额外的促进。电子补充材料:本文在线版本(10.1186/s13287-018-0917-y)包含补充材料,可供授权用户使用。关键词:胸腺素β10,鹿茸,干细胞,血管生成,血管,软骨

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
鹿TMSB10在鹿茸生长过程中是否及如何调控血管生成和软骨形成?
核心机制
鹿TMSB10通过上调HUVECs中VEGF及其受体(VEGFR2和VEGFR3)的表达来促进血管生成,并通过促进软骨形成相关过程(如微团培养中Alcian Blue染色增强)来调控软骨形成。
主要证据
体外实验显示鹿TMSB10促进HUVECs增殖、迁移和管形成,抑制APCs增殖并促进其软骨分化;体内CAM实验表明鹿eTMSB10促进血管生成;Western blot证实VEGF家族表达上调。
研究意义
鹿TMSB10可作为再生医学的潜在治疗因子,可能用于促进慢性伤口愈合(如糖尿病足)和软骨修复(如骨关节炎),但需进一步优化应用方案和剂量。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

TMSB10组织与细胞表达分析

明确鹿TMSB10在鹿茸生长中心和不同细胞系中的表达分布

通过免疫组织化学检测鹿茸尖不同层次(真皮、RM、PC、TZ、软骨)中TMSB10蛋白表达;通过Western blot和免疫荧光检测鹿细胞系(AP、PP、FP、RM、PC、TZ、C)中TMSB10表达。

2

外源TMSB10对血管生成的影响(CAM实验)

验证鹿eTMSB10与人eTMSB10在体内的血管生成作用差异

将不同剂量(1、5、10 μg)的鹿或人eTMSB10(溶于20 μl 0.1% BSA-PBS)加到CAM上,第6天移植,第10天固定并计数新血管数量。

3

细胞增殖、迁移和管形成实验(APCs和HUVECs)

评估鹿TMSB10对APCs和HUVECs功能(增殖、迁移、管形成)的影响

MTT法检测APCs和HUVECs的增殖;Transwell和伤口愈合实验检测HUVECs迁移;Matrigel管形成实验评估血管生成能力。

4

软骨形成实验(微团培养)

检测鹿TMSB10过表达对APCs软骨分化的作用

APCs-ODT和对照细胞在微团培养中于软骨形成培养基培养3周,用Alcian Blue染色评估软骨基质形成。

5

神经生长实验(DRG出芽)

评估鹿eTMSB10对神经突起生长的促进作用

从胎鼠(Wistar E16)分离DRG,培养于含eTMSB10或NGF的培养基中5天,观察并测量层状足突生长。

6

分子机制分析(Western blot)

检测鹿TMSB10过表达对VEGF家族表达的影响

提取HUVECs-ODT和对照细胞总蛋白,Western blot检测VEGFA、VEGFB、VEGFC、VEGFD、FLT1、KDR、FLT4的表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI-1640培养基GIBCO21875091
DMEM培养基GIBCO11965092
胎牛血清GIBCO10099141
青霉素-链霉素Corning30-002
胰蛋白酶Life technologies27250018
X-tremeGENE DNA转染试剂Roche06366236001
聚凝胺MilliporeTR-1003-50UL
嘌呤霉素Sigmap8833
MTT试剂Sigma-AldrichM2128-100MG
二甲基亚砜Amresco0231
基质胶BD technologies354230
TRITC-鬼笔环肽ThermoFisherR415
肌动蛋白示踪绿色BeyotimeC1033
PVDF膜MilliporeISEQ00010
ECL化学发光系统ThermoFisher34077
PureLink RNA小提试剂盒Life Technologies12183018A
Primescript逆转录试剂盒TaKaRaR023A
QIAEX II凝胶提取试剂盒QIAGEN20021
pMD-19 T载体TaKaRa6013
ClonExpress II一步克隆试剂盒VazymeC112-01
Concert快速质粒小提系统OmegaD6943-01
Lenti-X浓缩液Clonetech631232
Neurobasal培养基Invitrogen21103049
B-27无血清补充剂Invitrogen17504044
多聚赖氨酸SigmaP4707
裂解液BeyotimeP0013B
蛋白酶抑制剂SigmaP8340-1ML
磷酸酶抑制剂KyGeneKGP250
脱脂奶粉BD biosciences232100
TBS-T缓冲液SolarbioT1080
牛血清白蛋白SigmaB2064-10G
Triton X-100SigmaT8787-100ML
转化生长因子β1Peprotech100-21
地塞米松SigmaD1756
L-抗坏血酸2-磷酸SigmaA4403-100MG
L-脯氨酸SigmaP0380-10MG
ITS预混通用培养添加物Corning354351
血管内皮生长因子Peprotech100-20
神经生长因子Peprotech450-01
肝细胞生长因子Peprotech100-39H
碱性成纤维细胞生长因子Dalian Meilunbio62031-54-3
倒置显微镜EVOS, ThermoFisher--
Eppendorf PCR仪Eppendorf--
IBIDI培养插入物IBIDI80206

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
TMSB10表达分析
梅花鹿年龄(3岁)、鹿茸生长天数(约35天)、取材部位(主枝远端5cm)、切片方向(矢状面)。
阅读提示:Methods: Antler growth center tissue sampling and immunohistochemistry
细胞培养
AP细胞系来源(8月龄雄鹿)、PP和FP(2岁)、RM/PC/TZ/C(3岁);HUVECs(ScienCell, 8000)培养条件(37°C, 5% CO2, RPMI-1640+10%FBS);细胞传代范围(4-10代)。
阅读提示:Methods: Cell culture
慢病毒过表达
慢病毒载体(pLVX-ires-mCherry-puro)、病毒包装辅助质粒(pSPAX2, pMD2.G)、转染试剂(X-tremeGENE)、感染时聚凝胺浓度(10 μg/ml)、筛选浓度(APCs 2.5 μg/ml,HUVECs 3 μg/ml)和时间(2周)。
阅读提示:Methods: Vectors and preparation of recombination lentivirus; Lentiviral infection
增殖实验
细胞密度(APCs 2500细胞/孔,HUVECs 5000细胞/孔)、eTMSB10浓度(50, 100, 150 ng/ml)和处理时间(24, 48, 72h)、MTT孵育时间(4h)、OD570检测。
阅读提示:Methods: In vitro cytotoxicity MTT assay
CAM实验
受精蛋孵化温度(38°C)、湿度(85%)、eTMSB10剂量(1, 5, 10 μg)、载体(0.1% BSA-PBS)、移植天数(6天)、固定天数(10天)、血管计数标准(距载体1mm内,角度≤45°,排除<0.05mm直径)。
阅读提示:Methods: Chicken embryo chorioallantoic membrane (CAM) assay
软骨形成实验
APCs-ODT密度(1×10^8 cells/ml)、接种体积(100 μl)、培养基组成(高糖DMEM, TGFβ1 10 ng/ml, 地塞米松0.1 μM, L-抗坏血酸2-磷酸50 μg/ml, L-脯氨酸40 μg/ml, 1% ITS)、培养时间(3周)、换液频率(每2天)。
阅读提示:Methods: In vitro chondrocyte induction of APCs using micromass culture
DRG出芽实验
DRG来源(Wistar胎鼠E16)、培养基(Neurobasal + B-27)、包被(poly-L-lysine 10 μg/ml)、eTMSB10浓度(50,100,150 ng/ml)、培养时间(5天,每2天换液)。
阅读提示:Methods: Dorsal root ganglia (DRG) outgrowth assay
分子机制(Western blot)
抗体列表及稀释度(见表1)、上样量(60 μg)、丙烯酰胺浓度(12%或15%)、转膜(PVDF 0.22μm)、封闭(5% NFDM)、一抗孵育(4°C过夜)、二抗及ECL检测。
阅读提示:Methods: Western blotting