沉默激活转录因子2增强索拉非尼在肝细胞癌细胞中的抗癌活性

Silencing activating transcription factor 2 promotes the anticancer activity of sorafenib in hepatocellular carcinoma cells.

作者信息Lifang Luo, Lijing Cai, Laibang Luo, Zhimou Tang, Xiaohui Meng
PMID29693700
发布时间2018-06
DOI10.3892/mmr.2018.8921

实验完整度

中

包含体外细胞实验(Huh-7细胞)的增殖、凋亡、迁移、侵袭检测及分子机制验证(RT-qPCR和western blot),但未涉及动物模型或临床样本,证据层级单一。

主要模型

Huh-7 人肝癌细胞系

重点核对

Huh-7 细胞系,购自上海细胞库(中国) 6 组处理:对照组、空载体、索拉非尼(6.8 µM)、空载体+索拉非尼、siRNA-ATF2、siRNA-ATF2+索拉非尼 转染使用 Lipofectamine 2000,索拉非尼在 ATF2-siRNA 转染后 24 小时应用 细胞增殖(CCK-8)、凋亡(流式)、迁移(划痕)、侵袭(Transwell)检测 分子检测 RT-qPCR 和 western blot 检测 ATF2、JNK3、TNF-α 表达及磷酸化水平

摘要

本研究旨在探讨索拉非尼联合沉默激活转录因子2(ATF2)在肝细胞癌(HCC)细胞中的抗癌作用,并评估其潜在的分子机制。本研究选用Huh-7 HCC细胞系。构建小干扰RNA(siRNA)-ATF2序列以沉默ATF2表达。实验分为6组:(i)对照组;(ii)载体组;(iii)索拉非尼组(6.8 µM);(iv)载体+索拉非尼组;(v)siRNA-ATF2组;(vi)siRNA-ATF2+索拉非尼组。索拉非尼和/或ATF2沉默处理后,检测细胞增殖、凋亡、迁移和侵袭。此外,使用逆转录定量聚合酶链反应和蛋白质印迹法检测肿瘤坏死因子(TNF)-α和c-Jun N末端激酶3(JNK3)的表达。目前的研究结果显示,siRNA-ATF2显著降低ATF2表达。与对照组相比,索拉非尼和siRNA-ATF2组的细胞增殖、迁移和侵袭能力显著降低(P<0.05)。与对照组相比,索拉非尼和siRNA-ATF2组的凋亡率显著增加(P<0.05)。与对照组相比,索拉非尼或siRNA-ATF2组的ATF2 mRNA和蛋白表达水平显著降低。索拉非尼处理或ATF2沉默后,ATF2的磷酸化也降低。尽管JNK3 mRNA表达水平未受影响,但索拉非尼处理或ATF2沉默后JNK3的磷酸化水平显著升高。此外,索拉非尼处理或ATF2沉默后,TNF-α mRNA和蛋白表达水平升高。值得注意的是,siRNA-ATF2处理促进了索拉非尼在Huh-7细胞中的抗癌活性。此外,siRNA-ATF2+索拉非尼联合处理进一步促进了TNF-α表达和JNK3磷酸化。siRNA-ATF2和索拉非尼联合治疗比单独使用索拉非尼或ATF2沉默具有更强的抗癌效果。索拉非尼和ATF2沉默的抗癌作用可能涉及的可能机制与TNF-α/JNK3信号通路的激活有关。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
索拉非尼联合沉默ATF2在HCC细胞中是否具有协同抗癌作用及其潜在分子机制。
核心机制
索拉非尼和ATF2沉默可能通过激活TNF-α/JNK3信号通路发挥抗癌作用。
主要证据
Huh-7细胞中,siRNA-ATF2与索拉非尼联合处理显著抑制细胞增殖、迁移和侵袭,促进凋亡;同时上调TNF-α表达和JNK3磷酸化。
研究意义
为HCC的临床治疗提供实验基础,提示ATF2沉默可能作为提高索拉非尼疗效的策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

细胞培养与转染

建立ATF2沉默的Huh-7细胞模型并分组处理。

Huh-7细胞常规培养,转染空载体或siRNA-ATF2,24小时后应用索拉非尼。

2

细胞增殖检测

评估索拉非尼和/或ATF2沉默对细胞增殖的影响。

CCK-8实验检测各组细胞活力。

3

细胞凋亡检测

评估索拉非尼和/或ATF2沉默对细胞凋亡的影响。

流式细胞术检测Annexin V-FITC/PI染色的凋亡细胞。

4

细胞迁移检测

评估索拉非尼和/或ATF2沉默对细胞迁移能力的影响。

细胞划痕实验,测量愈合面积。

5

细胞侵袭检测

评估索拉非尼和/或ATF2沉默对细胞侵袭能力的影响。

Transwell实验检测侵袭细胞数。

6

分子表达检测

检测ATF2、JNK3和TNF-α的表达及磷酸化水平变化。

RT-qPCR检测mRNA,western blot检测蛋白和磷酸化水平。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Dulbecco改良Eagle培养基Gibco; Thermo Fisher Scientific, Inc.--
胎牛血清Hyclone; GE Healthcare Life Sciences--
青霉素-链霉素Sigma-Aldrich; Merck Millipore--
索拉非尼Selleck ChemicalsS7397
Lipofectamine 2000Invitrogen; Thermo Fisher Scientific, Inc.--
细胞计数试剂盒-8Gibco; Thermo Fisher Scientific, Inc.--
Annexin V-异硫氰酸荧光素Beyotime Institute of Biotechnology--
碘化丙啶Beyotime Institute of Biotechnology--
流式细胞仪BD Biosciences--
结晶紫Amresco, LLC--
光学显微镜Olympus Corporation--
TRIzol试剂盒Baosheng Science & Technology Innovation Co. Ltd.--
逆转录试剂盒Takara Biotechnology Co., Ltd.639522
SYBR-Green qPCR预混液MedChemExpressHY-K0501
triplePrep试剂盒ReadyPrep; GE Healthcare Life Sciences28-9425-44
JNK3抗体Abcamab76572
ATF2抗体BIOSSbs-0518R
GAPDH抗体ABclonal Biotech Co., Ltd.A007
TNF-α抗体BIOSSBA14901
磷酸化JNK3抗体Abcamab76572
磷酸化ATF2抗体BIOSSBS-84449R
二抗Abcamab131368
增强化学发光液GE Healthcare Life SciencesRPN2133
凝胶成像系统Bio-Rad Laboratories, Inc.--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与转染
细胞系(Huh-7),培养基(DMEM+10% FBS+1%青链霉素),转染试剂(Lipofectamine 2000),siRNA序列,转染后24小时加药,索拉非尼浓度(6.8 µM)
阅读提示:Materials and methods: Cell culture and transfection
细胞增殖检测
细胞接种密度(3×10^3细胞/孔),处理时间(48小时),CCK-8孵育时间(4小时),检测波长(560 nm)
阅读提示:Materials and methods: Cell Counting kit-8 assay; Figure 2
细胞凋亡检测
细胞接种密度(3×10^3细胞/孔),染色时间(30分钟),流式细胞仪检测,重复数(6)
阅读提示:Materials and methods: Flow cytometry; Figure 3
细胞迁移检测
细胞接种密度(3×10^3细胞/孔),处理时间(48小时),划痕后孵育时间(48小时),显微镜成像
阅读提示:Materials and methods: Cell migration; Figure 4
细胞侵袭检测
细胞接种密度(3×10^3细胞/孔),无血清饥饿时间(1天),下室FBS浓度(10%),固定液(4% PFA)和时间(20-30分钟),染色(0.1%结晶紫,5分钟),计数视野数(5)
阅读提示:Materials and methods: Transwell assay; Figure 5
分子表达检测
处理时间(48小时),RT-qPCR引物序列,QPCR条件,Western blot抗体稀释比例和货号,重复数(3)
阅读提示:Materials and methods: RT-qPCR and Western blot analysis; Figure 6