建立氧化应激细胞模型
模拟氧化应激对HBMSCs的损伤,用于后续评估HAMSCs的保护作用。
HBMSCs用200 μM H2O2处理12小时建立氧化应激模型。
Human Amnion-Derived Mesenchymal Stem Cells Protect Human Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells against Oxidative Stress-Mediated Dysfunction via ERK1/2 MAPK Signaling.
实验包含细胞增殖、ROS检测、成骨分化(ALP、矿化)、Western blot、流式细胞术及ERK1/2抑制剂U0126的机制验证,多个证据层级。
人骨髓间充质干细胞(HBMSCs) 人羊膜间充质干细胞(HAMSCs) H2O2诱导的氧化应激细胞模型
HBMSCs:HAMSCs比例(5×10^4、10×10^4、15×10^4 cells/transwell) H2O2浓度与处理时间(200 μM,12小时) U0126处理浓度与时间(20 mM,24小时) 细胞传代次数(P3-P5) 共培养时间(ROS检测48小时,ALP 14天,矿化21天)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
模拟氧化应激对HBMSCs的损伤,用于后续评估HAMSCs的保护作用。
HBMSCs用200 μM H2O2处理12小时建立氧化应激模型。
研究HAMSCs对H2O2诱导HBMSCs的保护作用。
使用Transwell共培养系统,将不同比例的HAMSCs与HBMSCs共培养,HBMSCs在6孔板中,HAMSCs在Transwell小室中。
评估HAMSCs对H2O2诱导HBMSCs增殖的影响。
通过流式细胞术检测细胞周期(G0/G1, S, G2/M)在3、5、7天;EdU免疫荧光染色在5天。
评估HAMSCs的抗氧化作用。
使用DCFH-DA荧光探针检测H2O2诱导的HBMSCs中ROS水平,通过荧光显微镜和流式细胞术分析。
评估HAMSCs对H2O2诱导HBMSCs成骨分化的影响。
在成骨诱导培养基中培养,14天检测ALP活性,21天进行茜素红S染色评估矿化结节。
检测ERK1/2和Runx2的表达及磷酸化水平。
共培养14天后,裂解细胞,SDS-PAGE电泳,转膜,用特异性抗体检测p-ERK1/2, ERK1/2, Runx2,β-actin作为内参。
评估Runx2磷酸化水平。
共培养14天后,细胞固定、透化,用抗phospho-Runx2 (Ser451)抗体染色,流式细胞术分析。
验证HAMSCs的作用是否依赖于ERK1/2信号通路。
H2O2诱导的HBMSCs用U0126预处理24小时,再与HAMSCs共培养,检测ROS、ALP、矿化、ERK1/2和Runx2磷酸化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 胎牛血清 | Gibco® Life Technologies | -- |
| α-MEM培养基 | Gibco® Life Technologies | -- | |
| 胰蛋白酶-EDTA | Gibco® Life Technologies | -- | |
| 磷酸盐缓冲液 | Gibco® Life Technologies | -- | |
| 青霉素G-链霉素硫酸盐 | Gibco® Life Technologies | -- | |
| 药物处理 | U0126 | Sigma-Aldrich | -- |
| ROS检测 | 2,7-二氯二氢荧光素二乙酸酯 | Sigma-Aldrich | -- |
| 成骨分化 | β-甘油磷酸钠 | Sigma-Aldrich | -- |
| 抗坏血酸 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 地塞米松 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 共培养 | Transwell小室(6孔Millicell悬挂细胞培养小室,0.4 μm,PET) | Millipore | -- |
| 细胞培养 | 6孔培养板 | Millipore | -- |
| Western blot | 兔抗phospho-Runx2 (Ser451)抗体 | BIOSS Bioscience | -- |
| 增殖检测 | Cell-Light™ EdU Apollo®488体外成像试剂盒 | RiboBio | -- |
| Western blot | 山羊抗兔IgG | Cell Signaling Technology | -- |
| 磷酸化p44/42 MAPK兔单克隆抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| p44/42 MAPK (ERK1/2)兔单克隆抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| Runx2 (D1L7F)兔单克隆抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 蛋白检测试剂盒 | Beyotime | -- | |
| RIPA裂解缓冲液 | Beyotime | -- | |
| 免疫荧光 | DAPI | Beyotime | -- |
| ALP活性检测 | 碱性磷酸酶检测试剂盒 | Jiancheng Corp | -- |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Jiancheng Corp | -- |
| Western blot | 聚偏二氟乙烯膜(0.22 μm) | Millipore | -- |
| ECL化学发光检测试剂盒 | Amersham Pharmacia | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与共培养 | 细胞来源(ATCC)、细胞代数(P3-P5)、培养基(αMEM+10% FBS+100 U/L青霉素+100 mg/L链霉素)、共培养比例(HBMSCs:HAMSCs=5×10^4, 10×10^4, 15×10^4 cells/transwell)、Transwell孔径(0.4 μm) 阅读提示:Materials and Methods 中的 'Cell culture' 和 'The co-culture system' |
| 氧化应激诱导 | H2O2浓度(200 μM)和处理时间(12小时) 阅读提示:Materials and Methods 中的 'The co-culture system' 和 'Discussion' |
| ERK1/2抑制实验 | U0126浓度(20 mM)和处理时间(24小时)在H2O2处理后、共培养前 阅读提示:Materials and Methods 中的 'In vitro osteogenic differentiation' 和 'RESULTS' 部分 |
| 成骨分化诱导 | 成骨诱导培养基成分(10 mM β-甘油磷酸钠、100 nM抗坏血酸、100 nM地塞米松)、检测时间(ALP 14天,矿化21天) 阅读提示:Materials and Methods 中的 'In vitro osteogenic differentiation' |
| 蛋白表达检测 | 抗体稀释比例(p-ERK1/2 1:500, ERK1/2 1:500, Runx2 1:1000, β-actin 1:500)、蛋白上样量(20 μg)、内参(β-actin) 阅读提示:Materials and Methods 中的 'Assessment of osteoblast (OB) –related protein' |
| 统计方法 | 至少三个独立实验,每次重复五次;数据以mean ± S.D.表示;使用单因素方差分析(one-way ANOVA),P < 0.05为差异显著 阅读提示:Materials and Methods 中的 'Statistical analysis' |