人羊膜间充质干细胞通过ERK1/2 MAPK信号通路保护人骨髓间充质干细胞免受氧化应激介导的功能障碍

Human Amnion-Derived Mesenchymal Stem Cells Protect Human Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells against Oxidative Stress-Mediated Dysfunction via ERK1/2 MAPK Signaling.

作者信息Yuli Wang, Junchi Ma, Yifei Du, Jing Miao, Ning Chen
PMID26743906
期刊Mol Cells
发布时间2016-03
DOI10.14348/molcells.2016.2159

实验完整度

实验包含细胞增殖、ROS检测、成骨分化(ALP、矿化)、Western blot、流式细胞术及ERK1/2抑制剂U0126的机制验证,多个证据层级。

主要模型

人骨髓间充质干细胞(HBMSCs) 人羊膜间充质干细胞(HAMSCs) H2O2诱导的氧化应激细胞模型

重点核对

HBMSCs:HAMSCs比例(5×10^4、10×10^4、15×10^4 cells/transwell) H2O2浓度与处理时间(200 μM,12小时) U0126处理浓度与时间(20 mM,24小时) 细胞传代次数(P3-P5) 共培养时间(ROS检测48小时,ALP 14天,矿化21天)

摘要

流行病学证据表明,骨骼对氧化应激特别敏感,导致老年人骨丢失。先前的研究表明,从人羊膜中获得的人羊膜间充质干细胞(HAMSCs)在体内发挥骨保护作用。然而,HAMSCs作为种子细胞对抗氧化应激介导的功能障碍的潜力尚不清楚。在本研究中,我们在体外系统研究了其抗氧化和成骨作用。在这里,我们证明HAMSCs显著促进H2O2诱导的人骨髓间充质干细胞(HBMSCs)的增殖和成骨分化,并下调活性氧(ROS)水平。此外,我们的结果表明,ERK1/2 MAPK信号转导通路的激活对于HAMSCs介导的成骨作用和对HBMSCs氧化应激诱导的功能障碍的保护作用都是必不可少的。U0126,一种高度选择性的细胞外ERK1/2 MAPK信号抑制剂,显著抑制了HAMSCs的抗氧化和成骨作用。总之,通过调节HBMSCs,HAMSCs在治疗氧化应激介导的骨缺损方面显示出强大的潜力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
HAMSCs能否对抗H2O2诱导的HBMSCs氧化应激损伤,并探究其潜在分子机制。
核心机制
HAMSCs通过激活ERK1/2 MAPK信号通路,上调Runx2磷酸化,促进H2O2诱导的HBMSCs增殖和成骨分化,并降低ROS水平。
主要证据
体外Transwell共培养实验显示,HAMSCs促进H2O2诱导的HBMSCs增殖、ALP活性和矿化结节形成,抑制ROS生成,并增加p-ERK1/2和p-Runx2水平;U0126抑制ERK1/2后,这些保护效应被逆转。
研究意义
HAMSCs通过调节HBMSCs,在治疗氧化应激介导的骨缺损方面展现出巨大潜力,为组织工程和骨再生提供新的种子细胞来源。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立氧化应激细胞模型

模拟氧化应激对HBMSCs的损伤,用于后续评估HAMSCs的保护作用。

HBMSCs用200 μM H2O2处理12小时建立氧化应激模型。

2

共培养体系

研究HAMSCs对H2O2诱导HBMSCs的保护作用。

使用Transwell共培养系统,将不同比例的HAMSCs与HBMSCs共培养,HBMSCs在6孔板中,HAMSCs在Transwell小室中。

3

检测细胞增殖

评估HAMSCs对H2O2诱导HBMSCs增殖的影响。

通过流式细胞术检测细胞周期(G0/G1, S, G2/M)在3、5、7天;EdU免疫荧光染色在5天。

4

检测ROS水平

评估HAMSCs的抗氧化作用。

使用DCFH-DA荧光探针检测H2O2诱导的HBMSCs中ROS水平,通过荧光显微镜和流式细胞术分析。

5

检测成骨分化

评估HAMSCs对H2O2诱导HBMSCs成骨分化的影响。

在成骨诱导培养基中培养,14天检测ALP活性,21天进行茜素红S染色评估矿化结节。

6

Western blot分析

检测ERK1/2和Runx2的表达及磷酸化水平。

共培养14天后,裂解细胞,SDS-PAGE电泳,转膜,用特异性抗体检测p-ERK1/2, ERK1/2, Runx2,β-actin作为内参。

7

流式检测phospho-Runx2

评估Runx2磷酸化水平。

共培养14天后,细胞固定、透化,用抗phospho-Runx2 (Ser451)抗体染色,流式细胞术分析。

8

ERK1/2抑制剂实验

验证HAMSCs的作用是否依赖于ERK1/2信号通路。

H2O2诱导的HBMSCs用U0126预处理24小时,再与HAMSCs共培养,检测ROS、ALP、矿化、ERK1/2和Runx2磷酸化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证细胞功能变化
验证抗氧化效应
验证机制链路
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
胎牛血清Gibco® Life Technologies--
α-MEM培养基Gibco® Life Technologies--
胰蛋白酶-EDTAGibco® Life Technologies--
磷酸盐缓冲液Gibco® Life Technologies--
青霉素G-链霉素硫酸盐Gibco® Life Technologies--
U0126Sigma-Aldrich--
2,7-二氯二氢荧光素二乙酸酯Sigma-Aldrich--
β-甘油磷酸钠Sigma-Aldrich--
抗坏血酸Sigma-Aldrich--
地塞米松Sigma-Aldrich--
Transwell小室(6孔Millicell悬挂细胞培养小室,0.4 μm,PET)Millipore--
6孔培养板Millipore--
兔抗phospho-Runx2 (Ser451)抗体BIOSS Bioscience--
Cell-Light™ EdU Apollo®488体外成像试剂盒RiboBio--
山羊抗兔IgGCell Signaling Technology--
磷酸化p44/42 MAPK兔单克隆抗体Cell Signaling Technology--
p44/42 MAPK (ERK1/2)兔单克隆抗体Cell Signaling Technology--
Runx2 (D1L7F)兔单克隆抗体Cell Signaling Technology--
蛋白检测试剂盒Beyotime--
RIPA裂解缓冲液Beyotime--
DAPIBeyotime--
碱性磷酸酶检测试剂盒Jiancheng Corp--
BCA蛋白定量试剂盒Jiancheng Corp--
聚偏二氟乙烯膜(0.22 μm)Millipore--
ECL化学发光检测试剂盒Amersham Pharmacia--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与共培养
细胞来源(ATCC)、细胞代数(P3-P5)、培养基(αMEM+10% FBS+100 U/L青霉素+100 mg/L链霉素)、共培养比例(HBMSCs:HAMSCs=5×10^4, 10×10^4, 15×10^4 cells/transwell)、Transwell孔径(0.4 μm)
阅读提示:Materials and Methods 中的 'Cell culture' 和 'The co-culture system'
氧化应激诱导
H2O2浓度(200 μM)和处理时间(12小时)
阅读提示:Materials and Methods 中的 'The co-culture system' 和 'Discussion'
ERK1/2抑制实验
U0126浓度(20 mM)和处理时间(24小时)在H2O2处理后、共培养前
阅读提示:Materials and Methods 中的 'In vitro osteogenic differentiation' 和 'RESULTS' 部分
成骨分化诱导
成骨诱导培养基成分(10 mM β-甘油磷酸钠、100 nM抗坏血酸、100 nM地塞米松)、检测时间(ALP 14天,矿化21天)
阅读提示:Materials and Methods 中的 'In vitro osteogenic differentiation'
蛋白表达检测
抗体稀释比例(p-ERK1/2 1:500, ERK1/2 1:500, Runx2 1:1000, β-actin 1:500)、蛋白上样量(20 μg)、内参(β-actin)
阅读提示:Materials and Methods 中的 'Assessment of osteoblast (OB) –related protein'
统计方法
至少三个独立实验,每次重复五次;数据以mean ± S.D.表示;使用单因素方差分析(one-way ANOVA),P < 0.05为差异显著
阅读提示:Materials and Methods 中的 'Statistical analysis'