体外甲基化验证
检测NSun2是否直接甲基化miR-125b的初级、前体和成熟形式
使用纯化的His-NSun2和3H标记SAM进行体外甲基化实验,并通过点杂交检测m6A修饰。
Methylation by NSun2 represses the levels and function of microRNA 125b.
包括体外甲基化实验、体内甲基化检测、细胞功能实验、基因沉默、体外加工实验和氧化应激处理等多种验证。
HeLa细胞 IDH4人成纤维细胞 果蝇Schneider-2(S2)细胞提取物
NSun2过表达或敲低后miR-125b的甲基化水平变化 H2O2处理诱导的氧化应激条件下NSun2和miR-125b水平 NSun2敲低对pre-miR-125b2和pri-miR-125b2水平的影响 NSun2甲基化对pre-miR-125b2和pri-miR-125b2体外加工的影响 NSun2敲低对Ago2结合的miR-125b及其靶mRNA水平的影响
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
检测NSun2是否直接甲基化miR-125b的初级、前体和成熟形式
使用纯化的His-NSun2和3H标记SAM进行体外甲基化实验,并通过点杂交检测m6A修饰。
检测内源性miR-125b及其前体在细胞内的甲基化状态,并验证NSun2的调控作用
使用抗m6A抗体进行RNA免疫沉淀,结合RT-qPCR或半定量RT-PCR检测miR-125b及其前体。
验证NSun2甲基化对miR-125b靶基因表达的影响
通过Western blot检测NSun2过表达或敲低后靶蛋白水平;使用荧光素酶报告基因检测NSun2敲低对靶基因3'UTR活性的影响。
验证NSun2甲基化是否影响miR-125b的加工过程
通过Northern blot检测NSun2敲低对miR-125b及其前体水平的影响;使用体外加工实验检测甲基化对pri-miR-125b2和pre-miR-125b2加工的影响。
验证NSun2甲基化是否影响miR-125b对RISC的招募
使用RNA pulldown和RNA免疫沉淀(RIP)检测Ago2与miR-125b及靶mRNA的结合。
验证NSun2-miR-125b轴是否参与氧化应激反应
用H2O2处理HeLa和IDH4细胞,检测NSun2、miR-125b和靶蛋白水平及报告基因活性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 杜氏改良Eagle培养基 | Invitrogen | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素 | -- | -- | |
| 链霉素 | -- | -- | |
| 地塞米松 | -- | -- | |
| 细胞转染 | Lipofectamine 2000转染试剂 | Invitrogen | -- |
| 药物处理 | 过氧化氢 | AMRESCO | -- |
| Western blot | ErbB2抗体 | Bioworld Technologies | -- |
| Bak1抗体 | Bioworld Technologies | -- | |
| E2F3抗体 | Bioss Biotechnologies | -- | |
| CDC25C抗体 | Santa Cruz Biotechnologies | -- | |
| ppp1ca抗体 | Santa Cruz Biotechnologies | -- | |
| p53抗体 | Santa Cruz Biotechnologies | -- | |
| Drosha抗体 | Santa Cruz Biotechnologies | -- | |
| Dicer抗体 | Santa Cruz Biotechnologies | -- | |
| NSun2抗体 | Abcam | -- | |
| GAPDH抗体 | Abcam | -- | |
| RNA免疫沉淀 | Ago2抗体 | Medical and Biological Laboratories (MBL) | -- |
| 斑点印迹 | 抗m6A抗体 | Synaptic Systems | -- |
| 质粒构建 | pcDNA 3.1载体 | Clontech | -- |
| 报告基因实验 | pmirGLO载体 | Promega | -- |
| 双荧光素酶检测系统 | Promega | -- | |
| RNA提取 | RNeasy小型试剂盒 | Qiagen | -- |
| miRcute miRNA提取试剂盒 | Tiangen | -- | |
| 体外甲基化 | 镍-氮基三乙酸琼脂糖 | Qiagen | -- |
| 3H标记的S-腺苷甲硫氨酸 | Amersham Bioscience | -- | |
| S-腺苷甲硫氨酸 | Sigma | -- | |
| 大肠杆菌tRNA | Sigma | -- | |
| QIAquick离心柱 | Qiagen | -- | |
| RNA pulldown | 链霉亲和素偶联磁珠Dynabeads | Dynal | -- |
| Western blot | Dylight 800标记山羊抗兔二抗 | -- | -- |
| Odyssey红外成像系统 | LI-COR Biotechnologies | -- | |
| 转染 | Oligofectamine转染试剂 | Invitrogen | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与处理 | 细胞系(HeLa、IDH4)、培养基(DMEM)、血清浓度、抗生素浓度、地塞米松浓度(1 μg/ml)、H2O2浓度(50 μM)和处理时间(24小时) 阅读提示:Materials and Methods, Cell culture, transfection, and treatment |
| 转染条件 | 质粒浓度(2 μg/ml)、siRNA浓度(20 nM)、转染试剂(Lipofectamine 2000或Oligofectamine)、转染后收集时间(48小时) 阅读提示:Materials and Methods, Cell culture, transfection, and treatment; 质粒构建 |
| 体外甲基化实验 | His-NSun2浓度(0.2 nM)、RNA底物浓度(0.01 nM)、3H-SAM用量(1 μCi)、反应缓冲液组成、孵育时间(45分钟)和温度(37°C) 阅读提示:Materials and Methods, In vitro methylation assays |
| RNA免疫沉淀 | 抗m6A抗体用量(1 μg)、细胞RNA用量(20 μg)、protein G-Sepharose用量(20 μl)、孵育条件(4°C 2小时) 阅读提示:Materials and Methods, Measurement of in vivo methylation |
| 荧光素酶报告基因实验 | 报告基因载体(pGL3衍生)、转染时间(24小时)和siRNA处理时间(48小时)、双荧光素酶检测系统 阅读提示:Materials and Methods, Constructs and reporter gene assays; Figure 4 legend |
| 体外加工实验 | 甲基化RNA用量(0.15 μg)、S2细胞提取物用量(20 μg)、反应缓冲液(30 mM HEPES-KOH pH 7.4, 100 mM KOAc, 2 mM MgOAc, 5 mM DTT)、反应时间(60分钟) 阅读提示:Materials and Methods, In vitro microRNA processing assays |
| RNA pulldown/RIP | 生物素化RNA用量(1 μg)、细胞裂解液用量(200 μg)、链霉亲和素磁珠、抗Ago2抗体(1 μg) 阅读提示:Materials and Methods, RNA pulldown assays and RIP assays |