鉴定用于谱系特异性ESC分化的转录因子

Identification of transcription factors for lineage-specific ESC differentiation.

作者信息Kohei Yamamizu, Yulan Piao, Alexei A Sharov, Veronika Zsiros, Hong Yu, Kazu Nakazawa, David Schlessinger, Minoru S H Ko
PMID24371809
发布时间2013-11-27
DOI10.1016/j.stemcr.2013.10.006

实验完整度

包含体外细胞分化、功能验证(免疫染色、FACS、集落形成)、电生理、ChIP及体内证据(转录组与组织表达比较),并有多重独立实验。

主要模型

小鼠胚胎干细胞系(tet-off诱导系统) C2C12小鼠成肌细胞 原代肝细胞 成人脑神经干细胞(用于比较)

重点核对

转录因子诱导方式:tet-off系统(Dox调控)或合成mRNA转染 分化培养基:标准分化培养基及谱系特异性培养基(如血液、肝、神经) 诱导时间:通常在3-14天不等 功能验证:免疫染色、FACS、集落形成、电生理、ChIP 统计设计:三次独立实验,ANOVA,p<0.05

摘要

在此,Ko及其同事报告,全局基因表达谱的相关矩阵可以识别单个转录因子,其过表达能指导高效、特异且快速的向肌细胞、肝细胞、血细胞和神经元的分化。这些结果表明,单个转录因子直接指导分化至特定谱系命运的未预期能力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
能否基于全局基因表达谱的相关矩阵来鉴定能够单独指导胚胎干细胞向特定谱系分化的转录因子?
核心机制
单个转录因子的过表达通过直接结合靶基因启动子区域,协调全局基因表达变化,从而绕过自然分化级联,快速引导谱系特异性分化。
主要证据
通过相关矩阵鉴定了Myod1、Hnf4a、Sfpi1等转录因子,并在小鼠ESC中过表达,分别产生肌细胞、肝细胞、血细胞和神经元,通过免疫染色、FACS、电生理等验证功能成熟;ChIP证明转录因子直接结合靶基因。
研究意义
该策略有助于从多能干细胞获得所需分化细胞类型,可能为未来治疗应用提供新途径。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

基于相关矩阵预测候选转录因子

利用基因表达谱相关矩阵识别可能驱动ESC向特定谱系分化的单个转录因子。

使用NIA小鼠ES细胞库中137个可诱导转录因子的ESC系,过表达每个转录因子48小时后测定全局基因表达谱,并与GNF数据库中的多种细胞类型表达谱计算相关性,从而预测候选转录因子。

2

体外分化验证(肌细胞、肝细胞、血细胞、神经元)

验证候选转录因子过表达能否直接将ESC分化为目标细胞类型。

分别在标准分化培养基或无LIF条件下培养诱导型ESC,过表达候选转录因子,并通过免疫染色、流式细胞术、PAS染色、LDL摄取、白蛋白ELISA、集落形成等检测分化效率与成熟度。

3

功能成熟度评估(肌管融合、电生理)

评估分化所得细胞是否具有功能成熟性。

肌细胞与C2C12细胞共培养观察融合;神经元进行膜片钳记录检测动作电位和突触活动,并应用APV和NBQX阻断谷氨酸受体验证突触传递。

4

转录组特征与直接结合验证

验证分化细胞的转录组与目标组织相似,并证明转录因子直接结合靶基因。

通过微阵列分析分化细胞的全局基因表达,并与目标组织(如神经干细胞、原代肝细胞)比较进行等级图分析;通过ChIP-qPCR检测FLAG标记的转录因子(ASCL1、HNF4A、SFPI1)是否结合靶基因启动子。

5

合成mRNA转染验证

检验合成mRNA转染是否同样能诱导分化,为潜在治疗应用提供无DNA整合方法。

ESC首先在DM中培养3天,随后连续5天转染编码Myod1、Hnf4a、Sfpi1或Ascl1的mRNA,之后在器官特异性培养基中培养3天,通过免疫染色和FACS检测分化结果。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证分子表达变化
验证机制链路
评估体内效果
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
StemPro-34无血清培养基Invitrogen--
肝细胞培养基试剂盒BD Biosciences--
NeuroCult分化试剂盒STEMCELL Technologies--
干细胞因子R&D Systems--
白介素-3R&D Systems--
白介素-6R&D Systems--
白介素-11R&D Systems--
粒细胞集落刺激因子R&D Systems--
巨噬细胞集落刺激因子R&D Systems--
Flt3配体R&D Systems--
促红细胞生成素R&D Systems--
促血小板生成素R&D Systems--
肝细胞生长因子R&D Systems--
制瘤素MR&D Systems--
APC偶联CD45抗体eBioscience--
Accuri C6流式细胞仪Becton Dickinson--
FACSCanto II流式细胞仪Becton Dickinson--
PE偶联抗FOXA2抗体Bioss--
小鼠抗MHC抗体DSHB--
小鼠抗肌细胞生成素抗体BD Biosciences--
山羊抗SOX17抗体R&D Systems--
小鼠抗AFP抗体R&D Systems--
小鼠抗白蛋白抗体R&D Systems--
小鼠抗βIII-微管蛋白(TUJ1)抗体Covance--
兔抗TUJ1抗体Covance--
小鼠抗MAP2抗体Sigma-Aldrich--
小鼠抗NEUN抗体Millipore--
小鼠抗突触蛋白I抗体Millipore--
兔抗酪氨酸羟化酶抗体Millipore--
大鼠抗多巴胺转运体抗体Millipore--
小鼠抗ISL1/ISL2抗体DSHB--
兔抗GABA抗体Sigma-Aldrich--
PKH26染料Sigma-Aldrich--
DMEM培养基----
马血清----
Eclipse TE300倒置荧光显微镜Nikon--
PAS染色试剂盒Sigma-Aldrich--
DiI标记的乙酰化低密度脂蛋白Biomedical Technologies--
无葡萄糖和酚红的DMEMInvitrogen--
乳酸钠Sigma-Aldrich--
小鼠白蛋白ELISA试剂盒Bethyl Laboratory--
VICTOR3 V酶标仪PerkinElmer--
MethoCult H3434半固体培养基STEMCELL Technologies--
人促血小板生成素R&D Systems--
粒细胞集落刺激因子R&D Systems--
多西环素----
Hemacolor染色液Merck--
FluoroDish培养皿World Precision Instruments--
APV----
NBQX----
抗FLAG抗体Sigma-Aldrich--
Power SYBR Green PCR预混液Applied Biosystems--
合成修饰mRNAStemgent--
RNAiMAX转染试剂Thermo Fisher Scientific--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与分化
ESC系携带tet-off调控的TF;分化培养基(标准DM,无LIF);谱系特异性培养基(血液、肝、神经)
阅读提示:实验方法:细胞培养与分化
细胞因子处理
细胞因子浓度:SCF 100 ng/ml, IL-3 1 ng/ml, IL-6 5 ng/ml, IL-11 5 ng/ml, G-CSF 20 ng/ml, M-CSF 10 ng/ml, Flt3 ligand 10 ng/ml, EPO 4 U/ml, TPO 5 ng/ml; HGF 20 ng/ml, OSM 20 ng/ml
阅读提示:实验方法:细胞培养与分化
免疫染色
抗体稀释比例:抗MHC 1:500, 抗MYOGENIN 1:500, 抗SOX17 1:500, 抗AFP 1:200, 抗ALBUMIN 1:200, 抗TUJ1 1:500, 抗MAP2 1:500, 抗NEUN 1:100, 抗SYNAPSIN 1:100, 抗TH 1:500, 抗DAT 1:500, 抗ISL1/ISL2 1:500, 抗GABA 1:500
阅读提示:实验方法:免疫组织化学
电生理
记录溶液成分、动作电位和突触记录条件、APV和NBQX浓度
阅读提示:实验方法:电生理
ChIP
染色质交联和裂解条件、抗FLAG抗体、引物序列
阅读提示:实验方法:ChIP及表S1