人巨噬细胞活化后FcγRI膜纳米簇与抑制性SIRPα发生分离

Membrane nanoclusters of FcγRI segregate from inhibitory SIRPα upon activation of human macrophages.

作者信息Filipa B Lopes, Štefan Bálint, Salvatore Valvo, James H Felce, Edith M Hessel, Michael L Dustin, Daniel M Davis
PMID28289091
发布时间2017-04-03
DOI10.1083/jcb.201608094

实验完整度

包含体外细胞模型(原代人巨噬细胞)及多种功能验证(药物抑制、SLB模型、ELISA),并涉及机制研究(细胞骨架、SFK信号)。

主要模型

人单核细胞来源的原代巨噬细胞 平面玻璃支持脂质双层(SLB)模型 hIgG包被表面的吞噬突触模型

重点核对

细胞类型:人单核细胞来源巨噬细胞,CD14+ 刺激条件:10 μg/ml hIgG、hIgG1、hIgG2或hCD47包被玻片,10或30 min 药物处理:1 μM latrunculin A, 0.5 μM jasplakinolide, 10 μM blebbistatin, 10 μM SMIFH2, 10 μM PP2, 100 μM piceatannol, 1 μM wortmannin 固定方法:4% PFA/PBS 15 min 统计:至少30个细胞,来自三位独立供体,双尾t检验或ANOVA

摘要

Lopes等人使用超分辨显微镜观察人巨噬细胞上激活性和抑制性受体的纳米尺度组织。抑制性SIRPα和激活性FcγRI的纳米簇在细胞静息状态下相互关联,但FcγRI的参与诱导它们的分离。摘要:激活性和抑制性Fc受体之间的信号整合控制巨噬细胞的吞噬作用。这里,我们使用双色直接随机光学重建显微镜报告,Fcγ受体I(FcγRI)、FcγRII和SIRPα并非均匀分布在巨噬细胞表面,而是组织在离散的纳米簇中,平均半径分别为71±11 nm、60±6 nm和48±3 nm。FcγRI(而非FcγRII)的纳米簇与SIRPα纳米簇组成性相关,距离为62±5 nm,由肌动蛋白细胞骨架介导。在Fc受体激活时,Src家族激酶信号导致FcγRI和SIRPα纳米簇分离至197±3 nm。SIRPα与CD47的共连接消除了纳米簇分离。如果信号平衡有利于激活,FcγRI纳米簇会重组成周期性间隔的同心环。因此,在信号整合的同时,人巨噬细胞表面发生纳米和微米尺度的激活性和抑制性受体重组。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
在巨噬细胞信号整合过程中,激活性FcγRI和抑制性SIRPα如何在纳米尺度组织并动态变化?
核心机制
静息时FcγRI与SIRPα纳米簇通过肌动蛋白细胞骨架组成性关联;FcγRI活化后,Src家族激酶信号导致两者分离,并形成依赖formins的同心环;SIRPα连接CD47可阻止分离并招募pSHP-1。
主要证据
利用双色dSTORM和定量分析(CBC、NND)显示静息时FcγRI和SIRPα纳米簇邻近(中心距离约62 nm),激活后分离至约197 nm;药物抑制实验表明肌动蛋白和SFK信号必需。
研究意义
揭示了巨噬细胞表面受体纳米和微米尺度的重排与信号整合同步,可能为吞噬作用的调节机制提供新视角。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

巨噬细胞培养与鉴定

获取并验证人原代巨噬细胞。

从健康供体外周血分离PBMC,经CD14+磁珠分选和培养,6天后获得单核细胞来源巨噬细胞,并通过流式细胞术鉴定表型。

2

纳米簇组织观察

确定SIRPα和FcγRI在巨噬细胞表面的纳米尺度组织。

细胞铺在PLL或hIgG包被的玻片上,固定后染色,进行dSTORM成像,并通过Ripley K、Getis-Franklin分析和聚类分析量化纳米簇。

3

双色共定位与分离分析

检验静息和活化状态下FcγRI与SIRPα纳米簇的空间关系。

双色dSTORM成像,结合CBC分析和最近邻距离分析,定量共定位程度。

4

受体特异性验证

验证FcγRI与SIRPα的关联是否特异。

用FcγRII代替FcγRI进行双色dSTORM成像,比较其与SIRPα的共定位情况。

5

活化和抑制信号对纳米簇重组的影响

研究SIRPα连接对FcγRI纳米簇分离和环状形成的影响。

使用hCD47和hIgG共包被激活巨噬细胞,进行dSTORM成像和ELISA检测M-CSF释放。

6

细胞骨架药物处理

探究肌动蛋白细胞骨架在纳米簇关联和分离中的作用。

用latrunculin A、jasplakinolide、blebbistatin、SMIFH2处理细胞,然后进行dSTORM成像,评估对FcγRI和SIRPα共定位及环形成的影响。

7

信号通路药理学抑制

确定SFK、Syk和PI3K信号在受体分离和环形成中的作用。

用PP2、piceatannol、wortmannin预处理细胞,然后进行dSTORM成像和免疫印迹验证抑制效果。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Ficoll-Paque PlusAmersham Pharmacia Biotech--
CD14磁珠Miltenyi Biotec--
X-Vivo 10培养基Lonza--
DMEM培养基Sigma-Aldrich--
Zombie Aqua活力染料BioLegend--
抗CD14单克隆抗体eBioscience--
抗SIRPα单克隆抗体BioLegend--
抗FcγRI单克隆抗体BioLegend--
抗FcγRII单克隆抗体BD--
BD FACS Canto II流式细胞仪BD--
DuoSet ELISA试剂盒R&D Systems--
PP2Sigma-Aldrich--
blebbistatinSigma-Aldrich--
piceatannolSigma-Aldrich--
jasplakinolideSigma-Aldrich--
latrunculin AEMD Millipore--
wortmanninSigma-Aldrich--
SMIFH2Sigma-Aldrich--
cOmplete无EDTA蛋白酶抑制剂Roche--
抗磷酸化AKT Ser 473抗体Cell Signaling Technology--
抗肌动蛋白抗体Sigma-Aldrich--
多聚赖氨酸Sigma-Aldrich--
重组人CD47-Fc蛋白R&D Systems--
抗SIRPα-AF647抗体AbD Serotec--
抗FcγRI-AF488抗体BioLegend--
抗FcγRII抗体BD--
抗PTPN6(Tyr536)-AF647抗体Bioss--
链霉亲和素偶联试剂盒Abcam--
DOPE-cap-生物素Avanti Polar Lipids--
1,2-二油酰-sn-甘油-3-磷酸胆碱Avanti Polar Lipids--
链霉亲和素-AF647Molecular Probes--
TCS SP8共聚焦显微镜Leica Biosystems--
NucBlue活细胞染色剂Invitrogen--
Vybrant DiD膜染料Invitrogen--
N-STORM显微镜Nikon--
IXON Ultra 897 EMCCD相机Andor Technology--
SR GSD显微镜Leica Biosystems--
TetraSpek荧光微球Invitrogen--
Insight3软件----
ImageJ软件National Institutes of Health--
Origin软件OriginLab--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
人单核细胞来源巨噬细胞的分离、培养时间(7天)和培养基组成
阅读提示:Materials and methods, Generation of macrophages
刺激条件
包被物(PLL, hIgG, hIgG1, hIgG2, hCD47)及其浓度(10 μg/ml),刺激时间(5,10,30 min)
阅读提示:Materials and methods, Sample preparation for imaging
药物处理
药物名称、浓度、预处理时间(如latrunculin A 1 μM 10 min, PP2 10 μM 30 min)
阅读提示:Materials and methods, Drug treatments
dSTORM成像
固定方案(4% PFA 15 min)、抗体浓度、荧光染料(AF647/AF488)、成像参数(如激光波长、帧数)
阅读提示:Materials and methods, dSTORM imaging
数据分析
CBC分析搜索半径(50 nm)、NND计算方法、聚类分析参数(采样半径50 nm)
阅读提示:Materials and methods, dSTORM data analysis and CBC analysis