MKP-1通过p38激活和HIF-1α表达负调控LPS介导的IL-1β产生

MKP-1 negatively regulates LPS-mediated IL-1β production through p38 activation and HIF-1α expression.

作者信息Harvinder Talwar, Christian Bauerfeld, Mohamad Bouhamdan, Pershang Farshi, Yusen Liu, Lobelia Samavati
PMID28238855
发布时间2017-06-10
DOI10.1016/j.cellsig.2017.02.018

实验完整度

包含基因敲除小鼠来源的BMDMs体外模型,通过Western blot、qRT-PCR、ELISA、ROS检测等功能实验及抑制剂验证,多个独立证据层级。

主要模型

野生型小鼠骨髓来源巨噬细胞(BMDMs) MKP-1基因敲除小鼠骨髓来源巨噬细胞(BMDMs)

重点核对

MKP-1敲除BMDMs与WT对照,LPS刺激浓度100 ng/mL HIF-1α抑制剂Echinomycin预处理浓度10 nM p38抑制剂SB203580预处理浓度10 μM JNK抑制剂SP600125预处理浓度20 μM ROS检测使用CM-H2DCFDA(5 μM)和MitoSOX(1 μM)

摘要

白细胞介素1β(IL-1β)是一种促炎细胞因子,在炎症性疾病以及癌症中发挥重要作用。Toll样受体(TLR)4激活后的炎症反应通过MAP激酶(包括p38和JNK通路)的磷酸化受到严格调控。MAP激酶的激活受MAPK磷酸酶(MKPs)负调控。MKP-1优先使p38和JNK去磷酸化。IL-1β通过MAPK(包括p38)以及多种转录因子的激活受到调控。氧敏感性转录因子HIF-1α是包括IL-1β和IL-6在内的多种炎症细胞因子的已知转录因子。在此,我们报道MKP-1在响应LPS时调控HIF-1α表达。MKP-1缺陷的骨髓来源巨噬细胞(BMDMs)表现出活性氧(ROS)产生增加和HIF-1α表达升高。相反,在MKP-1缺陷的BMDMs中,三种脯氨酰羟化酶(PHDs)同工型(对通过羟基化使HIF-1α不稳定至关重要)的表达均显著降低。LPS刺激MKP-1缺陷的BMDMs导致IL-1β产生大幅增加。HIF-1α抑制剂在转录和蛋白水平均显著降低LPS介导的IL-1β产生。类似地,抑制p38 MAP激酶降低了MKP-1缺陷BMDMs中LPS介导的pro-IL-1β和HIF-1α蛋白水平以及ROS产生。这些发现证明了MKP-1通过p38激活、ROS产生和HIF-1α表达调节IL-1β表达的调控功能。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
MKP-1如何调控LPS介导的IL-1β产生?
核心机制
MKP-1通过限制p38磷酸化,抑制p38介导的ROS产生和HIF-1α表达,从而负调控LPS诱导的IL-1β产生。
主要证据
MKP-1缺陷BMDMs在LPS刺激下p38磷酸化、ROS产生和HIF-1α表达均增加,PHDs表达降低,且IL-1β产生显著升高;HIF-1α抑制剂和p38抑制剂均能降低IL-1β水平。
研究意义
MKP-1可能成为HIF-1α调控的病理过程(包括炎症和癌症)的新治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证MKP-1对IL-1β产生的调控作用

检测MKP-1缺失是否影响LPS诱导的IL-1β表达。

WT和MKP-1−/− BMDMs在相同条件下培养,用LPS(100 ng/mL)刺激不同时间,通过Western blot检测pro-IL-1β蛋白,ELISA检测成熟IL-1β分泌,qRT-PCR检测IL-1β mRNA水平。

2

检测MAPK磷酸化水平

探究MKP-1缺失对LPS诱导的MAPK(p38、JNK、ERK)激活的影响。

WT和MKP-1−/− BMDMs用LPS刺激不同时间,通过Western blot检测磷酸化和总MAPK蛋白水平。

3

分析HIF-1α及PHDs表达

探究MKP-1缺失对HIF-1α表达及调控其稳定性的PHDs的影响。

WT和MKP-1−/− BMDMs在LPS刺激或不刺激条件下,通过qRT-PCR检测HIF-1α及PHD1-3 mRNA水平,Western blot检测HIF-1α蛋白水平。

4

检测ROS产生

评估MKP-1缺失对基础和LPS诱导的细胞质和线粒体ROS产生的影响。

WT和MKP-1−/− BMDMs在LPS刺激或不刺激条件下,使用CM-H2DCFDA和MitoSOX荧光探针分别检测细胞质ROS和线粒体ROS。

5

验证HIF-1α在IL-1β产生中的作用

确定HIF-1α是否介导MKP-1缺失导致的IL-1β过度产生。

WT和MKP-1−/− BMDMs用HIF-1α抑制剂Echinomycin预处理,随后LPS刺激,通过qRT-PCR和Western blot检测IL-1β和HIF-1α表达。

6

验证p38和JNK信号通路

确定p38和JNK在LPS诱导的IL-1β、HIF-1α表达及ROS产生中的作用。

WT和MKP-1−/− BMDMs分别用p38抑制剂SB203580或JNK抑制剂SP600125预处理,随后LPS刺激,通过Western blot检测pro-IL-1β、HIF-1α和磷酸化MAPK水平,并通过荧光探针检测ROS。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证免疫效应
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
脂多糖Invivogen--
IMDM培养基----
L929条件培养基----
RIPA裂解液Millipore--
PVDF膜Bio-Rad--
半干转印槽Bio-Rad--
ECL-Plus化学发光底物GE Healthcare--
Hyblot CL胶片Denville Scientific Inc--
磷酸化p38抗体Cell Signaling Technology--
磷酸化ERK1/2抗体Cell Signaling Technology--
磷酸化JNK抗体Cell Signaling Technology--
总ERK1/2抗体Cell Signaling Technology--
总JNK抗体Cell Signaling Technology--
β-肌动蛋白抗体Cell Signaling Technology--
总p38抗体Santa Cruz Biotechnology--
IL-1β抗体R&D Systems--
HIF-1α抗体Bioss Inc--
HRP标记的抗鼠IgG二抗Cell Signaling Technology--
HRP标记的抗兔IgG二抗Cell Signaling Technology--
HRP标记的抗山羊抗体Santa Cruz Biotechnology--
IL-1β ELISA试剂盒R&D Systems--
CM-H2DCFDA探针Invitrogen--
MitoSOX探针Invitrogen--
Synergy酶标仪Biotek--
Stat 60 RNA提取试剂Iso-Tex Diagnostics--
逆转录系统Promega--
iQ SYBR Green SupermixInvitrogen--
MX3000p实时荧光定量PCR仪Stratagene--
棘霉素----
SP600125----
SB203580----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与刺激
BMDMs分离来源(6-12周龄小鼠)、培养条件(IMDM、10% FBS、30% L929条件培养基)、细胞密度(2×10^6 cells/well)、LPS浓度(100 ng/mL)及刺激时间
阅读提示:Methods 2.2, Results 3.1
MAPK磷酸化检测
LPS刺激时间点(30min, 1h, 3h, 6h, 24h)、蛋白上样量(15 μg)、磷酸化抗体特异性
阅读提示:Methods 2.3, Results 3.2, Figure 2 legend
HIF-1α及PHDs表达检测
LPS刺激时间(1h for mRNA, 1-24h for protein)、qRT-PCR引物序列、内参基因(GAPDH)
阅读提示:Methods 2.6, Results 3.3, Figure 3 legend
ROS检测
探针浓度(CM-H2DCFDA 5 μM, MitoSOX 1 μM)、孵育时间(20 min)、LPS刺激时间(1h)、荧光读取波长
阅读提示:Methods 2.5, Results 3.4, Figure 4 legend
抑制剂处理
抑制剂浓度(Echinomycin 10 nM, SP600125 20 μM, SB203580 10 μM)、预处理时间(30 min)、LPS刺激时间(1h for mRNA, 3h for protein)
阅读提示:Methods 2.5, Results 3.5-3.7, Figure 5-7 legends