用AMD3100阻断缺氧诱导的CXCR4可抑制OA相关分解代谢介质IL-1β和MMP-13的产生

Blockade of hypoxia-induced CXCR4 with AMD3100 inhibits production of OA-associated catabolic mediators IL-1β and MMP-13.

作者信息Pengcui Li, Jin Deng, Xiaochun Wei, Chathuraka T Jayasuriya, Jingming Zhou, Qian Chen, Jianzhong Zhang, Lei Wei, Fangyuan Wei
PMID27356492
发布时间2016-08
DOI10.3892/mmr.2016.5419

实验完整度

高

实验包含细胞模型(人OA软骨细胞)和组织外植体模型,涵盖基因表达(RT-qPCR)、蛋白表达(Western blot)、酶活性(ELISA)、蛋白多糖降解(GAG释放)和炎症因子(IL-1β)等功能验证,并验证缺氧条件(HIF-1α)和药物抑制(AMD3100)。

主要模型

人OA软骨细胞原代培养 人OA软骨外植体培养

重点核对

细胞培养氧浓度:2% O2(缺氧)和5% O2(常氧) SDF-1处理浓度:40 ng/ml AMD3100预处理浓度:5 ng/ml,处理2小时 处理时间:两天 软骨外植体尺寸:1.0×1.0×0.2 cm,分为三部分

摘要

趋化因子基质细胞衍生因子-1(SDF-1)与其受体C-X-C趋化因子受体4(CXCR4)的结合导致受体激活,并随后释放基质金属蛋白酶(MMPs),这些MMPs有助于骨关节炎(OA)软骨降解。由于缺氧是软骨细胞微环境的一个决定性特征,本研究探讨了SDF-1在缺氧条件下诱导软骨降解的可能机制。为此,用CXCR4抑制剂AMD3100预处理的OA软骨细胞培养物和患者组织外植体与SDF-1一起孵育。研究发现,与常氧条件相比,缺氧条件显著提高了骨关节炎软骨细胞中CXCR4的表达。此外,SDF-1提高了MMP-13 mRNA水平和蛋白酶活性。它还提高了runt相关转录因子2的mRNA和蛋白水平,并诱导了糖胺聚糖和炎性细胞因子白细胞介素-1β的释放。相比之下,在用AMD3100预处理的细胞中,这些变化没有明显发生。本研究结果表明,即使在缺氧条件下,软骨细胞中CXCR4表达显著升高,AMD3100也能有效阻断该受体,保护软骨细胞免受OA诱导的分解代谢,提示成功抑制CXCR4可能是治疗OA的有效方法。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
在缺氧条件下,SDF-1/CXCR4信号通路如何促进软骨降解,以及CXCR4抑制剂AMD3100能否阻断这些分解代谢效应?
核心机制
缺氧上调OA软骨细胞中CXCR4表达,SDF-1结合CXCR4激活下游信号,上调Runx2和MMP-13,促进GAG释放和IL-1β产生,导致软骨基质降解;AMD3100通过阻断CXCR4抑制这些效应。
主要证据
人OA软骨细胞和软骨外植体实验显示,缺氧显著增加CXCR4表达;SDF-1剂量依赖性地增加MMP-13活性,并上调Runx2、MMP-13及GAG和IL-1β的释放;而AMD3100预处理显著抑制这些效应。
研究意义
本研究首次证明SDF-1刺激OA软骨外植体释放IL-1β,且AMD3100可消除该效应;提示通过AMD3100阻断SDF-1/CXCR4信号通路可能阻止OA进展,为开发软骨保护疗法提供潜在方向。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

缺氧条件下CXCR4表达验证

验证缺氧是否影响人OA软骨细胞中CXCR4的表达。

将人OA软骨细胞分别培养于2% O2(缺氧)和5% O2(常氧)条件下两天,通过RT-qPCR检测CXCR4 mRNA表达,通过Western blot检测HIF-1α蛋白表达,通过免疫细胞化学检测CXCR4蛋白定位和强度。

2

SDF-1诱导MMP-13表达和活性测定

检测SDF-1是否通过CXCR4信号调控MMP-13的表达和活性。

用不同浓度SDF-1(10、20、40、80 ng/ml)处理细胞两天,收集条件培养基进行ELISA检测MMP-13活性;另外用SDF-1(40 ng/ml)和/或AMD3100(5 ng/ml)预处理,通过RT-qPCR和ELISA检测MMP-13 mRNA和活性。

3

SDF-1对Runx2表达的影响

探讨SDF-1/CXCR4信号是否调节Runx2的表达。

用SDF-1(40 ng/ml)和/或AMD3100(5 ng/ml)处理细胞48小时,通过RT-qPCR和Western blot检测Runx2 mRNA和蛋白表达。

4

软骨外植体GAG释放检测

验证SDF-1是否促进软骨基质降解,并检测AMD3100的抑制作用。

将软骨外植体(1.0×1.0×0.2 cm)在2% O2下培养,分为三组:SDF-1(40 ng/ml)处理、AMD3100(5 ng/ml)预处理+SDF-1处理、无处理对照;培养两天后收集条件培养基,用DMMB法测定GAG含量。

5

软骨外植体IL-1β释放检测

检测SDF-1是否刺激软骨外植体释放炎症细胞因子IL-1β,并评估AMD3100的作用。

收集上述外植体培养液,用ELISA试剂盒检测IL-1β浓度。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Gibco--
链霉蛋白酶Roche Diagnostics--
细菌胶原酶IA型Sigma-Aldrich--
胎牛血清Gibco--
L-谷氨酰胺Invitrogen--
AMD3100ApexBio--
SDF-1GenScript--
抗CXCR4抗体R&D Systemsmab173
罗丹明标记的二抗R&D SystemsNL557
Hoechst染料----
Nikon E800显微镜Nikon--
牛硫酸软骨素Santa Cruz Biotechnology--
BCA蛋白测定试剂盒Thermo Fisher Scientific--
抗HIF-1α抗体Cell Signaling Technology3716
IRDye 680 IgGLI-COR Biosciences926-68071
抗Runx2抗体Biossbs-1134R
IRDye 800 CW IgGLI-COR Biosciences926-32211
抗β-肌动蛋白抗体Santa Cruz BiotechnologySC-1616
Odyssey红外成像系统LI-COR Biosciences--
RNeasy RNA提取试剂盒Qiagen--
iScript逆转录试剂Bio-Rad Laboratories--
QuantiTect SYBR Green PCR试剂盒Qiagen--
DNA Engine Opticon 2连续荧光检测系统MJ Research--
MMP-13 ELISA试剂盒GE Healthcare Life Sciences--
IL-1β ELISA试剂盒InvitrogenKMC0011C
酶标仪(Packard FluoroCount BF10000)Packard--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与缺氧处理
氧浓度:2%(缺氧)和5%(常氧);培养时间:两天;细胞密度:8孔板1×10^5细胞/孔或100mm培养皿1×10^6细胞/皿。
阅读提示:Materials and methods, Chondrocyte isolation and primary culture
药物处理
AMD3100浓度:5 ng/ml,预处理2小时;SDF-1浓度:40 ng/ml;处理时间:两天。
阅读提示:Materials and methods, Chondrocyte isolation and primary culture
基因表达检测
RT-qPCR引物序列、内参18S rRNA、PCR条件(预孵育50°C 2分钟,酶激活95°C 10分钟,40循环95°C 10秒、55°C 30秒、72°C 30秒)。
阅读提示:Materials and methods, Reverse transcription-quantitative polymerase chain reaction
蛋白表达检测
Western blot上样量40 µg,一抗稀释比,二抗稀释比,检测系统。
阅读提示:Materials and methods, Western blot analysis
软骨外植体培养
外植体尺寸:1.0×1.0×0.2 cm;分组:SDF-1(40 ng/ml)、AMD3100(5 ng/ml)预处理+SDF-1、对照;培养时间:两天;氧浓度:2% O2。
阅读提示:Materials and methods, Cartilage explant organ culture