动物模型建立与代谢表型分析
验证Nrf2通路激活对高脂饮食诱导的肥胖和糖尿病表型的影响。
将WT和Keap1-hypo小鼠分别喂食标准饮食或高脂饮食90天,测量体重、空腹血糖、胰岛素水平、肝脏脂质积累,并进行葡萄糖耐量和胰岛素耐量测试。
Keap1/Nrf2 pathway activation leads to a repressed hepatic gluconeogenic and lipogenic program in mice on a high-fat diet.
包含体内小鼠模型、原代肝细胞培养和分子机制验证(AMPK通路),并检测糖异生和脂肪生成相关基因及蛋白表达,证据层级独立。
Keap1-hypo小鼠(高脂饮食模型) 原代肝细胞培养(Keap1-hypo肝细胞)
Keap1-hypo小鼠:Keap1等位基因亚效突变,Nrf2通路激活 高脂饮食(HFD)处理90天,对照组为标准饮食(StD) 原代肝细胞培养:胶原酶灌注分离,基础态和诱导态(地塞米松+8-Br-cAMP)葡萄糖生成 AMPK信号通路检测:p-Ampkα-Thr172、p-Ampkβ1-Ser108、p-Torc2-Ser171 糖异生和脂肪生成酶表达:Pepck、G6pase、Fasn的mRNA和蛋白水平
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证Nrf2通路激活对高脂饮食诱导的肥胖和糖尿病表型的影响。
将WT和Keap1-hypo小鼠分别喂食标准饮食或高脂饮食90天,测量体重、空腹血糖、胰岛素水平、肝脏脂质积累,并进行葡萄糖耐量和胰岛素耐量测试。
检测Nrf2通路激活对肝脏糖异生和脂肪生成关键酶表达的影响。
通过qRT-PCR和Western blot检测肝脏中Pepck、G6pase和Fasn的mRNA及蛋白水平。
验证Nrf2通路激活对肝细胞葡萄糖生成能力的影响。
分离WT和Keap1-hypo小鼠原代肝细胞,在基础态和诱导态(地塞米松+8-Br-cAMP)下培养,测量培养基中葡萄糖浓度。
探究Nrf2通路激活对AMPK信号通路的影响及其与糖异生和脂肪生成抑制的关系。
通过Western blot检测肝脏和原代肝细胞中p-Ampkα-Thr172、p-Ampkβ1-Ser108、p-Torc2-Ser171和p-Acc1-Ser79的水平。
评估Keap1-hypo小鼠胰岛素信号和能量消耗是否改变。
通过门静脉注射胰岛素后检测肝脏Akt磷酸化,并使用间接测热法测量能量消耗和呼吸交换率。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | 标准饮食D-12450B | Research Diets | D-12450B |
| 高脂饮食D-12492 | Research Diets | D-12492 | |
| 代谢物测量 | 胰岛素ELISA试剂盒 | Mercodia | -- |
| 甘油三酯检测试剂盒 | Cayman Chemical | -- | |
| 胆固醇检测试剂盒 | Cayman Chemical | -- | |
| NEFA-HR试剂盒 | Wako Chemicals | -- | |
| 原代肝细胞培养 | 胶原酶A | Roche | -- |
| 蛋白质印迹 | 磷酸化Akt (Ser473)抗体 | Cell Signaling | 4060 |
| 磷酸化Akt (Thr308)抗体 | Cell Signaling | 2965 | |
| 总Akt抗体 | Cell Signaling | 4691 | |
| 磷酸化AMPKα (Thr172)抗体 | Cell Signaling | 2535 | |
| AMPKα抗体 | Cell Signaling | 2603 | |
| 磷酸化AMPKβ1 (Ser108)抗体 | Cell Signaling | 4181 | |
| AMPKβ1/2抗体 | Cell Signaling | 4150 | |
| 磷酸化Torc2 (Ser171)抗体 | Bioss | BS-3415R | |
| 磷酸化ACC (Ser79)抗体 | Cell Signaling | 3661 | |
| ACC抗体 | Cell Signaling | 3676 | |
| GAPDH抗体 | Novus Biologicals | NB300-221 | |
| NQO1抗体 | Abcam | Ab80588 | |
| Nrf2抗体 | Ken Itoh | -- | |
| PEPCK抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-74823 | |
| FASN抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-48357 | |
| RNA提取 | Trizol试剂 | Life Technologies | -- |
| RNeasy试剂盒 | Qiagen | -- | |
| cDNA合成 | qScript系统 | Quanta BioSciences | -- |
| qRT-PCR | iQ SYBR green预混液 | Biorad | -- |
| iCycler-MyIQ实时PCR仪 | Biorad | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型与饮食 | 小鼠品系(C57BL6J WT,Keap1-hypo),性别(雄性),年龄(2月龄),饮食类型(StD和HFD),饮食持续时间(90天),饮食成分(10%和60%脂肪),饲养环境(12小时光暗循环) 阅读提示:Methods 2.1 Mice |
| 代谢表型分析 | 空腹血糖、胰岛素、甘油三酯、胆固醇、NEFA等测量方法,葡萄糖耐量试验(1 g/kg葡萄糖腹腔注射),胰岛素耐量试验(0.75 U/kg胰岛素腹腔注射) 阅读提示:Methods 2.4 Measurements of metabolites, 2.3 Evaluation of insulin sensitivity |
| 原代肝细胞培养和葡萄糖生成 | 肝细胞分离方法(EGTA、胶原酶A),培养条件(胶原包被板,细胞密度600,000/孔),基础态和诱导态培养基成分,葡萄糖生成测定时间(200分钟) 阅读提示:Methods 2.5 Primary hepatocyte culture and in vitro gluconeogenesis |
| AMPK信号通路检测 | Western blot抗体和稀释比例,蛋白提取方法,肝脏或细胞裂解液制备 阅读提示:Methods 2.6 Protein preparation and immunoblot analyses, Table 1 |
| 体内胰岛素信号 | 门静脉注射胰岛素剂量(10 IU/kg),注射时间点,肝活检时间点(注射前后5分钟) 阅读提示:Methods 2.3 Evaluation of insulin sensitivity, Figure 5A |