松果菊苷通过诱导氧化性DNA损伤在人SW480结直肠癌细胞中诱导凋亡

Echinacoside Induces Apoptosis in Human SW480 Colorectal Cancer Cells by Induction of Oxidative DNA Damages.

作者信息Liwei Dong, Debin Yu, Nuoting Wu, Hongge Wang, Jiajing Niu, Ye Wang, Zhihua Zou
PMID26132569
发布时间2015-06-29
DOI10.3390/ijms160714655

实验完整度

高

包含体外细胞增殖、凋亡、细胞周期、DNA损伤及线粒体膜电位等多层级功能与机制验证,证据链完整。

主要模型

人SW480结直肠癌细胞 人SK-HEP-1肝癌细胞 人MCF-7乳腺癌细胞

重点核对

细胞系:人SW480结直肠癌细胞(ATCC) 药物处理浓度:60和80 μM 松果菊苷 处理时间:24小时 对照:0.01% DMSO 统计:三次独立实验,p < 0.05 显著性

摘要

松果菊苷是一种具有强效活性氧(ROS)清除和抗氧化生物活性的天然化合物,可保护细胞免受氧化损伤。由于癌细胞通常处于强烈的氧化应激状态,因此我们测试了松果菊苷处理是否会促进癌症发展。令人惊讶的是,我们发现松果菊苷显著抑制了一系列癌细胞系的生长和增殖。用松果菊苷处理人SW480癌细胞导致明显的凋亡和细胞周期阻滞,同时活性caspase 3和裂解PARP显著增加,G1/S-CDK阻滞剂CDKN1B(p21)上调。有趣的是,对药物处理的癌细胞进行免疫细胞化学检查显示,松果菊苷导致细胞内氧化鸟嘌呤8-oxoG显著增加,以及双链DNA断裂(DSB)结合蛋白53BP1的显著上调,表明松果菊苷通过诱导氧化性DNA损伤在SW480癌细胞中诱导细胞周期阻滞和凋亡。这些结果确立了松果菊苷作为开发抗癌药物的新型化学支架。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
松果菊苷是否通过其抗氧化活性影响癌细胞生长?
核心机制
松果菊苷通过诱导氧化性DNA损伤(增加8-oxoG和53BP1)导致SW480癌细胞G1期阻滞和caspase依赖性凋亡,涉及线粒体固有凋亡途径。
主要证据
MTT和集落形成实验证明增殖抑制;流式细胞术检测细胞周期阻滞;Annexin V-FITC/PI染色、JC-1染色和Western blot证实凋亡及线粒体途径;免疫染色显示8-oxoG和53BP1增加。
研究意义
确立松果菊苷作为新型抗癌药物开发化学支架。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

细胞活力检测

评估松果菊苷对多种癌细胞系增殖的影响

用50 μM松果菊苷处理人SK-HEP-1、MCF-7和SW480细胞,MTT法检测活力;对SW480细胞用25-95 μM处理24和48小时,计算IC50。

2

集落形成实验

验证松果菊苷对SW480细胞增殖的长期抑制作用

用60和80 μM松果菊苷处理SW480细胞10天,结晶紫染色并定量。

3

细胞周期分析

确定松果菊苷对SW480细胞周期分布的影响

用60和80 μM松果菊苷处理24小时,PI染色,流式细胞术分析G1、S、G2/M期比例。

4

蛋白质表达检测

检测细胞周期和凋亡相关蛋白的表达变化

Western blot检测CDKN1B(p21)、caspase 3、PARP、Bax、Bcl-2、cytochrome c。

5

凋亡检测

验证松果菊苷是否诱导细胞凋亡

DAPI染色观察核形态;Annexin V-FITC/PI双染流式细胞术定量凋亡细胞比例。

6

线粒体膜电位检测

评估松果菊苷对线粒体膜电位的影响,验证内在凋亡途径

JC-1染色观察红绿荧光变化,反映膜电位丧失。

7

氧化DNA损伤检测

检测松果菊苷是否诱导氧化性DNA损伤

免疫染色检测8-oxoG和53BP1灶点,并测量ROS水平(DCFH-DA)。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

细胞活性与增殖检测
细胞周期分析
线粒体功能检测
DNA损伤检测
ROS检测

产品清单

实验环节名称品牌货号
杜氏改良Eagle培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
青霉素-链霉素Sigma-Aldrich--
松果菊苷Yuanye Biotechnology--
二甲基亚砜Sigma-Aldrich--
MTT(3-(4,5-二甲基噻唑-2-基)-2,5-二苯基四唑溴化物)Invitrogen--
BioRad 680酶标仪BioRad--
结晶紫Sigma-Aldrich--
4,6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI)Sigma-Aldrich--
VECTASHIELD封片剂Vector Laboratories--
胰蛋白酶Invitrogen--
核糖核酸酶ASigma--
碘化丙啶(PI)Roche--
Annexin V-FITC凋亡检测试剂盒Bestbio--
兔抗53BP1抗体Bethyl LaboratoriesA300-272A
Cy3标记的山羊抗兔二抗Jackson ImmunoResearch Laboratories--
Alexa 488标记的亲和素Invitrogen--
RIPA裂解液Sigma--
BCA蛋白定量试剂盒Dingguo--
PVDF膜Millipore--
Bcl-2抗体Santa Cruz Biotechnologysc-492
Bax抗体Santa Cruz Biotechnologysc-493
细胞色素c抗体Santa Cruz Biotechnologysc-7159
p21抗体Abcamab109520
caspase 3抗体Abcamab32042
PARP抗体Biossbs-2318R
辣根过氧化物酶标记的二抗Jackson ImmunoResearch Laboratories--
ECL Western blot检测试剂盒Transgen Biotech--
成像仪(Tanon)Tanon--
细胞ROS检测试剂盒Beyotime BiotechnologyS0033
二氯荧光素二乙酸酯(DCFH-DA)----
JC-1染料Beyotime BiotechnologyC2006
FACSCalibur流式细胞仪BD Biosciences--
奥林巴斯荧光显微镜Olympus--
Zeiss LCM 510共聚焦显微镜Carl Zeiss--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系:SW480;培养基:DMEM,10% FBS,1%青霉素-链霉素;37°C,5% CO2
阅读提示:Methods 3.1
药物处理
Echinacoside浓度(60, 80 μM等)、DMSO对照(0.01%)、处理时间(24h等)
阅读提示:Methods 3.1及结果部分
MTT实验
细胞接种密度(1×10^4/孔)、处理时间(24/48h)、MTT浓度(5 mg/mL)、孵育时间(4h)、检测波长(570nm)
阅读提示:Methods 3.2
集落形成实验
细胞密度(1×10^4/孔)、处理时间(10天)、结晶紫染色及定量方法(70%乙醇溶解,595nm)
阅读提示:Methods 3.3
细胞周期分析
细胞密度、处理时间(24h)、PI染色浓度(10 μg/mL)、RNase A处理、流式分析
阅读提示:Methods 3.5
凋亡分析
Annexin V-FITC和PI用量(各5 μL)、孵育时间(15min)、流式分析
阅读提示:Methods 3.6
免疫荧光染色(53BP1)
一抗稀释比例(1:1000)、二抗稀释比例(1:500)、孵育时间(2h/1h)
阅读提示:Methods 3.7
8-oxoG检测
Alexa 488-avidin浓度(0.5 μg/mL)、染色时间(1h)、显微镜分析
阅读提示:Methods 3.8
Western blot
一抗稀释比例及货号(如p21 ab109520等)、二抗、ECL检测
阅读提示:Methods 3.9
ROS检测
DCFH-DA浓度(10 μM)、孵育时间(30min)、流式分析
阅读提示:Methods 3.10
线粒体膜电位检测
JC-1孵育时间(20min)、荧光显微镜观察
阅读提示:Methods 3.11
统计分析
单因素方差分析,p<0.05,数据表示mean ± SD
阅读提示:Methods 3.12