MSCs和CPCs的分离与表征
验证MSCs和CPCs的干细胞特性和多向分化潜能
从成年大鼠骨髓分离MSCs,通过贴壁和Percoll密度梯度离心;从心脏分离cKit+ CPCs。用流式细胞术检测表面标志物(cKit、CD73、CD90、CD105、CD34、CD45),并通过三系分化实验(成脂、成骨、成软骨)验证MSCs的多能性。
Oxidative stress-induced Notch1 signaling promotes cardiogenic gene expression in mesenchymal stem cells.
包含细胞模型(MSCs和CPCs),体外氧化应激处理,基因和蛋白表达检测,Notch信号抑制和siRNA敲低,以及PCR阵列分析,进行功能验证和机制验证。
大鼠骨髓间充质干细胞(MSCs) 大鼠心脏祖细胞(CPCs)
H2O2处理浓度:100 μM,处理1周 GOX处理浓度:5 mU/ml,处理48小时 Notch信号抑制:γ-分泌酶抑制剂DAPT(10 μM)处理1周 Notch1敲低:siNotch1(25 nM)转染48小时 基因表达归一化:H2O2处理实验使用GAPDH,GOX处理实验使用18S
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证MSCs和CPCs的干细胞特性和多向分化潜能
从成年大鼠骨髓分离MSCs,通过贴壁和Percoll密度梯度离心;从心脏分离cKit+ CPCs。用流式细胞术检测表面标志物(cKit、CD73、CD90、CD105、CD34、CD45),并通过三系分化实验(成脂、成骨、成软骨)验证MSCs的多能性。
探究H2O2或GOX处理对MSCs和CPCs心脏、内皮和平滑肌基因表达的影响
用不同浓度H2O2(0-100 μM)处理1周或GOX(0-5 mU/ml)处理48小时,然后通过qRT-PCR检测心脏(nkx2-5、αMHC)、内皮(Flt1、vWF、PECAM1)、平滑肌(sm α-actin、sm22α)和成纤维细胞(vimentin)标志物表达。
确定氧化应激是否调节Notch1及其下游靶标表达
通过qRT-PCR检测Notch1、Jagged1、Hes5、Hey1 mRNA表达,通过Western blot检测NICD蛋白水平,并使用PCR阵列分析Notch1相关基因(包括Wnt11)的表达。
确定H2O2是否通过Notch1信号调控心脏、内皮和平滑肌基因表达
使用γ-分泌酶抑制剂DAPT(10 μM)阻断Notch1激活,在有无H2O2处理下检测αMHC、Flt1、sm α-actin、sm22α表达;使用siNotch1敲低Notch1,检测GOX处理下的类似基因表达变化。
确认mRNA水平变化是否转化为蛋白水平变化
通过流式细胞术检测GOX处理MSCs后αMHC、Flt1和sm α-actin的蛋白表达。
检验氧化应激对心脏基因表达的影响是否仅限于MSCs
用5 mU/ml GOX处理CPCs 48小时,检测Notch1、Hes5、Flt1、vWF、nkx2-5和sm22α基因表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | α-MEM培养基 | Hyclone | -- |
| 胎牛血清 | Hyclone | -- | |
| L-谷氨酰胺 | Cellgro | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Invitrogen | -- | |
| 胰岛素/转铁蛋白/硒 | 未明确说明 | -- | |
| 药物处理 | 过氧化氢 | Fisher Scientific | -- |
| 葡萄糖氧化酶 | Sigma | -- | |
| 细胞培养(三系分化) | 成脂培养基 | Amsbio | SR811D250 |
| 成骨培养基 | Amsbio | SR417D250 | |
| 成软骨培养基 | Vitro Biopharma | SC00B5-2 | |
| 染色实验 | 油红O | Sigma | O0625 |
| 茜素红 | RiccaChem | 500-4 | |
| 甲苯胺蓝O | Sigma | 198161-5G | |
| 细胞分离 | 抗cKit抗体 | Santa Cruz | H-300 |
| 磁珠(Dynal) | Dynal | -- | |
| 流式分析 | FACSCalibur流式细胞仪 | Becton Dickinson | -- |
| 抗c-kit抗体 | Santa Cruz | H-300 | |
| 抗CD45抗体 | Invitrogen | -- | |
| 抗CD34抗体 | Santa Cruz | sc-7324 | |
| 抗CD73抗体 | BD Pharmingen | 551123 | |
| 抗CD90抗体 | BD Pharmingen | 554898 | |
| 抗CD105抗体 | Bioss | bs-0579R | |
| 抗nkx2-5抗体 | Santa Cruz | sc-14033 | |
| 抗gata4抗体 | Santa Cruz | sc-9053 | |
| 基因表达分析 | QIA RNeasy试剂盒 | Qiagen | -- |
| StepOne Plus实时PCR系统 | Applied Biosystems | -- | |
| 蛋白表达分析 | 抗α-MHC抗体 | Abcam | ab50967 |
| 抗Flt1抗体 | Abcam | ab32152 | |
| 抗平滑肌α-肌动蛋白抗体 | Sigma | SAB250093 | |
| Western blot | 4-15% SDS-PAGE梯度凝胶 | Bio-Rad | -- |
| 抗Notch胞内域抗体 | Cell Signaling | -- | |
| HRP标记的山羊抗兔二抗 | Bio-Rad | -- | |
| 柯达成像站4000 MM Pro | Carestream Molecular Imaging | -- | |
| 抗GAPDH抗体 | Santa Cruz | -- | |
| 药物处理(Notch抑制) | γ-分泌酶抑制剂IX DAPT | Calbiochem | -- |
| siRNA转染 | Oligofectamine转染试剂 | Life Technologies | -- |
| HiPerfect转染试剂 | Qiagen | -- | |
| Lipofectamine RNAimax转染试剂 | Life Technologies | -- | |
| Cy3标记的对照siRNA | -- | -- | |
| Allstar阴性对照siRNA | Qiagen | -- | |
| Notch1 siRNA | Qiagen | S101920730 | |
| PCR阵列 | 大鼠Notch PCR阵列PARN-059A | Qiagen | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| MSCs分离与培养 | 大鼠品系及性别、年龄;分离方法(Percoll密度梯度离心);培养基(MEMα,20%FBS,L-谷氨酰胺,青霉素-链霉素);传代代数(2-4代) 阅读提示:Materials and Methods: Mesenchymal stem cell isolation |
| 氧化应激处理 | H2O2浓度(0-100 μM),处理时间(1周),培养基(无血清含ITS),每日换液;GOX浓度(0-5 mU/ml),处理时间(48小时),培养基(含葡萄糖浓度) 阅读提示:Materials and Methods: Induction of oxidative stress in MSCs and CPCs |
| 基因表达检测 | RNA提取试剂盒;cDNA合成;qRT-PCR平台;引物序列(见附加文件);内参基因选择(H2O2实验GAPDH,GOX实验18S) 阅读提示:Materials and Methods: Gene expression; Additional file 1 Table S1 |
| 蛋白表达检测 | 流式细胞术抗体及浓度(1:300 primary, 1:500 secondary);Western blotting凝胶(4-15%梯度),NICD抗体,内参(GAPDH) 阅读提示:Materials and Methods: Protein expression, Measurement of Notch intracellular domain |
| Notch信号抑制 | DAPT浓度(10 μM),处理频率(每天),持续时间(1周);siNotch1序列、浓度(25 nM)、转染试剂(oligofectamine),转染时间(48小时) 阅读提示:Materials and Methods: Chemical inhibition of Notch signaling, siRNA-mediated knockdown of Notch1 |