动物模型验证
检测肝纤维化组织中Hif-1α的表达及其与HSC活化的关联。
BALB/c小鼠感染日本血吸虫尾蚴,6周后取肝脏,用Western blot和免疫组化检测Hif-1α和α-SMA表达,并用HE染色观察炎症和肉芽肿。
Hypoxia-inducible factor-1alpha and MAPK co-regulate activation of hepatic stellate cells upon hypoxia stimulation.
结合动物模型(日本血吸虫感染小鼠)、体外细胞系缺氧刺激、siRNA敲低和抑制剂处理,涵盖功能验证与机制验证。
日本血吸虫感染的BALB/c小鼠动物模型 HSC-T6大鼠肝星状细胞系(1% O2缺氧刺激)
BALB/c小鼠感染日本血吸虫尾蚴(每只25条)后6周收集肝脏,感染组与对照组各3只 HSC-T6细胞培养于1% O2,检测F-肌动蛋白重组、vimentin和α-SMA表达升高 HSC-T6细胞转染Hif-1α siRNA(100 nM)或非特异性siRNA(NS),在1% O2下培养48小时 PD98059(50 µM,MEK1抑制剂)预处理1小时后,在1% O2下培养15分钟
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
检测肝纤维化组织中Hif-1α的表达及其与HSC活化的关联。
BALB/c小鼠感染日本血吸虫尾蚴,6周后取肝脏,用Western blot和免疫组化检测Hif-1α和α-SMA表达,并用HE染色观察炎症和肉芽肿。
评估1% O2对HSC-T6细胞活化标志物的影响。
HSC-T6细胞在1% O2下培养,观察细胞形态变化,通过免疫细胞化学和Western blot检测F-肌动蛋白、vimentin和α-SMA的表达。
验证Hif-1α对缺氧诱导的HSC活化和促纤维化功能的影响。
用Hif-1α特异siRNA转染HSC-T6细胞,在1% O2下培养,检测活化标志物(vimentin、α-SMA)的表达,检测IL-6、TGF-β和CTGF的mRNA水平以及胶原I的分泌。
探讨MAPK信号通路对Hif-1α活性(泛素化和核转位)的调控作用。
用PD98059预处理HSC-T6细胞,然后暴露于1% O2,通过Western blot检测Hif-1α和磷酸化MAPK,通过免疫沉淀和Western blot检测Hif-1α泛素化,并分离细胞质和核组分检测Hif-1α分布。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 杜氏改良Eagle培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素 | -- | -- | |
| 链霉素 | -- | -- | |
| 药物处理 | PD98059 | Beyotime | S1805 |
| siRNA转染 | Hif-1α siRNA | Santa-Cruz | sc-45919 |
| 非特异性siRNA | -- | -- | |
| Lipofectamine 2000转染试剂 | Invitrogen | -- | |
| 蛋白提取 | 裂解缓冲液 | -- | -- |
| 蛋白定量 | Bio-Rad蛋白质定量试剂盒 | Bio-Rad | -- |
| Western blot | Hif-1α抗体 | Epitomics | 2015-1 |
| 波形蛋白抗体 | Bioss | bs-0756R | |
| α-SMA抗体 | Sigma | A7607 | |
| 磷酸化MAPK抗体 | Epitomics | 2219-1 | |
| GAPDH抗体 | Kangchen | KC-5G5 | |
| H2AFX抗体 | Proteintech | 10856-1-AP | |
| β-肌动蛋白抗体 | Santa-Cruz | sc-47778 | |
| ELISA | I型胶原酶联免疫吸附试剂盒 | Biovalue | 50R-E.1055R |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| 逆转录 | ReverTra Ace qPCR逆转录试剂盒 | TOYOBO | -- |
| qPCR | Platinum SYBR Green qPCR SuperMix UDG试剂盒 | Invitrogen | -- |
| MyiQ实时荧光定量PCR检测系统 | Bio-Rad | -- | |
| 免疫细胞化学 | 波形蛋白抗体 | Epitomics | 2707-1 |
| FITC-鬼笔环肽偶联物 | Sigma | P2141 | |
| 抗淬灭封片剂 | Beyotime | -- | |
| 奥林巴斯BX51荧光显微镜 | Olympus | -- | |
| 免疫沉淀 | Hif-1α抗体 | Santa-Cruz | sc-53546 |
| 蛋白A-琼脂糖珠 | Amersham Pharmacia Biotechnology | -- | |
| 泛素抗体 | Epitomics | 6686-1 | |
| 免疫组化 | Hif-1α一抗 | Abgent | AP7759c |
| 多聚过氧化物酶-抗兔IgG | DAKO | -- | |
| 苏木素 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 小鼠品系(BALB/c雌性)、周龄(6-8周)、感染尾蚴数量(25条)、感染途径(经腹部皮肤)、感染时长(6周)、对照组设置(未感染)、样本数(每3只) 阅读提示:Materials and Methods: Animals; Figure 1 legend |
| 细胞培养与缺氧刺激 | 细胞系(HSC-T6)、培养基(DMEM+10%FBS+100U/ml青霉素+100µg/ml链霉素)、缺氧浓度(1% O2)、培养时间(24h、48h) 阅读提示:Materials and Methods: Cell culture, inhibitor treatment and hypoxia stimulation; Figures 2-3 |
| siRNA转染 | 细胞密度(2×10^5/well)、转染试剂(Lipofectamine 2000)、siRNA浓度(100 nM)、转染时间(18小时)、缺氧处理时间(48小时) 阅读提示:Materials and Methods: siRNA transfection; Figures 4-5 |
| MAPK抑制 | PD98059浓度(50 µM)、预处理时间(1小时)、缺氧处理时间(15分钟) 阅读提示:Materials and Methods: Cell culture, inhibitor treatment and hypoxia stimulation; Figure 6 |