白细胞介素-18增强IL-18R/Nox1结合,并介导TRAF3IP2依赖的平滑肌细胞迁移:辛伐他汀的抑制作用

Interleukin-18 enhances IL-18R/Nox1 binding, and mediates TRAF3IP2-dependent smooth muscle cell migration. Inhibition by simvastatin.

作者信息Anthony J Valente, Tadashi Yoshida, Reza Izadpanah, Patrice Delafontaine, Ulrich Siebenlist, Bysani Chandrasekar
PMID23541442
发布时间2013-06
DOI10.1016/j.cellsig.2013.03.007

实验完整度

实验包含体外培养的人冠状动脉平滑肌细胞、TRAF3IP2基因敲除小鼠来源的平滑肌细胞,并通过基因敲低、过表达、药物干预等手段进行了细胞迁移、分子表达、信号通路活化和蛋白相互作用等功能与机制验证。

主要模型

人冠状动脉平滑肌细胞 TRAF3IP2基因敲除小鼠颈动脉平滑肌细胞 小鼠颈动脉平滑肌细胞(野生型)

重点核对

IL-18浓度:1 ng/ml TRAF3IP2 shRNA(MOI 0.5,48小时) Nox1 shRNA(MOI 100,48小时) 辛伐他汀浓度:2.5 μM Rac1抑制剂NSC23766(30 μM,3小时)

摘要

我们研究了TRAF3相互作用蛋白2(TRAF3IP2),一种氧化还原敏感的接头蛋白和IKK与JNK的上游调节因子,在白细胞介素(IL)-18诱导的平滑肌细胞迁移中的作用,以及辛伐他汀对其抑制的机制。多效性细胞因子IL-18通过诱导TRAF3IP2诱导人冠状动脉平滑肌细胞迁移。IL-18诱导Nox1依赖性活性氧产生、TRAF3IP2表达以及IKK/NF-κB和JNK/AP-1活化。IL-18诱导其自身表达及其受体亚基IL-18Rα的表达。通过co-IP/IB和GST pull-down实验,我们首次证明IL-18R异二聚体的亚基在基础条件下与Nox1物理结合,而IL-18似乎增强了它们的结合。重要的是,HMG-CoA还原酶抑制剂辛伐他汀减弱了IL-18诱导的TRAF3IP2表达。这些抑制作用可被甲羟戊酸和香叶基香叶基焦磷酸(GGPP)逆转,但不能被法尼基焦磷酸(FPP)逆转。有趣的是,辛伐他汀、GGPP、FPP或Rac1抑制并未调节外源性表达的TRAF3IP2。IL-18的促迁移作用通过TRAF3IP2以氧化还原敏感的方式介导,这可能涉及IL-18R/Nox1的物理结合。此外,辛伐他汀抑制可诱导的而非外源性表达的TRAF3IP2。靶向TRAF3IP2可能阻止体内增生性血管疾病的进展。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
IL-18诱导平滑肌细胞迁移的机制以及辛伐他汀的抑制作用是否通过TRAF3IP2介导,以及TRAF3IP2在其中的角色。
核心机制
IL-18通过IL-18R与Nox1的物理结合,增强Nox1/Rac1/ROS介导的TRAF3IP2转录表达,进而激活IKK/NF-κB和JNK/AP-1信号通路,促进平滑肌细胞迁移;辛伐他汀通过抑制Rac1活化减少ROS产生,从而抑制IL-18诱导的TRAF3IP2表达,但不影响外源性过表达的TRAF3IP2。
主要证据
IL-18诱导SMC迁移,依赖于TRAF3IP2(使用shRNA敲低和TRAF3IP2敲除小鼠的SMC验证);IP/IB和GST pull-down实验证实IL-18R亚基与Nox1结合;Nox1敲低或显性负性Rac1突变体抑制IL-18诱导的ROS产生、TRAF3IP2表达和迁移;辛伐他汀抑制Rac1活性、ROS产生、TRAF3IP2表达和迁移。
研究意义
指出TRAF3IP2可能是增生性血管疾病的潜在治疗靶点,靶向IL-18/TRAF3IP2信号可能有助于阻止体内血管增生性疾病的进展。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证TRAF3IP2在IL-18诱导的SMC迁移中的作用

确定TRAF3IP2是否介导IL-18诱导的平滑肌细胞迁移

使用TRAF3IP2 shRNA敲低人冠状动脉SMC中的TRAF3IP2,以及分离自TRAF3IP2敲除小鼠和野生型小鼠的颈动脉SMC,进行迁移实验。

2

验证TRAF3IP2依赖的NF-κB和AP-1激活

检测IL-18是否通过TRAF3IP2激活IKK/NF-κB和JNK/AP-1信号通路

用TRAF3IP2 shRNA敲低SMC后,用IL-18处理,通过免疫印迹和体外激酶实验检测IKK和JNK的磷酸化及活性,以及p65和c-Jun的磷酸化和核转位。

3

验证Nox1/Rac1/ROS在IL-18诱导的TRAF3IP2表达和SMC迁移中的作用

确定Nox1、Rac1和ROS是否参与IL-18诱导的TRAF3IP2表达和迁移

使用Nox1 shRNA、显性负性Rac1突变体、DPI、Tiron和CuZnSOD处理SMC,检测超氧化物生成和TRAF3IP2表达。

4

验证IL-18R与Nox1的物理结合

检测IL-18受体是否与Nox1蛋白结合,以及IL-18处理是否增强该结合

通过免疫共沉淀和GST pull-down实验,使用SMC膜组分和重组蛋白,检测IL-18Rα、IL-18Rβ与Nox1的相互作用。

5

验证IL-18的自我调节和IL-18Rα上调

确定IL-18是否诱导自身及IL-18Rα表达,且是否依赖TRAF3IP2

用IL-18处理SMC,通过RT-qPCR、免疫印迹和ELISA检测IL-18 mRNA、蛋白和分泌水平,以及IL-18Rα的表达,并用TRAF3IP2 shRNA敲低验证其依赖性。

6

评估辛伐他汀对TRAF3IP2表达和SMC迁移的影响

测试辛伐他汀是否抑制IL-18诱导的TRAF3IP2表达和SMC迁移,及其机制

用不同浓度辛伐他汀预处理SMC,然后加入IL-18,检测TRAF3IP2表达、Rac1活性、超氧化物生成、MMP9激活和细胞迁移。并验证甲羟戊酸、GGPP等对辛伐他汀作用的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
SmGM-2培养基Clonetics Corp.--
DMEM/F12培养基----
辛伐他汀EMD4 Biosciences#567021
NSC23766(Rac1抑制剂)EMD4 Biosciences#553502
重组人IL-18R&D Systems#B001-5
重组小鼠IL-18R&D Systems#B004-2
IL-18中和抗体R&D Systems#D044-3
IL-18Rα抗体R&D Systems#AF840
人IL-18 ELISA试剂盒R&D Systems#7620
TRAF3IP2抗体Imgenex#IMG-563
Nox1抗体Sigma-Aldrich#SAB4200097
SAPK/JNK激酶检测试剂盒Cell Signaling Technology#8794
磷酸化JNK抗体Cell Signaling Technology#9251
BD BioCoat Matrigel侵袭小室BD Biosciences#354481
Matrigel基质胶BD Biosciences--
Neon转染系统InvitrogenMPK-5000
聚凝胺Santa Cruz Biotechnology#sc-134220
IL-18结合蛋白-Fc----
Tiron(超氧化物清除剂)----
DPI(黄素蛋白抑制剂)----
甲羟戊酸----
香叶基香叶基焦磷酸----
法尼基焦磷酸----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
人冠状动脉SMC来源、培养基SmGM-2, 血清饥饿条件(0.5% BSA, 48小时)
阅读提示:Materials and Methods: Cell Culture
动物模型
TRAF3IP2敲除小鼠(C57Bl/6背景)
阅读提示:Materials and Methods: Isolation and culture of carotid artery SMC
细胞刺激
IL-18浓度(1 ng/ml)和处理时间(迁移实验18小时,TRAF3IP2表达3小时等)
阅读提示:Figure legends 1-6
基因敲低
TRAF3IP2 shRNA、Nox1 shRNA、IKKβ shRNA等MOI及处理时间
阅读提示:Materials and Methods: Adenoviral vectors, lentiviral shRNA particles, and siRNA
药物处理
辛伐他汀浓度(2.5 μM)和预处理时间(3小时)
阅读提示:Figure legend 5A
迁移实验
细胞数(2×10^5/ml)、Matrigel包被、处理时间(18小时)、检测方法(MTT)
阅读提示:Materials and Methods: Cell migration