FL-NI的合成与表征
制备共载NIN和siIL11、修饰FAP靶向肽的pH响应脂质体,并评估其理化性质。
采用薄膜分散法制备空白阳离子脂质体,通过后插入法偶联DSPE-PEOz-FAP,负载NIN和siIL11形成FL-NI,利用DLS、TEM、UV-vis等表征粒径、电位、包封率、稳定性及对siRNA的保护作用。
Inhalable myofibroblast targeting nanoparticles for synergistic treatment of pulmonary fibrosis.
包含体外细胞实验(MEFs)、体内动物模型(BLM诱导、重复BLM和老年小鼠模型)、RNA-seq及免疫微环境分析,并进行了功能验证和机制验证。
小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs) 博来霉素(BLM)诱导的肺纤维化小鼠模型 重复BLM诱导的肺纤维化小鼠模型 老年小鼠肺纤维化模型
FL-NI中FAP靶向肽与活化成纤维细胞的特异性结合 pH响应性PEOz促进内涵体逃逸,siRNA能否有效释放 吸入给药后肺部沉积效率 NIN和siIL11的给药剂量:1 mg/kg,每两天一次,经气管内滴注 BLM诱导模型:单次气管内注射2 USP/kg
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
制备共载NIN和siIL11、修饰FAP靶向肽的pH响应脂质体,并评估其理化性质。
采用薄膜分散法制备空白阳离子脂质体,通过后插入法偶联DSPE-PEOz-FAP,负载NIN和siIL11形成FL-NI,利用DLS、TEM、UV-vis等表征粒径、电位、包封率、稳定性及对siRNA的保护作用。
验证FAP靶向肽介导的脂质体对活化成纤维细胞的特异性摄取及PEOz介导的内涵体逃逸能力。
以正常和活化MEFs为模型,比较L-siRNA与FL-siRNA的细胞摄取效率,用FAP抗体阻断验证靶向性;用LysoTracker Red标记内涵体/溶酶体,观察L-siRNA与LPEG-siRNA的共定位情况。
评价FL-NI对TGF-β1诱导的成纤维细胞活化和迁移的抑制作用。
用TGF-β1活化的MEFs与不同脂质体(L-N、L-I、L-NI、FL-NI)共培养,通过免疫荧光、Western blot和qPCR检测α-SMA和COL1A1的表达;通过transwell和划痕实验评估细胞迁移能力。
评估FL-siRNA经吸入给药后在肺部的沉积效率及对肌成纤维细胞的靶向性。
通过肺部喷雾针给小鼠吸入Cy5标记的siRNA制剂,24小时后用IVIS成像观察主要器官荧光分布,并通过肺组织冰冻切片免疫荧光和流式细胞术分析Cy5阳性细胞在不同细胞亚群中的比例。
在BLM诱导的肺纤维化小鼠模型中评价FL-NI的治疗效果。
建立BLM诱导的PF小鼠模型,分组后经气管内滴注给予不同制剂,监测体重变化,治疗后评估肺组织形态、羟脯氨酸含量、Ashcroft评分、组织学染色(H&E、Masson、Van Gieson)、免疫组化(COL1A1、α-SMA、FN1)及免疫荧光(SFTPC)等指标。
揭示FL-NI抗纤维化的分子机制及其对肺组织免疫微环境的影响。
对正常、BLM和FL-NI组小鼠肺组织进行RNA-seq,分析差异表达基因、KEGG和GO富集;用ELISA检测TNF-α、IL-6、IL-1β水平;用流式细胞术分析肺组织免疫细胞亚群(如巨噬细胞、中性粒细胞、MDSCs)。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 纳米颗粒合成 | DOTAP | Weihua Biotechnology | -- |
| 胆固醇 | Weihua Biotechnology | -- | |
| 尼达尼布 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 硫酸鱼精蛋白 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 透明质酸 | Sigma-Aldrich | -- | |
| FAP靶向肽(DRGETGPAC) | Jiangsu Jitai Technology | -- | |
| DSPE-PEOz2k-MAL | Weihua Biotechnology | -- | |
| 表征 | Zetasizer Nano ZS | Malvern Instrument | -- |
| 透射电子显微镜 | FEI Tecnai 20 | -- | |
| 体外实验 | 转化生长因子-β1 | -- | -- |
| RNase保护实验 | 核糖核酸酶 | -- | -- |
| 6×上样缓冲液 | APExBIO | K1161 | |
| 下游分析 | 预制胶 | GenScript | M00664 |
| 二抗 | Signalway Antibody | L3032 | |
| 体内实验 | 博来霉素 | -- | -- |
| ELISA | IL-6 ELISA试剂盒 | Beijing Solarbio | SEKM-0007 |
| IL-1β ELISA试剂盒 | Beijing Solarbio | SEKM-0002 | |
| TNF-α ELISA试剂盒 | Beijing Solarbio | SEKM-0034 | |
| 免疫学评估 | 红细胞裂解液 | ZUNYAN | ZYFB006 |
| 抗CD16/CD32抗体 | BioLegend | 101303 | |
| 抗CD14-FITC抗体 | BioLegend | 123308 | |
| 抗CD45-PE抗体 | BioLegend | 147712 | |
| 抗F4/80-Percp抗体 | BioLegend | 123126 | |
| 抗CD11b-FITC抗体 | BioLegend | 101206 | |
| 抗CD11c-APC抗体 | BioLegend | 117310 | |
| 抗CD80-PE抗体 | BioLegend | 104708 | |
| 抗CD206-APC抗体 | BioLegend | 141708 | |
| 抗CD45-Percp抗体 | BioLegend | 103130 | |
| 抗Ly6G-PE抗体 | BioLegend | 127608 | |
| 抗Ly6C-APC抗体 | BioLegend | 128016 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 纳米颗粒合成 | 脂质体组分(DOTAP、胆固醇、NIN)及摩尔比;FAP靶向肽的偶联方法;DSPE-PEOz-FAP后插入浓度和温度;siRNA核心制备条件 阅读提示:Materials and Methods - Synthesis of FL-NI |
| 体外靶向实验 | MEFs活化条件(TGF-β1浓度、时间);siRNA浓度;孵育时间;FAP抗体阻断浓度和预处理时间 阅读提示:Materials and Methods - Assessment of specific binding ability of FL-siRNA |
| 体外抗纤维化实验 | MEFs活化方式;药物剂量(NIN和siIL11的浓度);处理时间;检测指标(α-SMA、COL1A1) 阅读提示:Materials and Methods - Antifibrosis treatment in vitro |
| 体内动物模型 | BLM剂量和给药途径;模型建立时间;分组;给药剂量(NIN和siIL11的mg/kg);给药频率和周期;样本量 阅读提示:Materials and Methods - Antifibrotic effects of FL-NI in vivo |
| 免疫微环境分析 | 肺组织单细胞悬液制备方法;抗体组合和荧光标记;流式细胞术设置;细胞亚群定义 阅读提示:Materials and Methods - In vivo immunological evaluation |