巨噬细胞κ-阿片受体通过SCD1依赖性抗炎反应抑制低氧性肺动脉高压进展和右心功能障碍

Macrophage κ-opioid receptor inhibits hypoxic pulmonary hypertension progression and right heart dysfunction via an SCD1-dependent anti-inflammatory response.

作者信息Qiaojuan Wang, Jiayuan Liu, Renqi Li, Sihan Kong, Yinjie Wang, Guoyang Huang, Shumiao Zhang, Na Feng, Xiaoming Gu, Yali Liu, Ming Jia, Feng Fu, Jun Li, Juan Li, Jianming Pei
PMID41492472
期刊Genes Dis
发布时间2025-03-18
DOI10.1016/j.gendis.2025.101604

实验完整度

动物模型、细胞实验、RNA测序和Western blot等多层级验证,包含功能验证(U50,488H激动)和机制验证(SCD1过表达/抑制)。

主要模型

κ-OR flox/flox小鼠及髓系特异性敲除小鼠(κ-ORΔMac) 小鼠HPH模型(低氧+SU5416) 小鼠腹腔巨噬细胞 RAW264.7巨噬细胞系 肺动脉平滑肌细胞(PASMCs)

重点核对

小鼠HPH模型:10%氧气、5000m海拔、每天23小时、持续4周,并每周皮下注射SU5416(10 mg/kg) 腹腔巨噬细胞分离:3%巯基乙酸盐300 mL/小鼠,3天后采集 LPS处理:100 ng/mL,24小时 U50,488H处理:40 μM,LPS前10分钟 SCD1抑制剂CAY10566处理:7.5 μM

摘要

我们旨在研究巨噬细胞κ-阿片受体(κ-OR)对巨噬细胞炎症反应和低氧性肺动脉高压(HPH)的影响及其机制。将巨噬细胞κ-OR缺陷小鼠(κ-ORΔMac)及其野生型对照小鼠(κ-ORfl/fl)分为HPH组和对照组。HPH小鼠腹腔巨噬细胞中κ-OR表达显著降低。与κ-ORfl/fl + 对照组相比,κ-ORfl/fl + HPH组右心室压力、肺血管重构、右心室肥大和功能障碍增加;肺动脉周围M1巨噬细胞浸润;NLRP3蛋白表达增加;炎症细胞因子释放增加。巨噬细胞κ-OR缺陷显著加重了上述现象。在细胞水平,κ-OR缺陷的巨噬细胞也加重了脂多糖诱导的炎症。此外,给予κ-OR选择性激动剂U50,488H显著抑制了巨噬细胞的炎症反应。共培养实验显示,U50,488H处理的巨噬细胞抑制了肺动脉平滑肌细胞的增殖。此外,我们的RNA测序和western blotting结果显示,κ-OR增加了巨噬细胞中硬脂酰辅酶A去饱和酶1(SCD1)的表达。巨噬细胞κ-OR敲低显著降低了HPH小鼠肺组织和培养巨噬细胞中SCD1的表达。此外,SCD1过表达显著抑制了脂多糖处理的巨噬细胞的炎症反应,而SCD1的药理学抑制则增强了该反应。这些结果表明,巨噬细胞κ-OR通过上调SCD1抑制HPH和右心功能障碍,SCD1抑制巨噬细胞炎症反应和肺动脉平滑肌细胞增殖。本研究为支持κ-OR激活在HPH治疗中的潜在治疗作用提供了更多证据。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
巨噬细胞κ-OR在低氧性肺动脉高压中对炎症反应和病理进展的调控作用及机制是什么?
核心机制
巨噬细胞κ-OR通过上调SCD1,抑制巨噬细胞炎症反应和M1极化,从而抑制肺动脉平滑肌细胞增殖,改善肺血管重构和右心功能障碍。
主要证据
在HPH小鼠模型中,巨噬细胞κ-OR敲低加重肺血管重构、右心肥大和功能障碍,并增加M1巨噬细胞浸润和炎症因子表达;体外实验中,κ-OR敲低加重LPS诱导的炎症,而激动剂U50,488H抑制炎症;RNA测序和Western blot显示κ-OR调控SCD1表达,SCD1过表达抑制炎症,抑制SCD1则加重炎症。
研究意义
本研究揭示了巨噬细胞κ-OR通过SCD1依赖性抗炎反应抑制HPH的新机制,为κ-OR激活在HPH治疗中的潜在治疗作用提供了证据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立HPH小鼠模型并验证巨噬细胞κ-OR表达变化

模拟HPH病理状态,观察巨噬细胞κ-OR的表达变化及其与疾病的关系。

将κ-ORfl/fl和κ-ORΔMac小鼠置于低氧环境(10%氧气,模拟海拔5000m)每天23小时,持续4周,每周皮下注射SU5416;对照组正常氧。分离腹腔巨噬细胞,通过Western blot检测κ-OR表达。

2

评估巨噬细胞κ-OR缺陷对HPH小鼠右心功能和肺血管重构的影响

探究巨噬细胞κ-OR缺失是否加重HPH的右心功能障碍和肺血管重构。

通过超声心动图测量右室壁厚度和TAPSE,通过微压力传感器测量右室收缩压,计算Fulton指数,通过组织学染色和免疫荧光染色评估血管重构和巨噬细胞浸润。

3

检测炎症反应和NLRP3表达

验证巨噬细胞κ-OR缺陷是否增强HPH相关的炎症反应。

通过Western blot检测肺组织中NLRP3、IL-1β、IL-6、TNF-α蛋白表达。

4

体外验证κ-OR对巨噬细胞炎症的影响

在细胞水平直接验证κ-OR对巨噬细胞炎症反应的调控。

分离腹腔巨噬细胞,用腺病毒敲低κ-OR,或使用U50,488H激活κ-OR,然后用LPS刺激,检测炎症因子表达和M1/M2极化标志物。

5

评估巨噬细胞对肺动脉平滑肌细胞增殖的旁分泌效应

观察巨噬细胞κ-OR激活是否通过旁分泌方式影响PASMC增殖。

使用Transwell共培养系统,将巨噬细胞种在上室,PASMC种在下室,用LPS和/或U50,488H处理巨噬细胞,检测PASMC增殖和SM22α表达。

6

RNA测序分析κ-OR下游信号通路

寻找巨噬细胞κ-OR调控的分子通路,特别是脂代谢相关通路。

对AD-EGFP+LPS和AD-Cre+LPS组的巨噬细胞进行RNA测序,鉴定差异表达基因,并进行KEGG通路富集分析。

7

验证SCD1在κ-OR抗炎作用中的角色

验证κ-OR通过上调SCD1发挥抗炎作用。

通过Western blot和RT-qPCR检测SCD1表达,使用CAY10566抑制SCD1,或通过慢病毒过表达SCD1,观察对LPS诱导的炎症的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
SU5416SigmaS8442
低氧舱Shanghai Tow Intelligent Technology--
VEVO 2100超声系统Visual Sonics--
微压力传感器Chengdu Instrument--
抗α-SMA抗体ServicebioGB13044
抗F4/80抗体ServicebioGB113373
抗iNOS抗体ServicebioGB11119
抗CD206抗体ServicebioGB113497
山羊抗兔IgG(H+L)二抗(Alexa Fluor 488标记)ServicebioGB25303
山羊抗兔IgG(H+L)二抗(CY3标记)ServicebioGB21303
DAPIServicebioGB1012
PE偶联抗小鼠F4/80----
FITC偶联抗小鼠CD11b----
携带EGFP和Cre重组酶的腺病毒HANBIO Biotechnology--
DMEM培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
IL-6 ELISA试剂盒Signalway AntibodyEK0499
IL-1β ELISA试剂盒Signalway AntibodyEK0502
TNF-α ELISA试剂盒Signalway AntibodyEK0497
TRIzolInvitrogen--
KAPA链特异性RNA测序文库制备试剂盒Illumina--
Agilent 2100生物分析仪Agilent Technologies--
Illumina HiSeq 4000测序平台Illumina--
逆转录试剂盒Accurate BiologyAG11728
Power SYBR Green PCR预混液----
RIPA裂解液Beyotime BiotechnologyP0013B
BCA蛋白定量试剂盒Shanghai Epizyme Biomedical Technology--
SDS-PAGE凝胶Shanghai Epizyme Biomedical Technology--
抗κ-OR抗体Signalway Antibody57282
抗SCD1抗体Cell Signaling Technology2794S
抗NLRP3抗体Cell Signaling Technology15101
抗IL-1β抗体Abcamab283818
抗TNF-α抗体Signalway Antibody44074
抗IL-6抗体Abcamab229381
抗SM22α抗体Proteintech60213-1-Ig
抗β-actin抗体Proteintech66009-1-Ig
HRP标记的山羊抗小鼠IgGBeyotime BiotechnologyA0216
HRP标记的山羊抗兔IgGBeyotime BiotechnologyA0208
增强化学发光试剂Biosharp Life Sciences--
U50,488H----
CAY10566----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
HPH小鼠模型建立
低氧浓度10%,持续23小时/天,共4周;SU5416剂量10 mg/kg,每周皮下注射;小鼠周龄6-8周
阅读提示:Methods: Mouse model of HPH
巨噬细胞分离
巯基乙酸盐剂量300 mL/小鼠,3天后收集腹腔细胞
阅读提示:Methods: Macrophage studies
细胞处理
LPS浓度100 ng/mL,处理24小时;U50,488H浓度40 μM,LPS前10分钟加入
阅读提示:Results: Fig. 3 and Fig. 4 legends
SCD1抑制或过表达
CAY10566浓度7.5 μM;SCD1慢病毒构建和感染条件
阅读提示:Results: Fig. 6 legends
Transwell共培养
使用0.4 μm孔径的Transwell,巨噬细胞接种于上室,PASMCs下室,共培养时间
阅读提示:Methods: Cell migration and invasion assays