建立NIHL小鼠模型和SV-ECs氧化应激模型
模拟噪声性听力损失和体外氧化应激损伤,用于后续研究。
C57BL/6小鼠暴露于宽带噪声(2-20 kHz,120 dB SPL,2h)建立NIHL模型;SV-ECs用500 μM H2O2处理建立体外氧化应激模型。
LDHA-mediated glycolysis in stria vascularis endothelial cells regulates macrophages function through CX3CL1-CX3CR1 pathway in noise-induced oxidative stress.
包含体外H2O2处理SV-ECs模型、体内噪声暴露小鼠模型、siRNA/LV介导的LDHA调控、LC-MS/MS分泌组分析及功能验证(TEER、迁移、管形成、ELISA、流式等),证据层级多且功能与机制验证齐全。
SV-ECs(血管纹内皮细胞) C57BL/6小鼠噪声暴露模型 巨噬细胞(Mφ)
SV-ECs的分离与培养方法(基于前期研究改良) H2O2处理浓度500 μM及处理时间2h siRNA转染浓度50 nM及LDHA抑制剂az-33浓度10 μM 噪声暴露参数(宽带噪声2-20 kHz,120 dB SPL,2h) CX3CL1中和抗体处理条件(6h)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
模拟噪声性听力损失和体外氧化应激损伤,用于后续研究。
C57BL/6小鼠暴露于宽带噪声(2-20 kHz,120 dB SPL,2h)建立NIHL模型;SV-ECs用500 μM H2O2处理建立体外氧化应激模型。
评估噪声或H2O2诱导的氧化应激是否导致SV-ECs功能障碍。
通过HE染色观察SV结构,BS-IB4和3-NT免疫荧光检测SV-ECs损伤和氧化应激,qRT-PCR检测抗氧化基因(SOD1、SOD2、GSR等),体外检测血管生成、迁移和TEER。
确定氧化应激下SV-ECs糖酵解基因和蛋白表达的变化。
使用qRT-PCR和Western blot检测H2O2处理或噪声暴露后糖酵解相关基因和蛋白的表达。
探究LDHA在正常和氧化应激条件下对SV-ECs存活、屏障和迁移功能的作用。
通过siRNA或az-33抑制LDHA,检测乳酸释放、细胞活力(CCK8)、TEER和迁移能力,并检测抗氧化基因表达。
验证SV-ECs中LDHA抑制是否对巨噬细胞产生抗炎作用。
收集siLDHA处理的SV-ECs分泌组刺激Mφ,检测抗炎和促炎因子表达;体内通过鼓室内注射siLDHA,检测Mφ标志物及细胞因子。
确定LDHA介导SV-ECs与Mφ通讯的关键分泌因子。
通过LC-MS/MS分析siLDHA和siNC处理的SV-ECs分泌组,筛选差异蛋白;验证CX3CL1表达变化,并通过中和抗体和siCX3CL1实验证明其功能。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 氧化应激诱导 | 过氧化氢 | -- | -- |
| RNA干扰 | 小干扰RNA | -- | -- |
| riboFECT CP转染试剂盒 | RiboBio | -- | |
| 慢病毒构建 | LV-LDHA慢病毒 | Genechem | -- |
| 细胞培养 | 嘌呤霉素 | -- | -- |
| ROS检测 | 2',7'-二氯二氢荧光素二乙酸酯 | Sigma-Aldrich | -- |
| BioTek Gene酶标仪 | BioTek | -- | |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | Yeasen | -- |
| az-33 | Abcam | -- | |
| TEER测量 | Transwell 24孔板(0.4 μm孔径滤膜) | Corning | -- |
| Hank's平衡盐溶液 | -- | -- | |
| EVOM3电阻仪 | WPI | -- | |
| 迁移实验 | Transwell 24孔板(8 μm孔径滤膜) | Corning | -- |
| 结晶紫 | -- | -- | |
| 管形成实验 | Matrigel基质胶(降低生长因子) | BD Biosciences | -- |
| ELISA | TNF-α、IL-6、IL-1β ELISA试剂盒 | NeoBioscience | -- |
| 乳酸检测 | 乳酸检测试剂盒 | KeyGEN BioTECH | -- |
| ABR测量 | TDT系统III | Tucker-Davis Technologies | -- |
| 组织切片 | O.C.T.包埋剂 | Sakura | -- |
| HE染色 | HE染色试剂盒 | Solarbio | -- |
| 免疫荧光 | CX3CL1一抗 | R&D Systems | AF537-SP |
| Iba1抗体 | Abcam | ab178846 | |
| 3NT抗体 | Bioss | bs-8551R | |
| CD86抗体 | Proteintech | 13395-1-AP | |
| CD31抗体 | Proteintech | 28083-1-AP | |
| FITC标记的BSIB4 | Thermo Fisher Scientific | L2895 | |
| DAPI | Roche | -- | |
| Leica DM4B显微镜 | Leica | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | -- | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | -- | |
| PVDF膜 | Millipore | -- | |
| 一抗(GPI, ALDOA, TPI1, G3P, PGAM1, PKM, LDHA, PGK1, CX3CL1, β-actin) | SAB, Abcam, CST, Proteintech | -- | |
| 二抗 | Cowin Biotech | -- | |
| 增强化学发光试剂盒 | Millipore | -- | |
| qRT-PCR | Trizol试剂 | Invitrogen | -- |
| Evo M-MLV逆转录预混试剂盒 | Accurate Biotechnology | -- | |
| SYBR Green Pro Taq HS预混qPCR试剂盒 | Accurate Biotechnology | -- | |
| 流式细胞术 | 消化液 | Stemcell | -- |
| 70 μm细胞筛 | BD | -- | |
| F4/80-FITC抗体 | Biolegend | -- | |
| CD206-PC7抗体 | Biolegend | -- | |
| CD86-APC抗体 | Biolegend | -- | |
| 分泌组分析 | 3 kDa截留超滤管 | Thermo Fisher Scientific | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| NIHL小鼠模型建立 | 噪声暴露参数(频率范围、声压级、持续时间)、小鼠品系、年龄、性别、样本量 阅读提示:Methods:Development of NIHL mouse model |
| SV-ECs培养和氧化应激模型 | SV-ECs分离培养方法、H2O2浓度和处理时间、细胞密度 阅读提示:Methods:Culture of SV-ECs, RNA interference and lentivirus construction;Results:Fig.1 |
| LDHA抑制处理 | siRNA序列、浓度、转染试剂及转染时间;az-33浓度和处理时间 阅读提示:Methods:Culture of SV-ECs, RNA interference and lentivirus construction;Results:Fig.4 |
| 体内siLDHA给药 | siRNA的给药方式(鼓室内注射)、剂量、时间点和注射体积 阅读提示:Methods:Intratympanic injection;Results:Fig.5 |
| 巨噬细胞功能检测 | Mφ来源、处理条件(分泌组、中和抗体)、检测时间点、流式分型标记 阅读提示:Methods:Isolation of single cells for flow cytometry analysis;Results:Fig.5和Fig.6 |