HNF1B在ccRCC中的功能验证
确定HNF1B在ccRCC细胞增殖中的角色。
利用GEPIA和HPA数据库分析HNF1B表达,通过Western blot检测多种癌细胞系中HNF1B蛋白水平;利用CRISPR/Cas9敲除786-O细胞的HNF1B,通过CCK-8和集落形成实验检测细胞增殖。
Dimethyl fumarate promotes the degradation of HNF1B and suppresses the progression of clear cell renal cell carcinoma.
包括体外细胞系实验、分子机制验证(泛素化、琥珀化、co-IP)和小鼠异种移植模型,多层级证据支持功能与机制结论。
786-O细胞系 RCC4细胞系 HEK-293T细胞系 小鼠异种移植模型(786-O细胞皮下注射)
HNF1B敲除验证及其对增殖的影响(CRISPR/Cas9) DMF处理浓度(50μM)和时间(12h) HNF1B半胱氨酸突变体(C223S, C268S, C273S, C552S, 4CS) DMF和舒尼替尼联合用药的剂量(30 mg/kg DMF每日,20 mg/kg舒尼替尼隔日) 体内模型中肿瘤生长的测量频率(每四天)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定HNF1B在ccRCC细胞增殖中的角色。
利用GEPIA和HPA数据库分析HNF1B表达,通过Western blot检测多种癌细胞系中HNF1B蛋白水平;利用CRISPR/Cas9敲除786-O细胞的HNF1B,通过CCK-8和集落形成实验检测细胞增殖。
评估DMF是否抑制ccRCC细胞增殖并降低HNF1B蛋白水平。
用不同浓度DMF处理786-O和RCC4细胞,进行CCK-8和集落形成实验;通过Western blot检测外源和内源HNF1B水平,qPCR检测HNF1B靶基因mRNA。
确定DMF降低HNF1B蛋白水平的降解途径。
检测DMF对HNF1B mRNA水平的影响;使用放线菌素D和CHX分析mRNA和蛋白稳定性;使用NH4Cl和MG132抑制溶酶体和蛋白酶体;通过泛素化实验检测HNF1B泛素化水平;筛选并验证与HNF1B相互作用的去泛素化酶OTUD3。
验证DMF是否通过琥珀化HNF1B的半胱氨酸残基促进其降解。
通过co-IP检测HNF1B的琥珀化;用NAC预处理验证半胱氨酸保护效果;构建HNF1B半胱氨酸突变体(C223S, C268S, C273S, C552S, 4CS),检测DMF对突变体蛋白水平、琥珀化、与OTUD3相互作用及泛素化的影响。
探究DMF介导的HNF1B降解是否通过YAP抑制ccRCC增殖。
通过co-IP验证HNF1B与YAP的相互作用及DMF的影响;检测YAP蛋白和mRNA水平、磷酸化、琥珀化、细胞定位、下游靶基因CYR61和AXL的表达;通过回复实验和泛素化实验验证HNF1B对YAP稳定性的调控。
验证DMF是否增强舒尼替尼对ccRCC的疗效。
体外用DMF和/或舒尼替尼处理786-O和RCC4细胞,检测增殖和集落形成;体内用786-O细胞异种移植模型,口服DMF和/或舒尼替尼,监测肿瘤生长和重量,通过IHC检测HNF1B和Ki67。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 药物处理 | 富马酸二甲酯 | TargetMol | 624-49-7 |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂盒 | TargetMol | C0005 |
| 药物处理 | 舒尼替尼 | TargetMol | 557795-19-4 |
| MLN4924 | TargetMol | 905579-51-3 | |
| 蛋白酶体抑制 | MG132 | MCE | HY-13259 |
| Western blot | HNF1B抗体 | Proteintech | 12533-1-AP |
| 肌动蛋白抗体 | Proteintech | 81115-1-RR | |
| GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| 免疫共沉淀 | Flag标签抗体 | AbHO | HOA012FL01 |
| HA标签抗体 | AbHO | HOA012HA01 | |
| Western blot | YAP抗体 | HUABIO | ET1608-30 |
| 琥珀化检测 | 2SC抗体 | Discovery Antibodies | crb2005017 |
| Western blot | pYAP抗体 | HUABIO | ET1611-69 |
| 鼠源二抗 | SAB | L3032 | |
| 兔源二抗 | SAB | L3012 | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Meilun Biotechnology | -- |
| F-12培养基 | -- | -- | |
| RPMI 1640培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | Biological Industries | -- | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| 细胞转染 | EZ Trans转染试剂 | Life-iLab | -- |
| 基因敲除 | KOD Fx聚合酶 | TOYOBO | -- |
| DpnI酶 | Takara | -- | |
| 分子克隆 | NcmDH5-α感受态细胞 | NCM Biotech | -- |
| 慢病毒感染 | 聚凝胺 | -- | -- |
| RNA提取 | EZ-press RNA纯化试剂盒 | EZ Bioscience | -- |
| 反转录 | 4×反转录预混液 | EZ Bioscience | -- |
| qPCR | 2× SYBR qPCR预混液 | AlpaLife | KTSM |
| Applied Biosystems 7300 Plus序列检测系统 | Applied Biosystems | -- | |
| Western blot | NP-40裂解液 | -- | -- |
| 蛋白酶抑制剂 | -- | -- | |
| 磷酸酶抑制剂 | -- | -- | |
| SDS-PAGE上样缓冲液 | -- | -- | |
| 硝酸纤维素膜 | -- | -- | |
| Tanon 5200成像系统 | Tanon | -- | |
| 免疫共沉淀 | 抗Flag磁珠 | AbHO | -- |
| 细胞增殖检测 | 96孔板 | -- | -- |
| 酶标仪 | -- | -- | |
| 集落形成实验 | 6孔板 | -- | -- |
| 结晶紫 | -- | -- | |
| 甲醇 | -- | -- | |
| 乙酸 | -- | -- | |
| 动物实验 | NSG小鼠 | Model Organisms Center | -- |
| 基质胶 | -- | -- | |
| 二甲基亚砜 | -- | -- | |
| 药物处理 | N-乙酰-L-半胱氨酸 | -- | -- |
| 氯化铵 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系(786-O, RCC4, HEK-293T等)的培养条件,包括培养基(DMEM, F-12, RPMI 1640)、血清(10% FBS)和抗生素(1% P/S) 阅读提示:Methods - Cell culture and cell transfection |
| 药物处理 | DMF浓度(50 μM)和处理时间(12小时),以及DMSO对照 阅读提示:Figures 2-5, Methods - Reagents and antibodies |
| 基因敲除 | CRISPR/Cas9敲除HNF1B的gRNA序列,慢病毒感染和筛选条件(polybrene 10 μg/mL, puromycin 7天) 阅读提示:Methods - Mutagenesis and gene knockout |
| 蛋白降解机制 | 蛋白酶体抑制剂MG132(10 μM, 12h)和溶酶体抑制剂NH4Cl(20 mM, 12h)的使用,以及CHX(100 μg/mL)处理时间 阅读提示:Figure 3, Methods - Reagents and antibodies |
| 动物实验 | 小鼠品系(五周龄雄性NSG)、注射细胞数(1×10^7)、药物剂量(DMF 30 mg/kg每日,舒尼替尼20 mg/kg隔日)、给药方式(口服灌胃) 阅读提示:Methods - Animal experiments |
| 体内成像与分析 | 肿瘤体积测量频率(每四天)、IHC染色指标(HNF1B, Ki67) 阅读提示:Figure 6, Methods - Animal experiments |