定量巴豆酰化组学分析
鉴定缺氧条件下MDA-MB231细胞中全球巴豆酰化位点的变化。
使用TMT标记、免疫亲和富集和LC-MS/MS对比常氧和缺氧下MDA-MB231细胞的巴豆酰化水平。
Hypoxia-induced downregulation of PGK1 crotonylation promotes tumorigenesis by coordinating glycolysis and the TCA cycle.
包含定量蛋白质组学、细胞实验、体外生化实验、动物模型和临床样本等多个独立证据层级,并进行了功能验证和机制验证。
MDA-MB231乳腺癌细胞系 HEK293T细胞系 HCC1806乳腺癌细胞系 MCF10A正常乳腺上皮细胞系 BALB/c裸鼠异种移植瘤模型 MMTV-PyMT自发性乳腺癌小鼠模型
缺氧处理时间:12小时,氧浓度0.5% PGK1 Kcr位点:K131、K156、K220,突变体K131R、K156R、K220R、3KR ECHS1敲低或过表达对PGK1 Kcr的影响 PDHK1敲低对PGK1 3KR介导的细胞增殖和肿瘤生长的影响 临床样本中PGK1 K131cr水平与乳腺癌分期和预后的关联
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定缺氧条件下MDA-MB231细胞中全球巴豆酰化位点的变化。
使用TMT标记、免疫亲和富集和LC-MS/MS对比常氧和缺氧下MDA-MB231细胞的巴豆酰化水平。
验证PGK1在K131、K156和K220位点的巴豆酰化,并构建突变体以研究其功能。
合成标准Kcr肽段对比MS谱图;构建单点(K131R、K156R、K220R)、双点和三点(3KR)突变体,转染HEK293T细胞进行IP和免疫印迹。
确定ECHS1是否在缺氧下介导PGK1巴豆酰化的下调。
通过IP-MS发现ECHS1为PGK1互作蛋白;Co-IP和GST pull-down验证相互作用;缺氧处理观察ECHS1表达和PGK1-ECHS1互作增强;敲低ECSH1观察PGK1 Kcr水平。
寻找催化PGK1巴豆酰化的酶。
转染多种HATs和HDACs,IP分析鉴定PCAF为PGK1的巴豆酰转移酶;体外实验验证PCAF催化PGK1巴豆酰化。
评估PGK1巴豆酰化缺失对糖酵解和线粒体丙酮酸代谢的影响。
在PGK1敲除的MDA-MB231细胞中回补rPGK1 WT或3KR,检测PDHK1和PDH磷酸化、OCR和ECAR、代谢物水平及ROS。
验证PGK1巴豆酰化缺失对细胞增殖、迁移和侵袭的影响。
使用集落形成、细胞增殖曲线、Transwell迁移和伤口愈合实验比较rPGK1 WT和3KR细胞的行为。
验证PGK1巴豆酰化缺失在体内对肿瘤生长的影响。
将MDA-MB231衍生的rPGK1 WT或3KR细胞(有或无PDHK1敲低)皮下注射到裸鼠,测量肿瘤体积和重量。
评估PGK1 K131cr水平与乳腺癌患者预后和临床特征的关系。
使用组织芯片和IHC染色检测PGK1 K131cr、PGK1、ECHS1等表达,并分析其与生存期、分级、淋巴结转移的相关性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 免疫印迹和IP | 抗PGK1抗体 | Proteintech | 17811-1-AP |
| 抗巴豆酰赖氨酸抗体 | PTM BIO | PTM-501 | |
| 抗ECHS1抗体 | Proteintech | 11305-1-AP | |
| 抗Flag M2抗体 | Sigma-Aldrich | F1804 | |
| 药物处理 | 乙酸钠 | Sigma-Aldrich | S2889 |
| 代谢物检测 | 巴豆酰辅酶A三锂盐 | Sigma-Aldrich | 28007 |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | C11995500BT |
| RPMI-1640培养基 | Gibco | C11875500BT | |
| 胎牛血清 | Gibco | 10099141C | |
| 转染 | Lipo8000转染试剂 | Beyotime | C0533 |
| 蛋白纯化 | GSTrap柱 | Cytiva | 17528201 |
| 还原型谷胱甘肽 | Solarbio | G8180 | |
| 酶活性测定 | TriStar² LB 942多功能微孔板读数仪 | Berthold Technologies | -- |
| 细胞培养耗材 | 基质胶 | BD-Biosciences | 356234 |
| 免疫荧光 | 线粒体示踪剂 | Invitrogen | 22425 |
| DAPI | -- | -- | |
| ROS检测 | H2DCFDA荧光探针 | MCE | HY-D0940 |
| 代谢物提取 | Oasis HLB固相萃取柱 | Waters | 186000383 |
| 代谢物检测 | 6500plus QTrap质谱仪 | AB SCIEX | -- |
| ACQUITY UPLC H-Class系统 | Waters | -- | |
| TSQ Quantiva质谱仪 | Thermo | -- | |
| Dionex Ulti-Mate 3000 UPLC系统 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Synergi Hydro-RP 100 A色谱柱 | Phenomenex | -- | |
| 蛋白纯化 | GST标记的PGK1蛋白 | -- | -- |
| His标记的ECHS1蛋白 | -- | -- | |
| His标记的PCAF蛋白 | -- | -- | |
| 细胞实验 | 嘌呤霉素 | Gibco | A1113803 |
| 杀稻瘟菌素 | Gibco | A1113903 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 缺氧处理 | 氧浓度:0.5% 阅读提示:见Methods中Cell lines and plasmids部分 |
| 缺氧处理 | 处理时间:12小时 阅读提示:见Methods中Cell lines and plasmids部分 |
| 细胞培养 | 培养基:DMEM或RPMI-1640,含10% FBS 阅读提示:见Methods中Cell lines and plasmids部分 |
| 转染 | 转染试剂:Lipo8000 阅读提示:见Methods中Cell lines and plasmids部分 |
| 免疫沉淀 | IP缓冲液成分:50 mM Tris-HCl, pH 7.5, 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, 1% NP-40 阅读提示:见Methods中Immunoprecipitation and immunoblotting部分 |
| 免疫印迹 | PVDF膜:Millipore,IPVH00010 阅读提示:见Methods中Immunoprecipitation and immunoblotting部分 |
| 体外巴豆酰化实验 | 反应条件:5 μg GST-PGK1, 100 μM crotonyl-CoA, 0.5-2.5 μg His-PCAF, 30°C, 1小时 阅读提示:见Methods中In vitro crotonylation assays部分 |
| 酶活性测定 | 反应缓冲液:5 mM KH2PO4, 8 mM MgCl2, 1 mM GAP, 0.3 mM NAD, 0.2 mM ADP 阅读提示:见Methods中In vitro enzyme activity assay部分 |
| Seahorse分析 | OCR:细胞数1×10^5,XF24板,基础培养基为XF base medium 阅读提示:见Methods中ECAR和OCR部分 |
| Seahorse分析 | ECAR:细胞数3×10^4,XF96板 阅读提示:见Methods中ECAR和OCR部分 |
| 代谢物分析 | 培养基:无葡萄糖、谷氨酰胺、丙酮酸的DMEM,补充10 mM葡萄糖和1 mM谷氨酰胺 阅读提示:见Methods中Targeted metabolites部分 |
| 同位素示踪 | 补充1 mM [U-13C3]-pyruvate 阅读提示:见Methods中Metabolite profiling和isotope tracing部分 |
| 动物实验 | 小鼠品系:BALB/c nude小鼠,6周龄,雌性 阅读提示:见Methods中Tumor xenografts in nude mice model部分 |
| 动物实验 | 细胞注射量:1×10^6细胞/只 阅读提示:见Methods中Tumor xenografts in nude mice model部分 |