建立OGD/R损伤的HT22细胞模型
模拟体外脑缺血再灌注损伤,观察HT22细胞的铁死亡特征。
HT22细胞经氧糖剥夺4小时和复氧24小时处理,检测增殖、ROS、Fe2+、GSH和MDA水平。
Exosomes derived from M2-type microglia ameliorate oxygen-glucose deprivation/reoxygenation-induced HT22 cell injury by regulating miR-124-3p/NCOA4-mediated ferroptosis.
包含体外细胞模型(HT22、BV2)、外泌体鉴定、共培养、功能验证(CCK-8、铁死亡指标)及机制验证(双荧光素酶报告基因、过表达),但缺乏动物模型和患者样本。
HT22小鼠海马神经元细胞系(OGD/R损伤模型) BV2小鼠小胶质细胞系(M2极化) M2型小胶质细胞来源外泌体
OGD/R处理条件:缺氧4小时,复氧24小时 M2极化诱导:重组IL-4刺激 GW4869浓度:10 μM预处理8小时 miR-124-3p过表达/敲低外泌体构建 NCOA4过表达载体转染
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
模拟体外脑缺血再灌注损伤,观察HT22细胞的铁死亡特征。
HT22细胞经氧糖剥夺4小时和复氧24小时处理,检测增殖、ROS、Fe2+、GSH和MDA水平。
获得M2型小胶质细胞来源的外泌体,用于后续共培养实验。
用重组IL-4诱导BV2细胞M2极化,流式检测ARG和CD206阳性率;用ExoQuick提取外泌体,通过TEM和CD63/TSG101鉴定。
评估M2外泌体对OGD/R诱导的HT22细胞损伤的保护作用。
将M2外泌体与OGD/R处理的HT22细胞共培养,检测增殖和铁死亡指标;部分实验加入外泌体抑制剂GW4869。
确认M2外泌体通过传递miR-124-3p发挥保护作用。
构建miR-124-3p过表达(mimic-exo)或敲低(inhibitor-exo)的外泌体,与OGD/R-HT22细胞共培养,检测增殖和铁死亡指标及NCOA4表达。
验证NCOA4是miR-124-3p介导保护作用的下游靶点。
在HT22细胞中过表达NCOA4(oeNCOA4),并给予M2外泌体处理,检测增殖和铁死亡指标。
证明miR-124-3p直接结合NCOA4 3'UTR并抑制其表达。
使用双荧光素酶报告基因实验,将含野生型或突变型NCOA4 3'UTR的报告质粒与miR-124-3p mimic或inhibitor共转染HT22细胞,检测荧光素酶活性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Trueline | -- |
| L-谷氨酰胺 | Solarbio | -- | |
| 药物处理 | GW4869 | Sigma | -- |
| 外泌体提取 | ExoQuick外泌体沉淀试剂盒 | System Bioscience | -- |
| Western blotting | NCOA4抗体 | Bioss | bs-19051R |
| GAPDH抗体 | CST | 5174 | |
| TSG101抗体 | Abcam | Ab125011 | |
| CD63抗体 | Abcam | Ab59479 | |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂盒 | Signalway Antibody | -- |
| qRT-PCR | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| cDNA合成试剂盒 | Invitrogen | -- | |
| Western blotting | RIPA裂解液 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 硝酸纤维素膜 | Millipore | -- | |
| 二抗 | Beyotime | -- | |
| 生化检测 | 铁检测试剂盒 | Abcam | ab83366 |
| GSH试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | A006-2 | |
| MDA试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | A003-1 | |
| 外泌体摄取实验 | PKH67染色试剂 | Sigma | -- |
| DAPI | Sigma | -- | |
| NCOA4过表达 | Lipofectamine™ 2000转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 双荧光素酶报告基因实验 | 双荧光素酶报告基因检测试剂盒 | Yuanpinghao Biotechnology | -- |
| 细胞培养 | 重组蛋白IL-4 | -- | -- |
| 细胞共培养 | Transwell渗透支持物 | Corning | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与OGD/R处理 | 细胞系来源:HT22和BV2细胞系;OGD条件培养4小时,复氧24小时;培养基DMEM含10% FBS、1%青霉素/链霉素、2 mM L-谷氨酰胺 阅读提示:Methods 2.1 |
| M2型小胶质细胞诱导 | BV2细胞用重组IL-4刺激,具体浓度和时长未在文中明确说明;M2标志物为ARG和CD206 阅读提示:Methods 2.1 |
| 外泌体提取与鉴定 | 外泌体提取使用ExoQuick沉淀法,具体步骤见Methods 2.3;鉴定用TEM和CD63/TSG101抗体 阅读提示:Methods 2.3 |
| 外泌体共培养与GW4869处理 | GW4869浓度10 μM,加药时间约为共培养前8小时;共培养使用Transwell系统,M2细胞在上室,HT22细胞在下室 阅读提示:Methods 2.2 |
| 细胞增殖与铁死亡指标检测 | CCK-8试剂盒使用,1:10稀释,孵育1小时,波长450 nm;ROS、Fe2+、GSH、MDA检测方法详见Methods 2.8 阅读提示:Methods 2.5 & 2.8 |
| qRT-PCR与Western blotting | qRT-PCR条件:95°C 10 min,95°C 15 s,60°C 45 s,40个循环;内参U6和β-actin;Western blotting蛋白上样量25 μg 阅读提示:Methods 2.6 & 2.7 |